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北京地區(qū)棗瘋病植原體16S rDNA基因序列分析

2010-07-09 13:00林文力牟海青廖曉蘭
湖南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2010年11期
關(guān)鍵詞:瘋病原體株系

林文力,牟海青,廖曉蘭

(1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物安全科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南 長沙 410128;2.中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院動(dòng)植物檢疫研究所,北京 100029)

植原體(Phytoplasma),原稱類菌原體(Mycoplasma-like orpanism,簡稱MLO)是一類無細(xì)胞壁、存在于植物篩管內(nèi)的專性寄生細(xì)菌,主要依靠葉蟬和飛虱等從韌皮部取食的昆蟲傳播,也可由菟絲子和人工嫁接傳病,常引起植物從枝、黃化、花變?nèi)~、頂枯等癥狀[1]。綜合世界各地的報(bào)道,植原體可引起多達(dá)1 000余種植物的系統(tǒng)性病害,涵蓋各類農(nóng)作物、園藝、花卉、果樹和林木等病害。其中,我國報(bào)道的有100多種,給經(jīng)濟(jì)作物造成了巨大損失[2]。由于植原體尚不能進(jìn)行體外培養(yǎng),故對(duì)其生物學(xué)特性研究較少。近年來,隨著分子生物學(xué)的迅速發(fā)展,核酸雜交、血清學(xué)和PCR等技術(shù)的廣泛應(yīng)用,極大改善了研究者對(duì)植原體鑒定和分類的手段[3]。根據(jù)植原體通用引物和特異性引物可以特異地?cái)U(kuò)增出16S rDNA基因序列,這是植原體分類的重要參考依據(jù),也是被國際上普遍接受的植原體鑒定分類方法[4]。

棗樹在我國廣泛栽培,遍布全國各地,是一種重要的經(jīng)濟(jì)作物。棗瘋?。↗ujube witches′-broom,JWB)是由植原體引起的一類病害,棗樹一旦患病,通常在2~3 a內(nèi)喪失產(chǎn)量并很快導(dǎo)致植株死亡。1981年,王祈楷等通過系統(tǒng)比較,確定了棗瘋病是由植原體侵染所引起的,而不是病毒類或者病毒與植原體的復(fù)合侵染所致。棗瘋病發(fā)病過程從外觀上看可分為以下幾個(gè)階段:健康葉片→花葉→變態(tài)花蕾→花變?nèi)~→叢枝[5]。

本研究對(duì)我國北京地區(qū)棗瘋病植原體16S rDNA基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增及序列測(cè)定,并與已知的植原體序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹,明確北京地區(qū)棗瘋病的分類地位,以期為棗瘋病植原體的遺傳變異、致病機(jī)理等研究提供參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

發(fā)病棗樹樣品采自北京昌平區(qū)西峰山村小棗林??寺≥d體PMD18-T、限制性內(nèi)切酶及其它酶類等分子生物學(xué)試劑均購自TaKaRa公司;PCR產(chǎn)物回收試劑盒、質(zhì)?;厥赵噭┖匈徸员本┤浇鹕锟萍加邢薰?。

1.2 植物總DNA提取

照顧沛雯等[6]的方法提取植物樣品的總DNA,于-20℃環(huán)境下保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3 PCR擴(kuò)增、克隆及序列測(cè)定

利用Gundersen等[7]設(shè)計(jì)的通用引物,通過巢式PCR擴(kuò)增植原體16S rDNA。PCR以植株總DNA為模板,以 R16F2n(5′-GAAACGACTGCTAAGACTG G-3′)和 R16R2(5′-TGACGGGCGGTGTGTACAAA CCCCG-3′)引物對(duì)進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增條件為:94℃預(yù)處理 5 min;94℃ 40s,55℃ 1 min,72℃ 2 min,共 35 個(gè)循環(huán);最后72℃10 min。1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR產(chǎn)物。PCR擴(kuò)增出的目標(biāo)產(chǎn)物純化回收,克隆入PMD18-T載體中,通過PCR篩選陽性克隆,序列測(cè)定委托北京諾賽基因組研究中心有限公司完成。

1.4 序列分析及同源性比較

利用GenBank數(shù)據(jù)庫中的BLAST程序?qū)y(cè)序結(jié)果進(jìn)行同源性檢索(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi),通過 DNAMAN5.2.2及 MEGA4.1軟件進(jìn)行同源性比較及系統(tǒng)關(guān)系樹的構(gòu)建。

2 結(jié)果與分析

2.1 PCR檢測(cè)結(jié)果

棗瘋病感病植株總DNA經(jīng)直接PCR及巢式PCR擴(kuò)增后,得到大小約1.2 kb的特異片段,片段大小與引物設(shè)計(jì)的相符,而健康植株和雙蒸水對(duì)照均未出現(xiàn)特異擴(kuò)增帶(圖1)。將此植原體命名為棗瘋病西峰山棗株系(JWB-XFSZ)。

2.2 植原體16S rDNA片段的序列分析

將16S rDNA目的片段克隆后測(cè)序,結(jié)果表明北京昌平區(qū)西峰山村小棗(JWB-XFSZ)的16S rDNA擴(kuò)增片段含有1248個(gè)核苷酸(表1),G+C的含量為45.7%。利用GenBank中的BLAST程序?qū)y(cè)序結(jié)果進(jìn)行同源性檢索,北京昌平地區(qū)棗瘋病與16SrⅤ組各植原體的16S rDNA基因序列同源性達(dá)98.5%以上,其中與16S rⅤ組的榆樹黃化有98.96%、與懸鉤子叢枝病有98.64%的同源性。JWB-XFSZ與16SrV-C亞組的棗瘋病韓國株系(登錄號(hào)AB052879)同源性最高,達(dá)99.51%,而與其它16Sr其它各組的同源性均在95%以下,表明JWB-XFSZ和棗瘋病韓國株系一樣應(yīng)歸屬于16SrV-C亞組。

表1 JWB-XFSZ 16S rDNA基因的測(cè)序結(jié)果

2.3 棗瘋病植原體系統(tǒng)樹構(gòu)建與分析

將已登陸Genebank的部分植原體16S rDNA基因序列下載下來,與JWB-XFSZ所測(cè)定的16S rDNA序列進(jìn)一步進(jìn)行同源性分析,利用MEGA4.1軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2)。由系統(tǒng)發(fā)育樹可以看出,JWB-XFSZ與JWB不同地區(qū)的株系;與Elm yellows、Honeylocust yellows、Cherry lethal yellows、Hemp fiber witches-broom、Peach yellows以及 Paper mulberry witches-broom等16SrⅤ組的植原體在同一個(gè)進(jìn)化枝上,說明JWB-XFSZ與16SrⅤ組的親緣關(guān)系最近。

圖2 構(gòu)建28種植原體株系16S rDNA基因核苷酸序列同源關(guān)系進(jìn)化樹

3 討 論

16S rDNA是原核生物染色體基因組中的一種rDNA編碼區(qū)序列,在進(jìn)化中高度保守,常作為原核生物系統(tǒng)發(fā)育及分類研究的標(biāo)準(zhǔn)方法。本研究運(yùn)用分子生物學(xué)的方法對(duì)北京西峰山小棗棗瘋病植原體的16S rDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行克隆、序列測(cè)定及同源關(guān)系分析,確定了該植原體株系的分類地位。

目前,國內(nèi)外學(xué)者對(duì)棗瘋病植原體病原做了大量研究,以期為棗瘋病的防治提供參考依據(jù)。Seemüller等[8]認(rèn)為植原體病害雖發(fā)生在世界各地,但不同組及亞組的植原體在分布上存在明顯的地區(qū)差異,如16S rV-A主要發(fā)生在北美國家,16S rV-C主要發(fā)生在歐洲,而16S rV-B主要發(fā)生在亞洲。從本研究擴(kuò)增到的棗瘋病植原體16S rDNA基因來看,JWB-XFSZ 株系與 JWB-henan、JWB-Zahuangdazao、JWB-xiangshan、JWB-Junzao 以 及JWB-Kor各株系均只有幾個(gè)堿基的差異,說明棗瘋病植原體暫時(shí)還未存在株系上的變化。JWB-XFSZ株系與JWB-Kor韓國株系的差異最近,說明北京西峰山棗瘋病植原體與韓國報(bào)道的植原體是同一種病害。在本研究過程中在病株樣品中未擴(kuò)增到其他植原體,說明未存在復(fù)合侵染的現(xiàn)象。

[1]Bai X,Zhang J,Ewing A,et al.Living with genome instability:the adaptation of phytoplas-mas to diverse environments of their insect and plant host [J].Journal of Bacteriology,2006,188:3682-3696.

[2]李 永,田國忠,樸春根,等.我國幾種植物上植原體的快速分子鑒別與鑒定的研究[J].植物病理學(xué)報(bào),2005,35(4):293-299.

[3]車海彥,羅大全,符瑞益,等.海南長春花黃化病植原體的16S rDNA 序列分析研究[J].植物病理學(xué)報(bào),2009,39(2):212-216.

[4]Wei W,Robert E,Davis I-M,et al.Computer-simulated RFLP analysis of 16s rRNA genes:identification of ten new phytoplasma groups[J].Int J Syst Evol Microbiol,2007,57:1855-1867.

[5]侯曉杰,李正楠,冉隆賢,等.越冬病枝水培與PCR結(jié)合檢測(cè)棗瘋病植原體的存活動(dòng)態(tài)[J].中國森林病蟲,2007,(4):18.

[6]顧沛雯,安鳳秋,吳云鋒,等.小麥藍(lán)矮病植原體16S rDNA基因片段的比較分析[J].植物病理學(xué)報(bào),2005,(5):403-409.

[7]Gundersen D E,Lee IM.Ultrasensitive detection of phytoplasm as by nested-PCR assays using two universal primer pairs[J].Phytopatholo-gia Mediterranea,1996,35:144-151.

[8]Seemüller E,Marcone C,Lauer U,et al.Current status of molecular classification of the phytoplasmas [J].Journal of Plant Pathology,1998,80(1):3-26.

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