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持久性有機(jī)污染物的海洋動物胚胎毒理學(xué)研究進(jìn)展

2010-03-15 10:13:04周海龍韋雙雙鄭繼平薛欽昭
海洋科學(xué) 2010年1期
關(guān)鍵詞:毒理胚胎毒性

周海龍,曲 瑩,董 方,蘇 文,韋雙雙,鄭繼平,薛欽昭

(1.中國科學(xué)院 煙臺海岸帶可持續(xù)發(fā)展研究所,山東 煙臺 264003;2.海南大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,海南 海口570228;3.中國科學(xué)院海洋研究所,山東青島266071;4.中國科學(xué)院研究生院,北京100049)

持久性有機(jī)污染物(persistent organic pollutants,POPs)是指具有高毒性、持久性、生物蓄積性、半揮發(fā)性及長距離遷移性等特性的天然或人工合成的有機(jī)污染物[1]。它可通過空氣、水、土壤、食物鏈進(jìn)行廣泛傳播,甚至能經(jīng)母乳傳遞給嬰兒[2]。無論是在空氣、水體、土壤、生物體中,還是在南極、北極都發(fā)現(xiàn)了 POPs的存在[3]。大量研究表明 POPs在食物鏈傳遞過程中具有生物富集和生物放大效應(yīng)[4],已嚴(yán)重威脅人類健康,例如:POPs對人的腦[5]、聽力[6],免疫[7]、生殖[8]、神經(jīng)[9]等系統(tǒng)均有損害作用,POPs引發(fā)的環(huán)境污染問題已引起國際社會廣泛關(guān)注。

就海洋環(huán)境而言,POPs可通過河流、陸源、污染排放、溢油及大氣沉降等途徑進(jìn)入海洋,導(dǎo)致海洋生態(tài)系統(tǒng)日趨惡化。POPs可直接對海洋動物胚胎產(chǎn)生急性或慢性毒理效應(yīng),特別是低等海洋動物,早期胚胎以浮游形式直接暴露于海洋環(huán)境,易受環(huán)境污染的影響。這對海洋動物種群繁衍、群落結(jié)構(gòu)以及海洋生態(tài)系統(tǒng)等產(chǎn)生重要影響。胚胎期是海洋動物整個生命周期中對POPs最敏感、最脆弱的一個時期,故研究POPs對海洋動物的胚胎毒理不僅為揭示POPs在海洋動物體中的生物富集和毒理機(jī)理具有重要的理論意義,而且在海洋動物保護(hù)和繁育以及海洋生態(tài)環(huán)境恢復(fù)等領(lǐng)域具有重要的指導(dǎo)價值。本工作將對 POPs在海洋動物胚胎中的分布、毒理效應(yīng)和分子毒理響應(yīng)機(jī)制等方面進(jìn)行綜述和探討,為揭示POPs生態(tài)毒理效應(yīng)和海洋生態(tài)系統(tǒng)健康評價提供一定的科學(xué)依據(jù)。

1 POPs在海洋動物胚胎中的分布

POPs屬于親脂疏水性物質(zhì),在生物體內(nèi)難降解,并呈現(xiàn)出生物富集和沿食物鏈生物放大效應(yīng),其含量在機(jī)體組織內(nèi)的分布與脂肪含量呈正相關(guān)[10]。中國學(xué)者對國內(nèi)幾種主要的貝類和魚類[10~13]研究表明,貝類體內(nèi)總多氯聯(lián)苯(Polychlorinated biphenyls,PCBs)、六六六(hexachlorocyclohexane,HCH)、滴滴涕(dichlorodiphenyltrichloroethane,DDT)質(zhì)量(濕質(zhì)量)比分別為:0.04~11.6 ng/g,5.70~30.2 ng/g,0.70~22.60 ng/g;魚體內(nèi) PCBs質(zhì)量(濕質(zhì)量)比為:1.25~16.4 ng/g。貝類和魚類POPs含量均低于海產(chǎn)品安全限量,其食用價值尚未受到影響。

POPs在海洋動物胚胎中同樣存在富集作用,且存在時空性。M?enp? ?等[14]利用五氯苯酚(pentachlorophenol,PCP,0.051~0.056μmol/L)對鮭魚受精卵的生物富集試驗表明,PCP在鮭魚胚胎內(nèi)的分布和代謝與胚胎發(fā)育階段具有密切聯(lián)系。胚胎發(fā)育晚期比早期多富集量多,這可能與胚胎發(fā)育晚期呼吸頻率和代謝活動的加強(qiáng)有關(guān)。Broyles等[15]利用 2,3,4,5-四氯聯(lián)苯醚 (2,5,2′,5′-tetrachlorobiphenyl,TCB,500μg/L)對湖鱒進(jìn)行暴露實驗。結(jié)果表明,當(dāng)在胚胎期進(jìn)行暴露時,鮭魚卵黃囊富集TCB的能力最強(qiáng);但當(dāng)胚胎發(fā)育到卵黃囊仔魚階段才進(jìn)行暴露時,結(jié)果發(fā)現(xiàn)70%的 TCB分布在機(jī)體組織中,而不在卵黃中,這說明 TCB在組織中的分布還與暴露的時期有關(guān)。Broyles等[16]利用2,4,5,2′,4′,5′-六氯聯(lián)苯(2,4,5,2′,4′,5′-hexachlorobiphenyl,HCB)對湖鱒卵黃囊仔魚進(jìn)行暴露試驗,暴露3個月后,一部分 HCB從仔魚體內(nèi)消失。在第3個月時,大量的HCB分布于消化器官??傊?POPs在海洋動物胚胎中的分布與胚胎發(fā)育階段和胚胎暴露的時間,以及各組織器官(可能與脂肪含量有關(guān))等因素有關(guān),其分布規(guī)律有待進(jìn)一步研究。

另外,POPs物質(zhì)在海洋動物體內(nèi)的分解代謝是一個非常復(fù)雜的過程,受多種因素的影響,包括動物的種類,POPs物質(zhì)的類型,代謝途徑等。目前,科學(xué)家們雖已對 POPs的降解進(jìn)行了大量的探索,但還沒找到一種理想的POPs降解辦法。值得注意的是海洋多毛類動物(如沙蠶)對多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)等 POPs物質(zhì)具有很強(qiáng)的富集能力,J?rgensen等[17]報道,它們不含有芳香烴受體(aryl hydrocarbon receptor,AHR)同源物,說明它們對POPs物質(zhì)的代謝存在不同的機(jī)制;對這一機(jī)制開展深入研究,或許是人類攻克 POPs污染問題的一個新突破口。

2 POPs的胚胎毒性

海洋動物胚胎多數(shù)在海水中生長發(fā)育,且對POPs物質(zhì)非常敏感[18]。目前,主要就2,3,7,8-四氯二苯并二惡英(2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-pdioxin,TCDD)、DDT、PCB、苯并[a]芘 (Benzo[a]pyrene,B[a]P)、PAHs等POPs物質(zhì)對斑馬魚、貽貝等模式動物的胚胎發(fā)育毒性進(jìn)行了大量的研究,主要體現(xiàn)在胚胎形態(tài)及其心血管系統(tǒng)毒性作用等方面。雖然這些研究主要是針對少數(shù)模式動物,但對海洋動物胚胎毒理的研究仍具有重要的指導(dǎo)意義。

2.1 對胚胎形態(tài)的毒性作用

POPs對胚胎形態(tài)具有嚴(yán)重的損害作用,主要表現(xiàn)為胚胎水腫、出血、局部貧血和生長發(fā)育延緩,心血管發(fā)育和功能受損,頜畸形、死亡等現(xiàn)象[19];另外,Teraoka等[20]報道,TCDD對斑馬魚(Danio rerio)胚胎下頜軟骨的生長發(fā)育也有影響。Antkiewicz等[21]報道將斑馬魚胚胎暴露于 TCDD,通過三維立體測量發(fā)現(xiàn):受精后72 h(hours post-fertilization,hpf)心臟組織體積顯著減小,特別是在受精后48 h時,心臟細(xì)胞總數(shù)量顯著減少,這說明心臟是 TCDD作用的一個重要靶器官。Kammann[22]和 Helder等[23]進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),TCDD的胚胎毒性還存在著明顯的劑量效應(yīng)關(guān)系,低質(zhì)量濃度(0.1 ng/L)時導(dǎo)致生長延緩,進(jìn)一步影響早期生長發(fā)育;高質(zhì)量濃度(10 ng/L)時導(dǎo)致水腫甚至死亡。

另外,就胚胎毒性敏感性而言,不同的海洋動物之間也不同,十足類動物對殺蟲劑的毒性比海膽,海鞘更為敏感[24],真鯛(Pagrosomus major)對 TCDD最為敏感[25]。值得注意的是,滴滴伊(DDE)393 mmol/L,苯并[a]芘(B[a]P)13.2 mmol/L對兩棲類動物爪蟾的胚胎毒性不大,此濃度下其死亡率<10%,研究表明,這與它們的溶解度有關(guān)[26],而與TCDD被胚胎快速清除沒有關(guān)系[27]。導(dǎo)致胚胎毒性敏感性差異的原因,目前尚不清楚。

2.2 對心血管系統(tǒng)的毒性作用

心血管系統(tǒng)是胚胎發(fā)育毒性的第一個靶器官[28],心血管毒性除了與POPs的種類、劑量水平等因素有關(guān)外,還與海洋動物自身的物種、性別、發(fā)育階段等因素密切相關(guān),呈現(xiàn)一種非線性關(guān)系[13]。Lema等[29]用多溴二苯醚47(Polybrominated diphenyl ethers,PBDEs 47)對斑馬魚胚胎進(jìn)行毒性試驗發(fā)現(xiàn):受精后20 h左右,會產(chǎn)生發(fā)育毒性;48 h,導(dǎo)致心肌細(xì)胞數(shù)減少,心臟體積變小,同時還會出現(xiàn)胚胎浮腫、出血等次級效應(yīng);96 h,發(fā)現(xiàn)心動過速,這由于房室傳導(dǎo)阻滯導(dǎo)致心率失常,說明胚胎不同發(fā)育階段其胚胎毒性作用不同。另外,Handley-Goldstone等[30]進(jìn)一步研究表明,細(xì)胞色素氧化酶 P4501A(Cytochrome p450 1A,CYP1A),細(xì)胞色素氧化酶P4501B(Cytochrome p450 1B,CYP1B)及其它AHR通道基因也參與了 TCDD的毒理調(diào)控過程,通過改變肌鈣蛋白 T2和各種肌球蛋白的表達(dá),從而導(dǎo)致擴(kuò)張型心肌病。同時,脂肪酸和類固醇類物質(zhì)代謝酶,核糖體和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白均參與了 TCDD的胚胎期心血管毒性作用。

3 胚胎毒理機(jī)制的探索

胚胎毒理主要是由AHR通道基因及其相關(guān)信號通道相互協(xié)同作用調(diào)控的,其中AHR通道對于POPs的胚胎毒理調(diào)控具有重要作用。

3.1 A HR通道

對鮭魚[31]、大西洋鮭[32]、海豹[33]等多種海洋動物A HR基因結(jié)構(gòu)和基本功能的研究表明,TCDD、HAH(halogenated aromatic hydrocarbons)、PAH等POPs毒性效應(yīng)大都通過 AHR通道進(jìn)行調(diào)節(jié)[34~36]。

在AHR調(diào)控通路過程中,A HR主要對CYP1和CYP2進(jìn)行調(diào)控;其中CYP1A是一種外源性代謝酶,它往往被POPs所誘導(dǎo)。當(dāng) TCDD、PA H等物質(zhì)進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)后與AHR結(jié)合,然后A HR從熱休克蛋白90(heat shock protein 90,Hsp90)[37],X相關(guān)蛋白2(X-associated protein 2,XAP2)[38]和 23-ku的共伴侶分子(23-ku co-chaperone protein,p23)[39]組成的復(fù)合物解離,從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中,與芳香烴受體核轉(zhuǎn)位蛋白(AHR nuclear translocator protein,ARN T)結(jié)合形成AHR/ARNT異二聚體,最后作用于CYP1A等靶基因的異物應(yīng)答元件(xenobiotic response elements,XREs)序列,從而誘導(dǎo)靶基因的表達(dá)。同時,芳香烴受體抑制子(Aryl Hydrocarbon Receptor Repressor,AHRR)具有抑制A HR功能活性的作用,從而二者形成一個調(diào)控反饋回路[40](圖1)。雖然 TCDD誘導(dǎo)異物代謝酶(xenobiotic metabolizing enzymes,XMEs)的機(jī)理研究已很清楚,但像畸胎發(fā)生,免疫抑制等生物學(xué)效應(yīng)A HR是如何參與調(diào)控的有待進(jìn)一步研究??梢钥隙?TCDD的毒性作用是通過AHR通道激活靶基因所致[40]。

圖1 AHR通道的調(diào)控機(jī)制[40]

3.2 AHR對胚胎毒性的調(diào)控作用

A HR通道是海洋動物胚胎對 POPs物質(zhì)毒性調(diào)控的一個重要通道,且不同基因型其作用大小不同。Carney等[41]對斑馬魚進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn)它具有AHR1(zebrafish aryl hydrocarbon receptor 1)和AHR2(zebrafish aryl hydrocarbon receptor 2)兩個基因,其中,zfAHR2具有轉(zhuǎn)錄活性,在調(diào)節(jié) TCDD的胚胎毒性的過程中發(fā)揮主要作用,而zfAHR1不具有調(diào)節(jié)功能。如果被TCDD過度激活表達(dá)則會導(dǎo)致心臟形態(tài)和功能的改變,甚至死亡。另外,Yamauchi等[25]利用 TCDD對真鯛胚胎毒性試驗發(fā)現(xiàn):rsAHR2(red seabream AHR2)mRNA表達(dá)的水平與 TCDD存在劑量效應(yīng)關(guān)系,且rsAHR2和CYP1A mRNA間存在顯著正相關(guān);而 rsAHR1(red seabream A HR1)的表達(dá)不受影響,rsAHR1和CYP1A間也沒有這種關(guān)系。故可以看出,AHR2在海洋動物胚胎毒性調(diào)控過程中發(fā)揮重要作用,而AHR1的作用相對較小。Carney等[42]進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),斑馬魚胚胎毒性主要由zfARNT1(zebra fish aryl hydrocarbon receptor nuclear translocator 1)和zfA HR2進(jìn)行調(diào)節(jié),而zfAHR1和zfARN T2不具有調(diào)節(jié)功能,并且胚胎毒性不是通過zfCYP1A基因表達(dá)的增加來調(diào)節(jié)的。

另外,據(jù) Mimura等[40]報道,AHRR基因通過與ARNT形成異二聚體體與XREs作用,從而競爭性抑制AHR基因的活性。但是,最近 Evans等[43]發(fā)現(xiàn),雖然AHRR與靶基因異物應(yīng)答元件會有助于抑制AHR的功能;但不是通過與ARNT結(jié)合或與XREs結(jié)合來抑制AHR基因功能,這里可能存在另外一種作用機(jī)制來反轉(zhuǎn)抑制(transrepression)AHR的功能,即通過蛋白與蛋白相互作用的方式來進(jìn)行抑制AHR基因的功能。究竟是通過何種機(jī)理抑制的,這可借助于嗎啉寡聚核苷酸(morpholino oligonucleotides)等基因敲除技術(shù)來進(jìn)一步探索AHRR在胚胎毒理過程中的作用。那么胚胎又是如何應(yīng)對來自POPs物質(zhì)的毒害作用呢?Welker等[44]研究表明,細(xì)胞色素 P4501A(CYP1A)和血紅素加氧酶1(hmox1)基因產(chǎn)物在胚胎發(fā)育過程中對于抵抗這類外源毒性物質(zhì)的毒性具有重要作用。

綜上可知,A HR通道在海洋動物胚胎毒性調(diào)控過程中發(fā)揮著重要作用,但不同基因型在胚胎毒理調(diào)控過程中具有不同的作用,在海洋動物胚胎中AHR和ARNT分別由AHR2和ARNT1基因型來進(jìn)行調(diào)控,而A HRR哪種基因型的作用更大以及其它動物是否遵循相同的胚胎毒理調(diào)控機(jī)理目前還不清楚,有待更進(jìn)一步的研究。

3.3 毒性的協(xié)同作用

POPs的毒理調(diào)控是一個非常復(fù)雜的過程,除了與海洋動物種類,POPs物質(zhì)種類,作用的時空性有關(guān)外,AHR受體還可與雌激素受體、低氧誘導(dǎo)受體、核因子B以及視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤蛋白等信號通道相互作用[45];進(jìn)而改變細(xì)胞增殖,細(xì)胞周期阻滯或細(xì)胞凋亡的方向[46],最后表現(xiàn)特定的胚胎毒理效應(yīng)。Ramakrishnan等[47]利用雙酚-A對青鳉胚胎暴露24 h,發(fā)現(xiàn)胚胎發(fā)育,孵化和成熟時間提前,這是由于雙酚-A通過甲狀腺激素通道改變了胚胎全局發(fā)育進(jìn)程。當(dāng)暴露24~96 h時,發(fā)現(xiàn)CYP1A活性的抑制導(dǎo)致代謝的改變或增加A HR激動劑的半衰期,從而增強(qiáng)AHR的活性,揭示出AHR與甲狀腺激素通道間存在協(xié)同作用。另外,Timme-Laragy等[48]利用PAHs同系物對斑馬魚胚胎作用,發(fā)現(xiàn) PAHs同系物同時作用增加了胚胎毒性作用。綜上可知,在海洋動物胚胎POPs毒理調(diào)控過程中,不僅AHR受體與其它信號通道之間存在相互作用,而且 POPs同系物之間還存在協(xié)同作用。

4 展望

目前,POPs對海洋動物胚胎毒理的研究,主要集中在胚胎形態(tài)毒性,以及相關(guān)酶類的生理生化方面,其胚胎毒理機(jī)制研究較少。分子機(jī)理研究主要利用受到POPs污染的污水、沉積物和有害氣體這一類復(fù)合物作為研究對象;且集中于A HR通道的單個或少數(shù)幾個基因。實際上,POPs胚胎毒性作用會影響一系列相關(guān)毒理基因的表達(dá),從而產(chǎn)生胚胎毒性作用,最終表現(xiàn)出胚胎畸形或死亡。究竟哪些基因參與這一表達(dá)調(diào)控過程,以及它們相互之間的時空表達(dá)關(guān)系又是如何作用的,這一系列問題可望隨著分子生物學(xué)和分子生物技術(shù)的發(fā)展而不斷得到解決。

另外,中國海產(chǎn)品由于 POPs物質(zhì)含量超標(biāo)導(dǎo)致出口創(chuàng)匯受阻時有發(fā)生,解決這一問題的關(guān)鍵在于要對海水水質(zhì)進(jìn)行早期的有效監(jiān)控,這一問題需要從源頭抓起,而海洋動物(如貽貝)胚胎是一種非常靈敏有效的環(huán)境污染生物指示物,將其用來監(jiān)測海水水質(zhì)具有獨特的優(yōu)勢(胚胎量大,易獲取,檢測周期短,靈敏有效,且不受倫理觀念約束等)。同時,它還可用于毒性物質(zhì)的篩選以及藥物的臨床前篩選研究。已有研究表明,用牡蠣胚胎對廢水或海水進(jìn)行毒性遺傳分析,是一種評價海洋環(huán)境風(fēng)險的有效方法[49]。這些應(yīng)用都離不開胚胎毒理機(jī)制的研究,故持久性有機(jī)污染物對海洋動物胚胎毒理的研究具有重要意義。

[1]David O.什么是持久性有機(jī)物染物?[A].持久性有機(jī)污染物控制研討會論文集 [C].北京:國家環(huán)保局,2001.9.

[2]Swain W R.Human health consequences of consumption of fish contaminated with organochlorine compounds[J].Aquatic Toxicology,1988,11(3-4):357-377.

[3]李霜,李朝林,吳維皚.多氯聯(lián)苯與人體健康 [J].中華勞動衛(wèi)生職業(yè)病雜志,2005,23(4):316-319.

[4]朱才眾,熊鴻燕.環(huán)境持久性毒物研究進(jìn)展概述 [J].疾病控制雜志,2005,9(4):331-335.

[5]Kimura-Kuroda J,Nagata I,Kuroda Y.Disrupting effects of hydroxy-polychlorinated biphenyl(PCB)congeners on neuronal development of cerebellar Purkinje cells:A possible causal factor for developmental brain disorders?[J].Chemosphere,2007,67(9):412-420.

[6]Herr D W,Goldey S E,Crofton K M.Developmental exposure to aroclor 1254 produces low-frequency alterations in adult rat brainstem auditory evoked responses[J].Fundamental and Applied Toxicology,1996,33(1):120-128.

[7]Davila D R,Davs D P,Campbell K.Role of alterations in Ca2+-associated signaling pathways in the immunotoxicity of polycyclic aromatic-hydrocarbons[J].Journal of Toxicology and Environmental Health,1995,45(2):101-126.

[8]Den Besten P J,Herwig H J,Smaal A C,et al.Interference of polychlorinated biphenyls(Clophen A50)with gametogenesis in the sea star,Asterias rubensL.[J].Aquatic Toxicology,1990,18(4):231-246.

[9]Kodavanti P R S.Neurotoxicity of persistent organic pollutants:possible mode(S)of action and further considerations[J].Dose-Response,2005,3(3):273-305.

[10]甘居利,賈曉平,李純厚,等.南海北部陸架區(qū)3種魚類多氯聯(lián)苯含量分布特征 [J].熱帶海洋學(xué)報,2007,26(2):69-73.

[11]劉仁沿,吳世培,王斌.長江口以北沿海主要經(jīng)濟(jì)貝類中有機(jī)氯農(nóng)藥和多氯聯(lián)苯的分布及評價 [J].海洋環(huán)境科學(xué),1996,3:29-35.

[12]楊永亮,潘靜,李悅,等.青島近海沉積物PCBs的水平與垂直分布及貝類污染 [J].中國環(huán)境科學(xué),2003,23(5):515-520.

[13]Yang R Q,Yao Z W,Jiang G B,et al.HCH and DDT residues in molluscs from Chinese Bohai coastal sites[J].Marine Pollution Bulletin,2004,48(7,8):795-799.

[14]M?enp? ?K A,Penttinen O P,Kukkonen J V K.Pentachlorophenol(PCP)bioaccumulation and effect on heat production on salmon eggs at different stages of development[J].Aquatic T oxicology,2004,68(1):75-85.

[15]Broyles R H,Noveck M I.Uptake and distribution of 2,5,2′,5′-tetrachlorobiphenyl in developing lake trout[J].Toxicology and Applied Pharmacology,1979,50(2):291-298.

[16]Broyles R H,Noveck M I.Uptake and distribution of 2,4,5,2′,4′,5′-hexachlorobiphenyl in fry of lake trout and Chinook salmon and its effects on viability[J].Toxicology and Applied Pharmacology,1979,50(2):299-308.

[17]J?rgensen A,Giessing A M B,Rasmussen L J,et al.Biotransformation of polycyclic aromatic hydrocarbons in marine polychaetes[J].Marine Environmental Research,2008,65(2):171-186.

[18]Lange M,Gebauer W,Markl J,et al.Comparison of testing acute toxicity on embryo of zebrafish,Brachydanio rerio and RTG-2 cytotoxicity as possible alternatives to the acute fish test[J].Chemosphere,1995,30(11):2 087-2 102.

[19]Goldstone H M H,Stegeman J J.Molecular mechanisms of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin cardiovascular embryotoxicity[J].Drug Metabolism Reviews,2006,38(1,2):261-289.

[20]Teraoka H,Dong W,Ogawa S,et al.2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin toxicity in the zebrafish embryo:Altered regional blood flow and impaired lower jaw development[J].Toxicological Sciences,2002,65(2):192-199.

[21]Antkiewicz D S,Burns C G,Carney S A,et al.Heart malformation is an early response to TCDD in embryonic zebrafish[J].Toxicological Sciences,2005,84(2):368-377.

[22]Kammann U,Vobach M,Wosniok W.Toxic effects of brominated indoles and phenols on zebrafish embryos[J].Archives of Environmental Contamination and Toxicology,2006,51(1):97-102.

[23]Helder T.Effects of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzodioxin(TCDD)on early life stages of rainbow trout(Salmo gairdneriRichardson)[J].Toxicology,1981,19(2):101-112.

[24]Bellas J,Beiras R,Marińo-Balsa J C,et al.Toxicity of organic compounds to marine invertebrate embryos and larvae:A comparison between the sea urchin embryogenesis bioassay and alternative test species[J].Ecotoxicology,2005,14(3):337-353.

[25]Yamauchi M,Kim E Y,Iwata H,et al.Toxic effects of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD)in developing red seabream(Pagrus major)embryo:An association of morphological deformities with AHR1,AHR2 and CYP1A expressions[J].Aquatic Toxicology,2006,80(2):166-179.

[26]Saka M.Developmental toxicity of p,p′-dichlorodiphenyltrichloroethane,2,4,6-trinitrotoluene,their metabolites,and benzo[a]pyrene in xenopus laevis embryos[J].Environmental Toxicology and Chemistry,2004,23(4):1 065-1 073.

[27]Philips B H,Susman T C,Powell W H.Developmental differences in elimination of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD)during Xenopus laevis development[J].Marine Environmental Research,2006,62:34-37.

[28]Andreasen E A,Spitsbergen J M,Tanguay R L,et al.Tissue-specific expression of AHR2,ARNT2,and CYP1A in zebrafish embryos and larvae:Effects of developmental stage and 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin exposure[J].Soc Toxicology,2002,68(2):403-419.

[29]Lema S C,Schultz I R,Scholz N L,et al.Neural defects and cardiac arrhythmia in fish larvae following embryonic exposure to 2,2′,4,4′-tetrabromodiphenyl ether(PBDE 47)[J].Aquatic Toxicology,2007,82(4):296-307.

[30]Handley-Goldstone H M,Grow M W,Stegeman J J.Cardiovascular gene expression profiles of dioxin exposure in zebrafish embryos[J].Toxicological Sciences,2005,85(1):683-693.

[31]Hansson M C,Wittzell H,Persson K,et al.Characterization of two distinct aryl hydrocarbon receptor(AhR2)genes in Atlantic salmon(Salmo salar)and evidence for multiple AhR2 gene lineages in salmonid fish[J].G ene,2003,303:197-206.

[32]Hansson M C,Wittzell H,Persson K,et al.Unprecedented genomic diversity of AhR1 and AhR2 genes in Atlantic salmon(Salmo salarL.)[J].Aquatic Toxicology,2004,68(3):219-232.

[33]Kim E Y,Hahn M E.cDNA cloning and characterization of an aryl hydrocarbon receptor from the harbor seal(Phoca vitulina):a biomarker of dioxin susceptibility?[J].Aquatic Toxicology,2002,58(1-2):57-73.

[34]Billiard S M,Timme-Laragy A R,Wassenberg D M,et al.The role of the aryl hydrocarbon receptor pathway in mediating synergistic developmental toxicity of polycyclic aromatic hydrocarbons to zebrafish[J].Toxicological Sciences,2006,92(2):526-536.

[35]Hahn M E.The aryl hydrocarbon receptor:A com-parative perspective[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part C:Pharmacology,Toxicology and Endocrinology,1998,121(1-3):23-53.

[36]Mandal P K.Dioxin:a review of its environmental effects and its aryl hydrocarbon receptor biology[J].Journal ofComparative Physiology B:Biochemical,Systemic,and Environmental Physiology,2005,175(4):221-230.

[37]Perdew G H.Association of the Ah receptor with the 90-kDa heat shock protein[J].Journal of Biological Chemistry,1988.263(27):13 802-13 805.

[38]Carver L A,Bradfield C A.Ligand-dependent Interaction of the aryl hydrocarbon receptor with a novel immunophilin homolog in Vivo[J].Journal of Biological Chemistry,1997,272(17):11 452-11 456.

[39]Kazlauskas A,Poellinger L,Pongratz I.Evidence that the Co-chaperone p23 regulates ligand responsiveness of the dioxin(aryl hydrocarbon)receptor[J].Journal ofBiological Chemistry,1999,274(19):13 519-13 524.

[40]Mimura J,Fujii-Kuriyama Y.Functional role of AhR in the expression of toxic effects by TCDD[J].Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-G eneral Subjects,2003,1 619(3):263-268.

[41]Carney S A,Chen J,Burns C G,et al.Aryl hydrocarbon receptor activation produces heart-specific transcriptional and toxic responses in developing zebrafish[J].Molecular Pharmacology,2006,70(2):549-561.

[42]Carney S A,Prasch A L,Heideman W,et al.Understanding dioxin developmental toxicity using the zebrafish model[J].Birth Defects Research Part a-Clinical and Molecular Teratology,2006,76(1):7-18.

[43]Evans B R,Karchner S I,Allan L L,et al.Repression of aryl hydrocarbon receptor(AHR)signaling by AHR repressor:Role of DNA binding and competition for AHR nuclear translocator[J].Mol Pharmacol,2008,73(2):387-398.

[44]Welker D,Stetefeld N,Schirmer K,et al.The role of cyp1a and heme oxygenase 1 gene expression for the toxicity of 3,4-dichloroaniline in zebrafish(Danio rerio)embryos[J].Aquatic Toxicology,2008,86(1):112-120.

[45]Carlson D B,Perdew G H.A dynamic role for the Ah receptor in cell signaling[J].J Biochem Mol Toxicol,2002,16:317-325.

[46]Marlowe J L,Puga A.Aryl hydrocarbon receptor,cell cycle regulation,toxicity and tumorigenesis[J].J Cell Biochem,2005,96:1 174-1 184.

[47]Ramakrishnan S,Wayne N L.Impact of bisphenol-A on early embryonic development and reproductive maturation[J].Reproductive Toxicology,2008,25(2):177-183.

[48]Timme-Laragy A R,Cockman C J,Matson C W,et al.Synergistic induction of AHR regulated genes in developmental toxicity from co-exposure to two model PAHs in zebrafish[J].Aquatic Toxicology,2007,85(4):241-250.

[49]Wessel N,Rousseau S,Caisey X,et al.Investigating the relationship between embryotoxic and genotoxic effects of benzo[alpha]pyrene,17 alpha-ethinylestradiol and endosulfan onCrassostrea gigasembryos[J].Aquatic Toxicology,2007,85(2):133-142.

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