徐雅君 曾慶友,2* 許瑞安*
(1 教育部分子藥物工程研究中心、華僑大學(xué)分子藥物學(xué)研究所,福建 泉州 362021;2 華僑大學(xué)化工學(xué)院,福建 泉州 362021)
細(xì)胞膜穿透肽(cell penetrating peptide,CPPs)是一些具有細(xì)胞穿透功能的短肽的統(tǒng)稱,一般少于30個氨基酸,其中堿性氨基酸占多數(shù)[1]。此外,CPPs還能幫助生物大分子穿過血腦屏障且無毒副作用[2,3]。CPP的這些特性使其成為一種有效的運輸載體,向細(xì)胞內(nèi)運送各種自身不能穿越細(xì)胞膜的大分子生物活性物質(zhì),為生物治療提供了一個嶄新的有力工具。到目前為止,已有CPPs作為載體成功的將多肽、蛋白質(zhì)、DNA及siRNA等導(dǎo)入細(xì)胞內(nèi)的報道[4-7]。但是隨著研究的深入,我們發(fā)現(xiàn)CPPs作為載體,存在與血液的不相容性,缺少組織特異性,易被內(nèi)體捕獲從而進(jìn)入溶酶體被降解等問題[8,9],從而大大的降低了CPPs的轉(zhuǎn)染率,限制了其在腫瘤治療中的應(yīng)用。因此,有效解決上述問題是優(yōu)化CPPs在腫瘤治療中的作用的關(guān)鍵。
CPP本身具有生物組織相容性且無毒副作用。但是,在體內(nèi)給藥時,由于CPP中堿性氨基酸占多數(shù),所以,其在生理pH 7.4條件下帶正電荷,易與血液發(fā)生作用,引起血栓,從而對人體造成傷害,甚至引發(fā)死亡[10,11]。因此,在用CPP作載體,進(jìn)行體內(nèi)給藥時,我們要首先對CPP進(jìn)行修飾來掩蓋其表面的正電荷。載體表面修飾,最常用的方法是聚乙二醇化,聚乙二醇不僅具有很好的生物相容性,還可以增強(qiáng)載體在體內(nèi)的穩(wěn)定性并延長其體內(nèi)循環(huán)時間,從而提高藥效。Morris等[12]將細(xì)胞膜穿透肽Pep-3聚乙二醇化,并證實了修飾后的Pep-3在體內(nèi)的穩(wěn)定性較未修飾的大大的提高了。Van Dongen等[13]也將細(xì)胞膜穿透肽Tat和聚乙二醇化聯(lián)合起來使用,來提高酶載納米反應(yīng)器的轉(zhuǎn)染率。
CPP本身是沒有組織特異性的,所以在進(jìn)行體內(nèi)給藥時,CPP會帶著負(fù)載的藥物會進(jìn)入所有組織,這樣就會使到達(dá)靶組織的藥物濃度減少[8,14,15]。此外,抗腫瘤藥物一般上對正常組織會有傷害作用,所以,在治療腫瘤的時候我們要盡量使抗腫瘤藥物具有靶向性,能直達(dá)腫瘤組織起作用。理論上來說,解決CPP的腫瘤靶向性的問題并不難,但實際上,解決這個問題是一難點。因為在組織中,CPP和接上的配體的作用是相互抑制的。Anderson等[16]將Fab片段與Tat相連,并證實Fab連接后的Tat確實具有細(xì)胞靶向性,但是這個研究同時也指出Fab抑制Tat的穿膜能力,而Tat也抑制Fab尋找靶細(xì)胞的能力,二者之間存在矛盾。如何解決CPP與配體之間的矛盾呢?首先,我們要考慮到二者的發(fā)揮作用的空間的差異,配體是在組織外作用,以達(dá)到尋找靶組織的目的;CPP是在細(xì)胞膜上起作用,以達(dá)到跨膜的目的。其次,我們要考慮到正常組織與靶組織之間的生理差異,如pH的不同,腫瘤特異的酶。最后,我們就可以根據(jù)上述兩方面得到一種可行的策略,對CPP進(jìn)行修飾改造。Jiang等[17]用陰離子多肽將聚精氨酸多肽掩蓋,從而使聚精氨酸不能發(fā)揮作用,進(jìn)入細(xì)胞;直到到了腫瘤組織,由于腫瘤組織特異性酶MMP2的存在,切斷了陰離子多肽與聚精氨酸之間的連接,聚精氨酸暴露發(fā)揮作用,從而進(jìn)入腫瘤細(xì)胞。
因此,CPP作為載體應(yīng)用于體內(nèi)治療時,應(yīng)考慮先將CPP掩蓋,直至到達(dá)靶組織時,再將其釋放。這樣才能使CPP的作用得到很好的發(fā)揮,而且將對機(jī)體組織的傷害降到了最低。
CPP最初被認(rèn)為是以非溫度依賴、非能量依賴、非受體依賴的方式進(jìn)入細(xì)胞的[18,19]。但從2003年后,人們逐漸發(fā)現(xiàn)了細(xì)胞內(nèi)吞作用在CPP應(yīng)用試驗中的存在,并且最終確認(rèn)內(nèi)吞作用是CPP介導(dǎo)藥物進(jìn)入細(xì)胞的主要方式,而直接穿膜作用也是進(jìn)入細(xì)胞的方式之一[20,21]。因此,CPP介導(dǎo)的跨膜作用包括很多途徑,而途徑的選擇不僅與CPP種類及負(fù)載藥物的性質(zhì)有關(guān),而且與靶細(xì)胞的種類有關(guān)[22-24]。此外,又由于至今為止CPP的跨膜機(jī)制還不明確,所以,對于目前的狀況來說,在細(xì)胞實驗前確定某一具體的CPP及其負(fù)載物進(jìn)入細(xì)胞的途徑幾乎是不可能的,而這種不確定又在很大程度上增加了時間的耗費和成本。解決這個問題的關(guān)鍵就是要明確CPP的跨膜機(jī)制。
目前已提出了很多CPP的跨膜機(jī)制,主要包括3類。第一種是通過靜電作用直接滲透通過細(xì)胞膜。具體過程為未折疊的CPP融合蛋白首先與細(xì)胞膜表面通過靜電方式結(jié)合,然后直接跨過細(xì)胞膜,接著在分子伴侶的幫助下發(fā)生重折疊[25,26]。這是針對早期研究發(fā)現(xiàn)的認(rèn)為CPP是非溫度依賴、非能量依賴、非受體依賴的非經(jīng)典內(nèi)吞方式的跨膜機(jī)制。第二種跨膜機(jī)制是通過形成某種跨膜結(jié)構(gòu)發(fā)生轉(zhuǎn)導(dǎo)進(jìn)入細(xì)胞。這類機(jī)制包括3種可能的模式[27]:反轉(zhuǎn)微團(tuán)模式、地毯模式和打孔模式。第三種跨膜機(jī)制是內(nèi)吞作用介導(dǎo)入膜,這類機(jī)制是在發(fā)現(xiàn)CPP跨膜過程中涉及內(nèi)吞作用后提出的[28-30]。
雖然現(xiàn)在CPP的跨膜機(jī)制還不明確,但是其穿膜特性是肯定的。此外,人們還開始認(rèn)識到CPP的一次跨膜并不僅僅涉及一種跨膜機(jī)制[31]。有很多機(jī)制參與CPP的一次跨膜,重要的是哪種機(jī)制為主。因此,目前的重點是明確跨膜機(jī)制,然后根據(jù)其來改造CPP,使其主要按人們想要的那種機(jī)制跨膜。
雖然CPP的一次跨膜涉及很多機(jī)制,但是人們發(fā)現(xiàn)至今為止應(yīng)用的CPP負(fù)載藥物跨膜都以內(nèi)吞作用跨膜為主,而又由于內(nèi)吞作用跨膜時存在內(nèi)體捕獲和溶酶體降解的問題,所以,我們就要考慮如何幫助CPP及其負(fù)載物從內(nèi)體逃脫,以防止其進(jìn)入溶酶體,從而在溶酶體堆積或被降解[32,33]。
促進(jìn)CPP從內(nèi)體逃逸的方法主要有5種:①化學(xué)物質(zhì)輔助逃逸,如氯喹、Ca2+等。Wattiaux等[34]用熒光標(biāo)記Tat,并在細(xì)胞培養(yǎng)基中加入氯喹,幾小時后在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中發(fā)現(xiàn)了熒光,首次證實了氯喹可以促進(jìn)CPP從內(nèi)體逃脫進(jìn)入胞質(zhì),進(jìn)入細(xì)胞核。Shiraishi等[35]發(fā)現(xiàn)在培養(yǎng)基中加入Ca2+能促進(jìn)CPP偶聯(lián)的PNA從內(nèi)體釋放。雖然Ca2+能明顯促進(jìn)CPP從內(nèi)體逃脫,但其作用機(jī)制仍不清楚。②光敏物質(zhì)輔助逃逸。光敏物質(zhì)能在可見光的激發(fā)下產(chǎn)生活性氧簇,而活性氧簇能破壞內(nèi)體膜,促進(jìn)內(nèi)體內(nèi)物質(zhì)釋放進(jìn)入胞質(zhì)。因此,應(yīng)用CPP作為載體運送生物活性物質(zhì)進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的同時給予光敏物質(zhì)可促進(jìn)內(nèi)含體內(nèi)含物的釋放。Endoh等[36]將siRNA連接到CPP上,在激光的照射下,CPP成功將siRNA導(dǎo)入到CHO細(xì)胞,誘導(dǎo)U1A基因的沉默。③天然或合成的聚合物輔助逃逸,例如蜂毒肽及人工合成的短肽如43E(LAEL-LAELLAEL)。Ogris等[37]將蜂毒肽結(jié)合到聚乙烯亞胺PEI上,形成MELPEI-DNA復(fù)合物,發(fā)現(xiàn)蜂毒肽能促進(jìn)DNA從內(nèi)體釋放到胞質(zhì),并引導(dǎo)其跨過核膜屏障進(jìn)入細(xì)胞核。④病毒微生物輔逃逸,例如流感病毒血凝素2蛋白(HA2)。一些病毒微生物在進(jìn)化過程中獲得了從內(nèi)體逃逸的本領(lǐng),而這種逃逸與微生物自身元件在低pH值環(huán)境中,破壞內(nèi)含體溶酶體膜有關(guān)[38]。Sugita等[39]用熒光素標(biāo)記TAT,分別處理細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)TAT單獨處理時熒光只是集中在內(nèi)體,而與TAT-HA2共處理后則發(fā)現(xiàn)細(xì)胞質(zhì)中有大面積熒光。⑤ CPP自身改造促進(jìn)逃逸[40,41]。雖然上述5種方法能促進(jìn)CPPs及其負(fù)載物從內(nèi)體逃逸,但卻存在操作繁瑣、運送載體構(gòu)造復(fù)雜及毒副作用較大等缺點。因此,人們開始尋找更簡便、更安全的方法來促進(jìn)CPP的內(nèi)體逃逸,對現(xiàn)有CPPs進(jìn)行改造是最可行的方法。目前已提出很多關(guān)于CPP改造的方案,也已對很多方案進(jìn)行試驗驗證,雖然有所進(jìn)展,但仍缺少實質(zhì)性的突破。
細(xì)胞膜穿透肽可以有效地將多肽、蛋白質(zhì)及DNA片段等生物大分子導(dǎo)入多種哺乳動物細(xì)胞,且在一定濃度范圍內(nèi)不會造成細(xì)胞損傷。目前,雖然CPP在應(yīng)用過程中存在很多的問題,甚至CPP的跨膜機(jī)制也不明確,這是造成很多問題的關(guān)鍵。但是仍可以肯定CPP是生物活性分子有效的細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)運工具,而且我們有理由相信,經(jīng)過改造的CPP,未來的CPP將作為高效的生物藥物輸送載體,在疾病的預(yù)防、檢測及治療中發(fā)揮重要的作用[42]。
[1] Lindgren M,Hallbrink M,Prochiantz A,et al.Cell-penetrating peptides[J].Trends Pharmacol Sci,2000,21(3):99-103.
[2] Schwarze SR,Ho A,Vocero-Akbani A,et al.In vivo protein transduction:delivery of a biologically active protein into the mouse[J].Science,1999,285(5433):1569.
[3] Fominaya J,Gasset M,García R,et al.An optimized amphiphilic cationic peptide as an efficient non-viral gene delivery vector[J].J Gene Med,2000,2(6):455-464.
[4] Fawell S,Seery J,Daikh Y,et al.Tat-mediated delivery of heterologous proteins into cells[J].Proceed Nat Acad Sci,1994,91(2):664.
[5] Pooga M,Kut C,Kihlmark M,et al.Cellular translocation of proteins by transportan[J]. FASEB J,2001,15(8):7801.
[6] Hansen M,Kilk K,Langel U.Predicting cell-penetrating peptides[J].Adv Drug Delivery Reviews,2008,60(4/5):572-579.
[7] Lundberg P,El-Andaloussi S,Sütlü T,et al.Delivery of short interfering RNA using endosomolytic cell-penetrating peptides[J].FASEB J,2007,21(11):2664.
[8] Vivès E,Schmidt J,Pèlegrin A.Cell-penetrating and cell-targeting peptides in drug delivery[J]. Biochim Biophys Acta,2008,1786(2):126-138.
[9] R??gel H,S??lik P,Pooga M.Peptide-mediated protein delivery-Which pathways are penetrable?[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes,2010,1798(12):2240-2248.
[10] Lee H,Pardridge W.Pharmacokinetics and delivery of tat and tatprotein conjugates to tissues in vivo[J].Bioconjugate Chem,2001,12(6):995-999.
[11] Ma SF,Nishikawa M,Katsumi H,et al.Cationic charge-dependent hepatic delivery of amidated serum albumin[J].J Control Release,2005,102(3):583-594.
[12] Morris MC,Gros E,Aldrian-Herrada G,et al.A non-covalent peptide-based carrier for in vivo delivery of DNA mimics[J].Nucleic Acids Res,2007,35(7):e49.
[13] van Dongen S, Verdurmen WP,Peters RJ,et al.Cellular Integration of an Enzyme-Loaded Polymersome Nanoreactor[J].Angew Chem Int Ed Enql,2010,49(40):7213-7216.
[14] Vivès E,Brodin P,Lebleu B.A truncated HIV-1 Tat protein basic domain rapidly translocates through the plasma membrane and accumulates in the cell nucleus[J].J Biol Chem,1997,272(25):16010.
[15] Niesner U,Halin C,Lozzi L,et al.Quantitation of the tumor-targeting properties of antibody fragments conjugated to cell-permeating HIV-1 TAT peptides[J].Bioconjugate Chem,2002,13(4):729-736.
[16] Anderson DC,Nichols E,Manger R,et al.Tumor cell retention of antibody Fab fragments is enhanced by an attached HIV TAT protein-derived peptide[J].Biochem Biophys Res Commun,1993,194(2):876-884.
[17] Jiang T,Olson ES,Nguyen QT,et al.Tumor imaging by means of proteolytic activation of cell-penetrating peptides[J].Proceed Nat Acad Sci,2004,101(51):17867.
[18] Derossi D,Calvet S,Trembleau A,et al.Cell internalization of the third helix of the Antennapedia homeodomain is receptorindependent[J].J Biol Chem,1996,271(30):18188.
[19] Suzuki T,Futaki S,Niwa M,et al.Possible existence of common internalization mechanisms among arginine-rich peptides[J].J Biol Chem,2002,277(4):2437.
[20] Drin G,Cottin S,Blanc E,et al.Studies on the internalization mechanism of cationic cell-penetrating peptides[J].J Biol Chem,2003,278(33):31192.
[21] Richard JP,Melikov K,Brooks H,et al.Cellular uptake of unconjugated TAT peptide involves clathrin-dependent endocytosis and heparan sulfate receptors[J].J Biol Chem,2005,280(15):15300.
[22] Brooks N,Pouniotis DS,Tang CK,et al.Cell-penetrating peptides:Application in vaccine delivery[J].Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-Reviews on Cancer,2009,1805(1):25-34.
[23] Bárány-Wallje E,Gaur G,Lundbergb P,et al.Differential membrane perturbation caused by the cell penetrating peptide Tp10 depending on attached cargo[J].FEBS Lett,2007,581(13):2389-2393.
[24] Ziegler A.Thermodynamic studies and binding mechanisms of cell-penetrating peptides with lipids and glycosaminoglycans[J].Adv Drug Delivery Reviews,2008,60(4/5):580-597.
[25] Veach RA,Liu D,Yao S,et al.Receptor/transporter-independent targeting of functional peptides across the plasma membrane[J].J Biol Chem,2004,279(12):11425.
[26] Drin G,Cottin S,Blanc E,et al.Studies on the internalization mechanism of cationic cell-penetrating peptides[J].J Biol Chem,2003,278(33):31192.
[27] Lundberg P,Langel U.A brief introduction to cell-penetrating peptides[J].J Mol Recogn,2003,16(5):227-233.
[28] Richard JP,Melikov K,Vives E,et al.Cell-penetrating peptides.A reevaluation of the mechanism of cellular uptake. [J].J Biol Chem,2003,278(1):585-590.
[29] Lundberg M,Johansson M.Is VP22 nuclear homing an artifact?[J].Nat Biotechn,2001,19(8):713-713.
[30] Lundberg M,Wikstrm S,Johansson M.Cell surface adherence and endocytosis of protein transduction domains[J].Mol Ther,2003,8(1):143-150.
[31] Guterstam P,Madani F,Hirose H,et al.Elucidating cell-penetrating peptide mechanisms of action for membrane interaction,cellular uptake,and translocation utilizing the hydrophobic counter-anion pyrenebutyrate[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes,2009,1788(12):2509-2517.
[32] Nakase I,Niwa M,Takeuchi T,et al.Cellular uptake of arginine-rich peptides:roles for macropinocytosis and actin rearrangement[J].Mol Ther,2004,10(6):1011-1022.
[33] Magzoub M,Pramanik A,Graslund A.Modeling the Endosomal Escape of Cell-Penetrating Peptides:Transmembrane pH Gradient Driven Translocation across Phospholipid Bilayers[J].Biochemistry,2005,44(45):14890-14897.
[34] Wattiaux R,Gentinne F,Jadot M,et al.Chloroquine allows to distinguish between hepatocyte lysosomes and sinusoidal cell lysosomes[J].Biochem Biophys Res Commun,1993,190(3):808-813.
[35] Shiraishi T,Pankratova S,Nielsen P.Calcium ions effectively enhance the effect of antisense peptide nucleic acids conjugated to cationic tat and oligoarginine peptides[J].Chem Biol,2005,12(8):923-929.
[36] Endoh T,Sisido M,Ohtsuki T.Photo inducible RNA interference using cell permeable protein carrier[J].Nucleic Acids Symp Ser(Oxf),2007(51):127-128.
[37] Ogris M,Carlisle RC,Bettinger T,et al.,Melittin enables efficient vesicular escape and enhanced nuclear access of nonviral gene delivery vectors[J].J Biol Chem,2001,276(50):47550.
[38] Skehel J.Influenza fusion peptides[J].Neuroreport,1999,9:1749-1755.
[39] Sugita T,Yoshikawa T,Mukai Y,et al.Improved cytosolic translocation and tumor-killing activity of Tat-shepherdin conjugates mediated by co-treatment with Tat-fused endosome-disruptive HA2 peptide[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,363(4):1027-1032.
[40] Lo SL,Wang S.An endosomolytic Tat peptide produced by incorporation of histidine and cysteine residues as a nonviral vector for DNA transfection[J].Biomaterials,2008,29(15):2408-2414.
[41] Abes S,Moulton HM,Clair P,et al.Vectorization of morpholino oligomers by the (R-Ahx-R) 4 peptide allows efficient splicing correction in the absence of endosomolytic agents[J].J Control Release,2006,116(3):304-313.
[42] 許瑞安,陳凌,肖衛(wèi)東.分子基因藥物學(xué)[M].北京:北京大學(xué)出版社 & 北京大學(xué)醫(yī)學(xué)出版社聯(lián)合出版,2008.