韓瑞娟, 董立堯, 李 俊, 張宏軍(.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院農(nóng)藥科學(xué)系,農(nóng)業(yè)部作物病蟲害監(jiān)測(cè)與防控重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京 0095;.農(nóng)業(yè)部農(nóng)藥檢定所生物測(cè)定室,北京 0006)
日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈代謝抗性的初步研究
韓瑞娟1, 董立堯1, 李 俊1, 張宏軍2
(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院農(nóng)藥科學(xué)系,農(nóng)業(yè)部作物病蟲害監(jiān)測(cè)與防控重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京 210095;2.農(nóng)業(yè)部農(nóng)藥檢定所生物測(cè)定室,北京 100026)
為了明確日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈(haloxyfop-R-methyl)的代謝抗性機(jī)理,研究了抗性和敏感生物型體內(nèi)細(xì)胞色素P450還原酶(cytochrome P-450 monooxygenases,P450)和谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(glutathione-S-transferases,GSTs)的活性差異。結(jié)果表明,未用藥劑處理時(shí),抗性日本看麥娘P450與GSTs的活性均高于敏感日本看麥娘。高效氟吡甲禾靈莖葉噴霧處理2 d后,敏感植株反應(yīng)劇烈,P450與GSTs活性均呈現(xiàn)急劇的變化趨勢(shì),而抗性種群的變化趨勢(shì)平緩。處理后第6 d,敏感種群較抗性種群先出現(xiàn)下降趨勢(shì),其活性也明顯低于抗性種群。處理后第10 d活性均降到最低,并且依然低于施藥初期。從而可以得出:高效氟吡甲禾靈被抗性日本看麥娘體內(nèi)的細(xì)胞色素P450還原酶催化,經(jīng)過羥化作用迅速解毒,并在GSTs的催化下形成了無毒或低毒的化合物,使其免受傷害。表明代謝酶活性增強(qiáng)是日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈產(chǎn)生抗性的機(jī)理之一。
日本看麥娘; 高效氟吡甲禾靈; 代謝; 抗性;P450; GSTs
日本看麥娘(Alopecurusjaponicus)是我國(guó)油菜田的一種惡性禾本科雜草,是制約油菜豐產(chǎn)豐收的主要因素。高效氟吡甲禾靈(haloxyfop-R-methyl)活性高,殺草譜廣,選擇性強(qiáng),是油菜田防除一年生禾本科雜草的主導(dǎo)藥劑。由于高效氟吡甲禾靈的連年廣泛使用,近年有報(bào)道稱日本看麥娘對(duì)其產(chǎn)生了明顯的抗藥性[1]。
關(guān)于抗性機(jī)制的研究,目前主要有兩種:一是靶標(biāo)酶ACCase結(jié)構(gòu)改變,從而對(duì)藥劑不敏感;二是對(duì)除草劑解毒代謝能力的增強(qiáng)。Brown等報(bào)道,鼠尾看麥娘(Aloecurusmyosuroides)ACCase中異亮氨酸突變?yōu)榱涟彼崾瞧鋵?duì)烯禾啶(sethoxydim)產(chǎn)生抗性的原因[2]。Hall等研究表明,英國(guó)種群的鼠尾看麥娘對(duì)禾草靈(diclofop-methyl)和噁唑禾草靈(fenoxaprop-p-ethyl)產(chǎn)生抗性,在某種程度上是由于其對(duì)這兩種藥劑的代謝增強(qiáng)[3]。據(jù)報(bào)道,抗吡氟禾草靈(fluazifop-p-butyl)的馬唐(Digitariasanguinalis)生物型經(jīng)14C標(biāo)記顯示:吡氟禾草靈在其體內(nèi)的吸收和輸導(dǎo)與敏感型沒有差異,但在抗性馬唐體內(nèi)能被快速代謝為其他無毒物質(zhì)。顯然,這種代謝能力的增強(qiáng)在抗性馬唐體內(nèi)起著重要作用[4]。
在雜草對(duì)除草劑的解毒代謝過程中有兩個(gè)酶十分重要:細(xì)胞色素P450還原酶(cyt P450)[5-6]和谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GSTS )[7-8]。
日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈的代謝抗性機(jī)理未見報(bào)道。因此本文旨在通過測(cè)定敏感及抗性日本看麥娘細(xì)胞色素P450還原酶和GSTs的活性,明確日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈的抗藥性是否與代謝增強(qiáng)相關(guān),從而揭示其代謝抗性機(jī)理,并為制定油菜田惡性雜草日本看麥娘的防除策略和延緩抗性種群的發(fā)展提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 供試材料
在安徽、上海、江蘇、浙江等我國(guó)油菜田主產(chǎn)區(qū)采集有代表性的日本看麥娘成熟種子。其采集地點(diǎn)有:(A)句容油菜田;(B)合肥三十崗油菜田;(C)句容休閑田;(D)江蘇阜寧;(E)常州市武進(jìn)休閑田;(F)江都休閑田;(G)江都油菜田;(H)浙江紹興油菜田;(I)滁州休閑田;(J)金壇市薛坪上陽(yáng)油菜田;(K)金壇市金城油菜田;(L)上海南匯區(qū)油菜田;(M)金壇市開發(fā)區(qū)休閑田;(N)常州市武進(jìn)油菜田;(O)金壇市薛坪上陽(yáng)休閑田。
1.2 不同種群日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈抗藥性水平的測(cè)定
采用種子生物測(cè)定法。將40粒預(yù)先經(jīng)低溫浸泡過的日本看麥娘種子放于鋪有一層濾紙的培養(yǎng)皿內(nèi),加入5 mL高效氟吡甲禾靈藥液,置于光照培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)(光照:12 h。溫度:白天18 ℃,晚上15 ℃)。藥劑處理13 d后,測(cè)量芽長(zhǎng),計(jì)算日本看麥娘萌發(fā)的抑制中劑量(ED50),根據(jù)ED50值確定抗性及敏感種群。設(shè)清水為對(duì)照。重復(fù)4次。經(jīng)過一系列試驗(yàn)得出最適的藥劑劑量(表1)。
表1 用于種子生物測(cè)定的藥劑劑量
相對(duì)抗性倍數(shù)=不同地區(qū)日本看麥娘種群的ED50/敏感日本看麥娘種群的ED50
1.3 細(xì)胞色素P450還原酶活性測(cè)定
1.3.1 供試材料的準(zhǔn)備 將土與沙按2 ∶1混合均勻,裝入直徑為9 cm的塑料盆缽內(nèi),每盆播30粒低溫浸泡過的日本看麥娘種子,置于光照培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),培養(yǎng)條件同1.2。出苗后每盆定苗20株。3周后日本看麥娘長(zhǎng)至3~4葉期,用高效氟吡甲禾靈97.2 mg/m2進(jìn)行莖葉噴霧處理。噴霧采用農(nóng)業(yè)部南京農(nóng)業(yè)機(jī)械化研究所生產(chǎn)的3WPSH-500D型生測(cè)噴霧塔,圓盤直徑50 cm,主軸轉(zhuǎn)動(dòng)速度6 r/min,噴頭孔徑0.3 mm,噴霧壓力0.3 MPa,霧滴直徑100 μm,噴頭流量90 mL/min。分別在處理后第1 d、2 d、3 d、6 d、8 d、10 d采集樣品。設(shè)清水為對(duì)照。
1.3.2 細(xì)胞色素P450微粒體的提取 取約5 cm高的幼苗1.00 g,立即用10 mmol/L的Na2S2O4浸洗,用沙布吸干后放入液氮中。在預(yù)冷的研缽中加0.5 g聚乙烯吡咯烷酮(PVP-40)和1.5 mL提取緩沖液(0.1 mol/L磷酸,pH值7.5,10%甘油,0.1%BSA,5 mmol/L DTT,1 mmol/L LiCO3)研磨,勻漿后于10 000 g離心20 min,取上清液于100 000 g超速離心80 min,將沉淀的微粒體部分懸浮于適當(dāng)體積的0.1 mol/L磷酸緩沖液(含10%甘油,1.5 mmol/L巰基乙醇,pH值8.5),貯存于-20 ℃冰箱備用。以上操作均在0~4 ℃條件下進(jìn)行[9]。
1.3.3 細(xì)胞色素P450還原酶的活性測(cè)定 參照Feng等[10]的方法。3 mL反應(yīng)混合液中含有2.8 mL磷酸緩沖液、酶液100 μL、5 mg/mL細(xì)胞色素C 100 μL。樣本比色杯中加入5 mg/mL還原型輔酶Ⅱ(NADPH)0.02 mL啟動(dòng)反應(yīng),立即混勻。另取3 mL混合液加入與NADPH等量的緩沖液作為對(duì)照。用分光光度計(jì)測(cè)定550 nm處的光吸收值A(chǔ),每分鐘測(cè)定1次,連續(xù)測(cè)定3次。以摩爾消光系數(shù)21 (mmol/L)-1·cm-1來計(jì)算活性。公式如下:
蛋白活性=D×1 000/(21×C)
其中D為吸光值,C為稀釋后樣品的蛋白質(zhì)濃度(mg/mL),蛋白活性單位為nmol/(min·mg)。
P450相對(duì)活性為P450施藥活性與同期對(duì)照活性的比值。
試驗(yàn)平行測(cè)定3次。
1.4 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GSTs)活性測(cè)定
1.4.1 供試材料的準(zhǔn)備 同1.3.1。
1.4.2 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GSTs)的提取 取莖葉組織0.5 g在液氮中冷凍,并快速研磨成粉末。加入pH值7.5,0.1 mol/L Tris-HCL,1 mmol/L的EDTA,14 mmol/L的β-巰基乙醇,7.5%的PVP-40,并用雙層紗布過濾。過濾后組織勻漿離心(4 ℃,15 000 g,20 min)。上清液用0.1倍體積的硫酸魚精蛋白處理后,重新離心。最后用加入硫酸銨至飽和度為80%,如前所述條件下離心,所得蛋白質(zhì)顆粒在-20 ℃下保存。上述蛋白提取物用2 mmol/L的磷酸鉀緩沖液(pH值6.8)鹽析,過Sephadex G-25柱子,收集餾分。調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)濃度至10 mg/mL,以備測(cè)定酶的活性[11]。
1.4.3 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GSTs)的活性測(cè)定 參照J(rèn)ohn[12]、吳進(jìn)才等[13]方法。在3 mL Tris-HCl緩沖液(0.1 mol/L,pH值8,含25 mmol/L還原性谷胱甘肽)中加0.1 mL酶液,25 ℃保溫10 min,加入0.1 mL無水乙醇配制的13 mmol/LCDNB(2,4-二硝基氯苯),反應(yīng)10 min后,于340 nm處測(cè)得D值。以摩爾消光系數(shù)9.5 (mmol/L)-1·cm-1來計(jì)算活性。公式如下:
蛋白活性=D×1 000/(9.5×C)
其中D為吸光值,C為稀釋后樣品的蛋白質(zhì)濃度(mg/mL),蛋白活性單位為nmol/(min·mg)。
GSTs相對(duì)活性為GSTs施藥活性與同期對(duì)照活性的比值。試驗(yàn)平行測(cè)定3次。
1.5 蛋白含量測(cè)定
參照Bradford(1976)[14]考馬斯亮藍(lán)G-250染色法測(cè)定,以牛血清蛋白(BSA)為標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.6 數(shù)據(jù)處理
用DPS軟件數(shù)量型數(shù)據(jù)分析法分別求出高效氟吡甲禾靈對(duì)不同日本看麥娘種群的毒力回歸方程、ED50。
2.1 不同日本看麥娘種群對(duì)高效氟吡甲禾靈的抗性水平
由表2可以看出,不同種群的日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈的抗性水平不同。其中句容種群ED50值最大,為1756.00 μg/m2,其相對(duì)抗性倍數(shù)高達(dá)292.90;金壇市薛坪上陽(yáng)休閑田ED50值最小,為6.00 μg/m2。表明句容種群對(duì)高效氟吡甲禾靈已產(chǎn)生明顯的抗性,與本實(shí)驗(yàn)室前期報(bào)道結(jié)果一致[1]。因此,以句容種群為抗性生物型,薛坪上陽(yáng)種群為敏感生物型進(jìn)行試驗(yàn)。
表2 不同日本看麥娘種群對(duì)高效氟吡甲禾靈的抗性水平
注:相對(duì)抗性倍數(shù)=不同地區(qū)日本看麥娘種群的ED50/金壇市薛坪上陽(yáng)休閑田的日本看麥娘種群ED50
2.2 細(xì)胞色素P450還原酶活性
未用藥劑處理時(shí)抗性日本看麥娘種群的P450活性為41.86 pmol/(min·mg),高于敏感日本看麥娘種群27.30 pmol/(min·mg)。圖1顯示,在高效氟吡甲禾靈97.2 mg/m2處理3 d后,敏感日本看麥娘種群P450活性急劇上升,而抗性種群上升趨勢(shì)平緩,說明敏感種群受藥劑影響較大,反應(yīng)激烈。藥劑處理6 d后,敏感種群P450活性開始下降,而抗性種群仍然保持增加趨勢(shì),表明抗性種群對(duì)高效氟吡甲禾靈仍有較高的代謝能力。藥劑處理8 d后,抗性種群P450活性也開始出現(xiàn)下降趨勢(shì),但其活性明顯高于敏感種群,這與敏感種群先于抗性種群出現(xiàn)死亡跡象相一致。
結(jié)果表明,高效氟吡甲禾靈被抗性日本看麥娘體內(nèi)的細(xì)胞色素P450還原酶催化,迅速降解,可能是日本看麥娘對(duì)其產(chǎn)生抗性的機(jī)理之一。
2.3 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GSTs)活性
未用藥劑處理時(shí),抗性日本看麥娘種群的GSTs活性11.01 nmol/(min·mg),高于敏感日本看麥娘種群6.39 nmol/(min·mg)。圖2顯示,高效氟吡甲禾靈97.2 mg/m2處理2 d后,敏感日本看麥娘種群GSTs活性急劇下降,而抗性種群下降趨勢(shì)較緩。藥劑處理3 d后,敏感種群GSTs活性升高,這可能是日本看麥娘本身受到外界環(huán)境脅迫后表現(xiàn)出的應(yīng)激反應(yīng)。隨后又呈下降趨勢(shì),說明高效氟吡甲禾靈的藥效逐漸顯現(xiàn)。而抗性種群在整個(gè)過程中變化都很緩慢,說明抗性種群受藥劑的影響較小。藥劑處理8 d后,敏感及抗性種群體內(nèi)GSTs活性又呈上升趨勢(shì),但敏感種群明顯低于抗性種群,且均低于施藥初期,這與敏感種群首先出現(xiàn)死亡跡象相一致。
結(jié)果表明,經(jīng)過第一階段的代謝作用產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物,在GSTs的催化下形成了對(duì)抗性日本看麥娘無毒或低毒的化合物,使其免受傷害,可能是抗性機(jī)理之一。
除草劑在植物體內(nèi)通過其官能團(tuán)或反應(yīng)基的變化經(jīng)過3個(gè)階段完成全部代謝過程,即代謝作用(metabolism)—綴合作用(conjugation)—分離(separation),從而使其生物活性完全喪失。第一階段是最重要的,在這一階段中,P450可以對(duì)不同類型的除草劑通過脫烷基或羥基化等作用進(jìn)行修飾[15],催化眾多親脂除草劑的氧化作用[16]。大量證據(jù)證明了細(xì)胞色素P450酶系參與了對(duì)許多除草劑的代謝和解毒作用[17]。芳環(huán)或烷基羥基化是細(xì)胞色素P450羥基化酶誘導(dǎo)的除草劑最普遍的代謝反應(yīng)。
在小麥(Triticumaestivum)中,禾草靈被其體內(nèi)的細(xì)胞色素P450單加氧酶催化的芳基羥化作用迅速解毒[6]。在抗禾草靈的不實(shí)野燕麥(Avena sterilis)和鼠尾看麥娘中也發(fā)現(xiàn)了相似的代謝途徑[18-19]。有報(bào)道稱增強(qiáng)的解毒作用是瑞士黑麥草(Loliumrigidum)和看麥娘(Alopecurusaequalis)的抗藥性機(jī)制,這種抗性機(jī)制常常是由細(xì)胞色素P450單加氧酶活性或表達(dá)增強(qiáng)引起的[3,20-21]。
第二階段的代謝主要是合成過程,即酶催化第一階段產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物經(jīng)過綴合作用,形成對(duì)植物無毒或低毒的化合物,此類代謝反應(yīng)主要是由谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶誘導(dǎo)[16]。多種類型除草劑在雜草體內(nèi)均是由GSTS催化進(jìn)行不可逆的綴合作用而導(dǎo)致選擇性的[22]。
噁唑禾草靈能在小麥、大麥(Hordeumvulgare)和止血馬唐(Digitariaischaemum)體內(nèi)被代謝則是由于在GSTs催化下其羥化丙酸酯基團(tuán)被親核取代(nucleophilic substitution)[21]。同時(shí)在鼠尾看麥娘的抗芳氧苯氧丙酸酯類除草劑生物型中發(fā)現(xiàn)了比敏感生物型更高的GSTs活性[7,23]。Western blot分析表明抗噁唑禾草靈的看麥娘體內(nèi)GSTs活性增強(qiáng)與25 kd多肽和另兩個(gè)異常的27 kd和28 kd免疫反應(yīng)多肽的表達(dá)提高相關(guān),因此GSTs的高活性和谷胱甘肽的有效性有助于通過谷胱甘肽與ACCase的軛合使除草劑解毒,從而使看麥娘對(duì)噁唑禾草靈產(chǎn)生抗藥性[7]。
為了研究日本看麥娘的代謝與抗性機(jī)理的關(guān)系,本研究所選用的日本看麥娘種群是本實(shí)驗(yàn)室前期報(bào)道的抗性生物型,關(guān)于其抗性機(jī)理未見報(bào)道。本研究結(jié)果得出P450活性在抗性與敏感植株體內(nèi)的變化存在著差異,并且由于測(cè)定活性時(shí)加入了NADPH,從而可以看出細(xì)胞色素P450可以催化高效氟吡甲禾靈使其羥基化。這一結(jié)論與Yun等的研究結(jié)果[24]相一致。Frear等[25]報(bào)道綠磺隆(chlorsulfuron)在小麥體內(nèi)為羥基化代謝,且為小麥細(xì)胞色素P450催化。
未用藥劑處理時(shí)抗性日本看麥娘的GSTs與P450活性均高于敏感日本看麥娘。施藥1 d后P450與GSTs的活性均在敏感種群體內(nèi)發(fā)生急劇變化,而在抗性種群中變化趨勢(shì)平緩,并且敏感種群首先出現(xiàn)下降趨勢(shì),說明敏感日本看麥娘種群較易受到高效氟吡甲禾靈的影響。隨后抗性種群較敏感種群首先出現(xiàn)上升趨勢(shì),即抗性種群代謝酶活性增強(qiáng)能迅速將體內(nèi)除草劑代謝使其活性喪失,從而保護(hù)自身使其免受傷害。雖然敏感種群也能出現(xiàn)上升趨勢(shì),但其活性依然低于抗性種群,且明顯低于施藥初期。這可能是由于植物本身受到外界環(huán)境的刺激而表現(xiàn)出的應(yīng)激反應(yīng),也就解釋了為什么敏感種群首先出現(xiàn)死亡跡象。
研究表明,高效氟吡甲禾靈被抗性日本看麥娘體內(nèi)的細(xì)胞色素P450還原酶催化,經(jīng)過羥化作用迅速解毒,并在GSTs的催化下形成了無毒或低毒的化合物,使其免受傷害。因此,代謝酶活性增強(qiáng)是日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈產(chǎn)生抗性的機(jī)理之一。
[1]楊彩宏. 油菜田日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈抗藥性的研究[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,40(12):2759-2765.
[2]Brown A E,Moss S R,Wilson Z A,et al. An isoleucine to leucine substitution in the ACCase ofAlopecurusmyosuroides(black-grass) is associated with resistance to the herbicide sethoxydim[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,2002,72:160-168.
[3]Hall L M,Moss S R,Powles S B. Mechanisms of resistance to aryloxyphenoxypropionate herbicides in two resistant biotypes ofAlopecurusmyosuroides(black-grass):Herbicide metabolism as a cross-resistance mechanism[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1997,57(2):87-98.
[4]Hidayat I,Preston C. Enhanced metabolism of fluazifop acid in a biotype ofDigitariasanguinalisresistant to the herbicide fluazifop-P-butyl[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1997,57(2):137-146.
[5]Helvig C,Tardif F J,Seyer A,et al. Selective inhibition of a cytochrome P450enzyme in wheat that oxidizes both the natural substrate lauric acid and the synthetic herbicide diclofop[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1996,54:161-171.
[6]McFadden J J,Frear D S,Mansager E R. Arylhydroxylation of diclofop by a cytochrome P450dependent monooxygenase from wheat[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1989,34:92.
[7]Cummins I,Moss S R,Cole D J,et al. Glutathione transferases in herbicide-resistant and herbicide susceptible black-grass (Alopecurusmyosuroides) [J]. Pestic Science,1997,51(3):244-250.
[8]Hatton P J,Dixon D,Cole D J,et al. Glutathione transferase activities and herbicide selectivity in maize and associated weed species[J]. Pestic Science,1996,46(3):267-275.
[9]向文勝,王相晶,越長(zhǎng)山,等. 小麥細(xì)胞色素P450S對(duì)綠磺隆的催化代謝作用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1999,30(4):396-399.
[10]Feng R,Houseman J G,Downe A E R. Effect of ingested meridicdiet and corn leaves on m idgut detoxification processes in the European corn borer,Ostrinianubilalis[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1992,42(3) :203-210.
[11]Hatton P J,Cole D J,Edwards R. Influence of plant age on glutathione levels and glutathione transferases involved in herbicide detoxification in corn (ZeamaysL.) and giant foxtail (SetariafaberiHerrm)[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1996,54(3) :199-209.
[12]John W G. Effect herbicide antidotes on glutathione content and glutathione S-transferase activity ofSorghumshoots[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1987(29) :66-76.
[13]吳進(jìn)才,許俊峰,馮緒猛,等. 稻田常用農(nóng)藥對(duì)水稻3個(gè)品種生理生化的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2003,36(5):536-541.
[14]Bradford M M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dyebinding[J]. Analyt Biochemistry,1976,72:248-254.
[15]向文勝,蘇少泉,趙長(zhǎng)山. 植物細(xì)胞色素P-450(cyt-P450)對(duì)除草劑的代謝作用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1997,28(2):193-200.
[16]蘇少泉. 除草劑在植物體內(nèi)的代謝與選擇性及使用[J]. 現(xiàn)代農(nóng)藥,2003,2(6):14-17.
[17]Werck-Reichhart D,Hehn A,Didierjean L. Cytochromes P450for engineering herbicide tolerance[J]. Trends in Plant Science,2000,5(3):116-123.
[18]Maneechote C,Preston C,Powles S B. A diclofop-methyl resistantAvenasterilisbiotype with a herbicide-resistant acetyl-coenzyme A carboxylase and enhanced metabolism of diclofop-methyl[J]. Pestic Science,1997,49:105-114.
[19]Menendez J,DePrado R. Diclofop-methyl cross resistance in a chlorotoluron-resistant biotype ofAlopecurusmyosuroides[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1996,56(2):123-133.
[20]Preston C,Tardif F J,Christopher J T,et al. Multiple resistance to dissimilar herbicide chemistries in a biotype ofLoliumrigidumdue to enhanced activity of several herbicide degrading enzymes[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1996,54(2):123-134.
[21]Menéndez J,De Prado R. Characterization of two acetyl-Co A carboxylase isoforms in diclofop-methyl-resistant and -susceptible biotypes ofAlopecurusmyosuroides[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1999,65(2):82-89.
[22]DeRidder B P,Dixon D P,Beussman D J,et al. Induction of glutathione S-transferases in Arabidopsis by herbicide safeners[J]. Plant Physiol,2002,130:1497-1505.
[23]Tal A,Romano M L,Stephenson G R,et al. Glutathione conjugation:A detoxification pathway for fenoxaprop-ethyl in barley,crabgrass,oat,and wheat[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1993,46(3):190-199.
[24]Yun M S,Yogo Y. Cytochrome P-450 monooxygenase activity in herbicide-resistant and -susceptible late watergrass (Echinochloaphyllopogon)[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,2005,83(2/3):107-114.
[25]Frear D S,Swanson H R. Induced microsomal oxidation of diclofop triasulfurom chlorsnlfuron and linuron in wheat[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology,1997,41:274-287.
韓瑞娟,董立堯,李 俊,等. 日本看麥娘對(duì)高效氟吡甲禾靈代謝抗性的初步研究[J]. 雜草科學(xué),2010(1):3-7.
S451.22+4
A
1003-935X(2010)01-0003-05
2009-12-25
國(guó)家自然科學(xué)基金(編號(hào):30971928);博士點(diǎn)基金新教師類項(xiàng)目(編號(hào):20090097120046)。
韓瑞娟(1985—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槌輨┒纠砑翱顾幮?。E-mail:2007102110@njau.edu.cn。
董立堯,教授,從事除草劑毒理及抗藥性研究。Tel:(025)84395672; E-mail:dly@njau.edu.cn。