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HPLC法同時(shí)測定麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A的含量Δ

2010-09-10 05:13胥秀英鄭一敏傅善權(quán)韓玉梅楊艷紅重慶理工大學(xué)藥學(xué)與生物工程學(xué)院重慶市400050
中國藥房 2010年39期
關(guān)鍵詞:慈溪麥冬皂苷

胥秀英,鄭一敏,傅善權(quán),韓玉梅,楊艷紅(重慶理工大學(xué)藥學(xué)與生物工程學(xué)院,重慶市 400050)

HPLC法同時(shí)測定麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A的含量Δ

胥秀英*,鄭一敏,傅善權(quán),韓玉梅,楊艷紅(重慶理工大學(xué)藥學(xué)與生物工程學(xué)院,重慶市 400050)

目的:建立以高效液相色譜法測定麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量的方法。方法:色譜柱為Waters C18(150 mm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相為乙腈-水(35∶65),流速為1.0 mL·min-1,檢測波長為208 nm,柱溫為室溫。結(jié)果:麥冬皂苷Ra、慈溪麥冬皂苷A的進(jìn)樣量分別在1.88~9.40 μg(r=0.999 6)、1.96~9.80 μg(r=0.999 5)范圍內(nèi)與各自峰面積積分值呈良好線性關(guān)系;平均回收率分別為100.2%、99.7%,RSD均為1.7%(n=6)。結(jié)論:本方法簡便、快速、準(zhǔn)確,可用于麥冬藥材的質(zhì)量控制。

麥冬;高效液相色譜法;麥冬皂苷Ra;慈溪麥冬皂苷A;含量測定

Δ重慶市科技攻關(guān)計(jì)劃項(xiàng)目(CSTC2008AC5029,CSTC2008 AB5116)

*研究員。研究方向:天然藥物的研發(fā)。電話:023-68662335。E-mail:yxx651116@cqut.edu.cn

麥冬為百合科沿階草屬植物麥冬Ophiopogon japonicus(Thunb.)Ker-Gaw1.的肉質(zhì)塊莖[1,2],主產(chǎn)于浙江、四川等地,為常用中藥品種,用于治療冠心病、心絞痛等癥[3]。其主要化學(xué)成分有甾體皂苷、多糖、高異黃酮類、氨基酸等,其中麥冬甾體皂苷作為主要有效成分之一[4],具有明顯的抗缺氧、抗誘變及抑制腫瘤等活性。姚令文等[5]采用高效液相色譜-蒸發(fā)光散射檢測器(HPLC-ELSD)法測定了川麥冬中麥冬皂苷D’的含量,但至今未見同時(shí)測定麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量的報(bào)道。因此,筆者采用HPLC法建立了同時(shí)測定麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量的方法,該方法簡便、快速、準(zhǔn)確,可用于麥冬藥材的質(zhì)量控制。

1 儀器與材料

1.1 儀器

HPLC儀,包括1525泵、2487雙波長檢測器、Breeze工作站(美國Waters公司)。

1.2 試藥

乙腈為色譜純,其它試劑均為市售分析純;麥冬皂苷Ra、慈溪麥冬皂苷A標(biāo)準(zhǔn)品(本實(shí)驗(yàn)室制備,批號分別為080602、080721,經(jīng)HPLC面積歸一化法測定含量分別為98.4%、100%);麥冬藥材購于重慶市藥材市場,經(jīng)本院傅善權(quán)副主任藥師鑒定為麥冬[O.japonicus(Thunb.)Ker-Gaw1.]。

2 方法與結(jié)果

2.1 色譜條件[6]

色譜柱:Waters C18(150 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈-水(35∶65);流速:1.0 mL·min-1;檢測波長:208 nm;柱溫:室溫。色譜見圖1。

圖1 高效液相色譜圖A.標(biāo)準(zhǔn)品;B.供試品;1.慈溪麥冬皂苷A;2.麥冬皂苷RaFig 1 HPLC chromatogramsA.reference substance;B.test sample;1.cixi-ophiopogon A;2.ophiopogon Ra

2.2 溶液的制備[7]

2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液 精密稱取麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A標(biāo)準(zhǔn)品,制成麥冬皂苷Ra濃度為0.94 g·L-1和慈溪麥冬皂苷A濃度為0.98 g·L-1的混合甲醇溶液,作為標(biāo)準(zhǔn)品貯備液。再分別取該貯備液適量,用甲醇稀釋制成含麥冬皂苷Ra分別為0.094、0.188、0.282、0.376、0.470 g·L-1和慈溪麥冬皂苷A分別為0.098、0.196、0.294、0.392、0.490 g·L-1的混合液,0.45 μm濾膜濾過,備用。

2.2.2 供試品溶液 精密稱取經(jīng)干燥粉碎過40目篩的麥冬藥材10 g,分別加入藥材量10、8、7倍的水于80~90℃煎煮3次,收集濾液,冷后過預(yù)先處理好的大孔吸附樹脂柱[7],再用80%乙醇洗脫,收集洗脫液,減壓濃縮至干,稱量得提取物。取該提取物5.0 mg,用甲醇溶解制成5.0 mg·mL-1的溶液,0.45 μm濾膜濾過,備用。

2.3 線性關(guān)系考察

分別精密取“2.2.1”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)品混合液20 μL進(jìn)樣,以色譜峰峰面積(Y)對標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度(X)進(jìn)行線性回歸。結(jié)果,麥冬皂苷Ra的線性方程為Y=77 247X+4 730(r=0.999 6),線性范圍為1.88~9.40 μg;慈溪麥冬皂苷A的線性方程為Y=75 740X+7 273.7(r=0.999 5),線性范圍為1.96~9.80 μg。

2.4 最低檢測限的測定

在“2.1”項(xiàng)下色譜條件下,按信噪比>3時(shí)測定最低檢測限。結(jié)果,麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A的最低檢測限分別為6、10 ng。

2.5 精密度試驗(yàn)

取“2.2.1”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)品溶液(含麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A分別為0.282 g·L-1和0.294 g·L-1),分別在“2.1”項(xiàng)下色譜條件下連續(xù)進(jìn)樣10 μL,共進(jìn)樣6次。結(jié)果,麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A峰面積的RSD分別為1.6%和1.9%,表明儀器精密度良好。

2.6 穩(wěn)定性試驗(yàn)

取“2.2.2”項(xiàng)下供試品溶液,分別在0、2、4、8、16 h各進(jìn)樣10 μL,照上述方法測定。結(jié)果,麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A峰面積的RSD分別為1.4%和1.6%,表明供試品溶液在16 h內(nèi)穩(wěn)定。

2.7 重復(fù)性試驗(yàn)

取同一批麥冬藥材樣品,按“2.2.2”項(xiàng)下方法平行制備6份供試品溶液,分別進(jìn)樣10 μL,照上述方法測定。結(jié)果,麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量的RSD分別為2.5%和2.2%,表明方法重復(fù)性較好。

2.8 加樣回收率試驗(yàn)

取同一批麥冬藥材6份,分別加入麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A標(biāo)準(zhǔn)品,按“2.2.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在“2.1”項(xiàng)下色譜條件下進(jìn)樣10 μL,計(jì)算加樣回收率,結(jié)果見表1。

表1 加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果(n=6)Tab 1Results of recovery test(n=6)

2.9 樣品含量測定

取3批麥冬藥材樣品,分別按“2.2.2”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在“2.1”項(xiàng)下色譜條件下進(jìn)樣10 μL(3次平行),測定峰面積,由線性方程計(jì)算3批麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A的含量,結(jié)果見表2。

表2 麥冬藥材中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量測定結(jié)果(n=3)Tab 2 Content determination of ophiopogon Ra and cixiophiopogonAin O.japonicus(n=3)

3 討論

本試驗(yàn)曾采用超聲、回流提取樣品直接進(jìn)樣,但由于多糖等雜質(zhì)較多,導(dǎo)致色譜干擾較大;而采用水提取大孔樹脂吸附,可以除去大量非皂苷類雜質(zhì),而且成本低,無污染物排出,是一種理想的皂苷類提取方法。

麥冬為2005年版《中國藥典》(一部)收載的品種,原標(biāo)準(zhǔn)中只有顯色鑒別反應(yīng),缺乏有效成分定性和定量檢測。本文重點(diǎn)對麥冬藥材中2種有效成分進(jìn)行了定量測定,可為麥冬藥材的質(zhì)量控制提供依據(jù)。

[1]肖培根.新編中藥志(第2卷)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2002:481.

[2]陽美平,吳 皓,尹 蓮,等.麥冬皂苷和多糖類成分的研究進(jìn)展[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2008,26(10):2 170.

[3]王建中,陳小兵,王鋒鵬,等.川麥冬皂苷類化學(xué)成分的研究[J].有機(jī)化學(xué),2008,28(9):1 620.

[4]莫正紀(jì),江光池,冉 蘭,等.麥冬有效成分的藥理研究[J].華西藥學(xué)雜志,1991,6(3):13.

[5]姚令文,王鋼力,王 峰,等.HPLC-ELSD法測定川麥冬中麥冬皂苷D’的含量[J].中草藥,2004,35(12):1 419.

[6]關(guān)穎麗,劉建宇,尹 虹.D101型大孔吸附樹脂在分離純化三萜皂苷方面的應(yīng)用[J].中國藥房,2008,19(30):2 399.

[7]胥秀英,鄭一敏,傅善權(quán),等.麥冬須根與麥冬塊根中麥冬皂苷Ra和慈溪麥冬皂苷A含量比較[J].中國中藥雜志,2009,34(19):2 531.

Content Determination of Ophiopogon Ra and Cixi-ophiopogon A fromOphiopogon japonicusby HPLC

XU Xiu-ying,ZHENG Yi-min,F(xiàn)U Shan-quan,HAN Yu-mei,YANG Yan-hong(College of Pharmaceutical and Biological Engineering,Chongqing University of Technology,Chongqing 400050,China)

OBJECTIVE:To determine the contents of ophiopogon Ra and cixi-ophiopogon A fromOphiopogon japonicusby HPLC.METHODS:The determination was performed on Waters C18(150 mm×4.6 mm,5μm)column with mobile phase consisted of acetonitrile-water(35 ∶65)at flow rate of 1.0 mL·min-1.The detection wavelength was set at 208 nm and the column temperature was room temperature.RESULTS:The linear range of ophiopogon Ra was 1.88~9.40 μg(r=0.999 6)with an average recovery of 100.2%(RSD=1.7%,n=6).The liner range of cixi-ophiopogon A was 1.96~9.80 μg(r=0.999 5)with an average recovery of 99.7%(RSD=1.7%,n=6).CONCLUSION:The method is simple,rapid and accurate for the quality control ofO.japonicus.

Ophiopogon japonicus;HPLC;Ophiopogon Ra;Cixi-ophiopogon A;Content determination

R284.1;R927.2

A

1001-0408(2010)39-3704-02

2009-11-02

2010-03-25)

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