徐 波,梁碧玲,鄧宇斌*
細(xì)胞移植(cell transplantation)是將自體細(xì)胞或異體細(xì)胞經(jīng)體外擴(kuò)增或分化培養(yǎng)后再移植入動物體特定部位的技術(shù),主要應(yīng)用于細(xì)胞治療和科學(xué)研究中。隨著干細(xì)胞研究的不斷深入,移植干細(xì)胞通過分泌相關(guān)營養(yǎng)因子或定向分化更新病損組織的方式對特定疾病進(jìn)行治療已成為近幾年的研究熱點(diǎn)[1]。將細(xì)胞移植入體內(nèi)后,研究者需要一種有效的手段監(jiān)測移植細(xì)胞在遷移、分布、功能分化等,為評價(jià)治療效果和研究作用機(jī)制提供依據(jù)。當(dāng)細(xì)胞移植應(yīng)用于臨床治療時(shí),要求這種監(jiān)測方法不能對患者造成二次損傷。磁共振成像技術(shù) (magnetic resonance imaging,MRI)是利用人體組織中某種原子核的核磁共振現(xiàn)象,使用計(jì)算機(jī)輔助系統(tǒng),將人體不同類型及不同生理狀態(tài)的組織進(jìn)行成像的診斷技術(shù),具有無輻射損傷、非侵入性、高敏感性、高分辨率并能對監(jiān)測對象三維重構(gòu)等優(yōu)點(diǎn),非常適合用于活體監(jiān)測移植細(xì)胞[2]。MRI對比劑(contrast agents),可使局部磁共振信號發(fā)生明顯變化。使用MRI對比劑對體外培養(yǎng)的細(xì)胞標(biāo)記后進(jìn)行細(xì)胞移植,可使用MRI對移植細(xì)胞實(shí)現(xiàn)連續(xù)多時(shí)間點(diǎn)監(jiān)測。隨著磁共振細(xì)胞標(biāo)記及細(xì)胞成像研究的發(fā)展,大量的相關(guān)研究成果被陸續(xù)報(bào)道,本文就目前研究最活躍的細(xì)胞標(biāo)記用磁共振對比劑和相應(yīng)的標(biāo)記方法作一綜述。
對細(xì)胞進(jìn)行磁共振對比劑標(biāo)記,一方面對比劑的本身的特性決定了標(biāo)記的效果,為了提高標(biāo)記率,對比劑的分子量、電荷性及溶解性有嚴(yán)格限制。一般而言,分子量越小越則容易進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)內(nèi)。由于細(xì)胞膜表面帶有微弱的負(fù)電荷,所以如果對比劑本身帶有正電荷,則更容易吸附于細(xì)胞膜,有利于細(xì)胞標(biāo)記。但如果對比劑表面帶有負(fù)電荷則會受到細(xì)胞表面負(fù)電荷的排斥,可以利于多種陽離子轉(zhuǎn)染試劑輔助進(jìn)行標(biāo)記。另一方面細(xì)胞自身的特性決定了標(biāo)記難度,用于細(xì)胞移植的細(xì)胞主要有兩類,即免疫細(xì)胞和干細(xì)胞。相比之下一部分免疫細(xì)胞具有較強(qiáng)的吞噬能力,可以直接通過胞吞或胞飲的方式將對比劑吞入胞內(nèi)完成標(biāo)記,而干細(xì)胞則較難進(jìn)行標(biāo)記,通常需要使用輔助方法進(jìn)行有效標(biāo)記。
這一類對比劑大多為鑭系元素螯合物,其中以釓螯合物居多,包括Gd-DTPA、Gd-DTPA-BMA、Gd-HP-DO3A等。Gd-DTPA于1987年即被美國FDA批準(zhǔn)為第一種用于臨床診斷的磁共振對比劑。此類對比劑可在一定濃度范圍內(nèi)使標(biāo)記細(xì)胞在T1加權(quán)成像時(shí)造呈高信號[3]。較早的研究工作,以研究對比劑性能為主,2004年Crich等[4]分別用Gd-HP-DO3A 和Eu-HP-DO3A標(biāo)記內(nèi)皮祖細(xì)胞,銪(Eu)為鑭系元素,標(biāo)記過程未使用其他輔助標(biāo)記試劑。標(biāo)記細(xì)胞中Gd濃度達(dá)到0.1 μmol/mg蛋白質(zhì)。但將標(biāo)記細(xì)胞移植入小鼠腎臟后,僅有Gd-HP-DO3A標(biāo)記的細(xì)胞可以在MRI T1 WI呈高信號,信號增強(qiáng)效果可維持14天以上。同時(shí)發(fā)現(xiàn)標(biāo)記后的內(nèi)皮祖細(xì)胞具有良好的細(xì)胞活性,并保持有血管新生能力。研究者發(fā)現(xiàn),某些細(xì)胞由于細(xì)胞類型的原因,很難使用順磁性對比劑直接標(biāo)記,需要通過輔助標(biāo)記方法進(jìn)行有效標(biāo)記,2006年Terreno等[5]應(yīng)用電穿孔法和直接孵育標(biāo)記法分別將Gd-HP-DO3A標(biāo)記入大鼠肝癌細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中和內(nèi)囊泡中,發(fā)現(xiàn)等量的Gd-HP-DO3A進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)比進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)囊泡能在MRI下造成更強(qiáng)的信號變化。隨著干細(xì)胞研究的發(fā)展,磁共振干細(xì)胞成像逐漸成為研究熱點(diǎn),2008年本課題組鄧宇斌等,使用jet-PEI輔助Gd-DTPA成功標(biāo)記骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,通過細(xì)胞毒性測試等評價(jià)了標(biāo)記過程的生物安全性,結(jié)果顯示標(biāo)記過程對細(xì)胞的生理狀態(tài)沒有明顯影響,將標(biāo)記細(xì)胞移植入大鼠脊髓損傷模型中,標(biāo)記細(xì)胞在MRI T1WI呈高信號,可通過MRI對標(biāo)記細(xì)胞進(jìn)行示蹤研究[6]。
超順磁性對比劑主要為一類氧化鐵納米顆粒,直徑在20~150 nm之間。根據(jù)他們的粒徑可將其分為小型超順磁性氧化鐵顆粒(SPIOs)和超小型超順磁性氧化鐵顆粒(USPIOs)[7],通常粒徑小于50 nm則被稱為USPIOs。此類對比劑通過使組織的T2弛豫時(shí)間明顯縮短,在T2WI上顯示為低或無信號,在體內(nèi)與周圍組織形成對比成像,并且敏感性高于順磁性對比劑,在更低的標(biāo)記濃度下就可以造成足夠的信號對比[8]。SPIOs自1996年即被美國FDA批準(zhǔn)為第一種用于臨床診斷的此類磁共振對比劑。由于SPIO和USPIO表面帶有負(fù)電荷,與細(xì)胞膜表面負(fù)電荷具有一定的排斥作用,難以通過直接胞吞的形式進(jìn)行細(xì)胞標(biāo)記。通常使用帶正電荷的轉(zhuǎn)染試劑輔助進(jìn)行細(xì)胞標(biāo)記,可有效提高標(biāo)記效果,并降低標(biāo)記過程的細(xì)胞毒性[9-13]。王建東等構(gòu)建鐵蛋白高表達(dá)細(xì)胞株,并使用SPIO標(biāo)記細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)高表達(dá)鐵蛋白可以提高標(biāo)記效果,這可能是由于鐵蛋白可促進(jìn)細(xì)胞攝取和儲存鐵原子;細(xì)胞移植后體內(nèi)MRI結(jié)果表明高表達(dá)鐵蛋白可延長SPIO活體示蹤細(xì)胞的時(shí)間,這可能是鐵蛋白將細(xì)胞內(nèi)降解的SPIO鐵原子作為額外鐵源進(jìn)行攝取,從而增強(qiáng)磁共振信號[12]。目前,超順磁對比劑干細(xì)胞標(biāo)記已有大量研究,Gonzalez-Lara等于2010年了使用MPIOs標(biāo)記間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)原位移植入大鼠脊髓損傷模型損傷位點(diǎn),并對移植細(xì)胞完成了長達(dá)6周的MRI追蹤,標(biāo)記效果持續(xù)時(shí)間較理想[7]。本課題組也進(jìn)行了類似實(shí)驗(yàn),但發(fā)現(xiàn)由于很多損傷會造成機(jī)體局部出血和水腫,而出血和水腫會在T2 WI下呈低信號,超順磁標(biāo)記細(xì)胞在T2 WI下也呈低信號,兩者具有明顯的信號干擾,因此超順磁性標(biāo)記物在某些損傷出血動物模型的應(yīng)用不佳[6]。
氟對比劑主要應(yīng)用于19F磁共振,由于19F磁共振不同于1H磁共振,其掃描成像的對象是氟原子而不是氫原子。由于動物內(nèi)不存在內(nèi)源性的氟,因此19F磁共振僅能對氟對比劑標(biāo)記的細(xì)胞進(jìn)行成像,特異性更強(qiáng),但由于動物體其他組織在19F磁共振下沒有信號,也就沒有任何背景,所以無法定位,需要配合1H磁共振影像重疊進(jìn)行定位[14]。2005年,Ahrens等使用全氟聚醚(PFPE)及轉(zhuǎn)染試劑lipofectamine標(biāo)記大鼠樹突細(xì)胞,定量核磁共振分析表明單獨(dú)使用PFPE進(jìn)行標(biāo)記組,標(biāo)記細(xì)胞內(nèi)PFPE濃度達(dá)到0.25 ng/cell。但隨著細(xì)胞增殖,標(biāo)記細(xì)胞內(nèi)的PFPE隨時(shí)間逐漸降低,體外培養(yǎng)5天后,胞內(nèi)PFPE濃度減少85%。研究者將PFPE標(biāo)記的細(xì)胞移植入大鼠體內(nèi),使用19F磁共振和1H磁共振分別成像后疊加圖像,實(shí)現(xiàn)了對標(biāo)記細(xì)胞的定位示蹤并觀察到移植細(xì)胞在體內(nèi)遷移情況[15]。
胞吞或胞飲的方式主要用于標(biāo)記免疫細(xì)胞,例如巨噬細(xì)胞、樹突細(xì)胞等。這類細(xì)胞具有很強(qiáng)的吞噬能力,可以通過吞噬作用直接將對比劑顆粒吞入細(xì)胞質(zhì)中,并不需要其他輔助標(biāo)記方法。Rausch和Saleh 等分別使用USPIOs成功標(biāo)記巨噬細(xì)胞,在腦梗大鼠模型中使用MRI監(jiān)測到標(biāo)記后的巨噬細(xì)胞[16,17]。de Vries等在人體上使用SPIOs標(biāo)記樹突細(xì)胞,在MRI下檢測到標(biāo)記細(xì)胞的遷移和分布,并證明了SPIOs標(biāo)記的安全性[18]。另外Himmelreich等使用可被脂肪酶部分分解的可激活對比劑Gd-DTPA-FA標(biāo)記樹突前體細(xì)胞,標(biāo)記完成后該對比劑處在失活狀態(tài),只有當(dāng)樹突細(xì)胞分化成熟并分泌脂肪酶后這種對比劑才能被激活進(jìn)而引起磁共振信號變化,因此實(shí)現(xiàn)了通過磁共振監(jiān)測細(xì)胞功能狀態(tài)的目的。但是,Gd-DTPAFA顆粒較大,目前僅適合標(biāo)記樹突細(xì)胞[19]。
雖然干細(xì)胞普遍不具有吞噬能力,但也有研究證實(shí)可通過直接胞吞的方式對干細(xì)胞進(jìn)行磁共振對比劑標(biāo)記。Jendelová等用含有SPIOs的培養(yǎng)基孵育小鼠胚胎干細(xì)胞,并未采用其他輔助標(biāo)記方法,普魯士藍(lán)染色和電子顯微鏡鏡檢證實(shí)SPIOs成功標(biāo)記入干細(xì)胞,后移植入大鼠腦中,MRI檢測到移植細(xì)胞的遷移和分布,標(biāo)記效果可維持50天[20]。
內(nèi)源性免疫細(xì)胞同樣具有很強(qiáng)的吞噬能力,使得內(nèi)源性免疫細(xì)胞可以吞噬組織間隙中的對比劑,這些組織間隙中的對比劑可以是通過靜脈注射的對比劑,也可以是標(biāo)記細(xì)胞移植入體內(nèi)后隨著分裂、死亡等生理過程釋放到組織間隙中的對比劑。當(dāng)內(nèi)源性的免疫細(xì)胞吞噬這些對比劑后,可能在MRI上產(chǎn)生假陽性,使研究者無法正確分辨移植細(xì)胞和內(nèi)源性免疫細(xì)胞[3,21]。
許多干細(xì)胞無法通過用單獨(dú)含對比劑的培養(yǎng)基簡單孵育的方式進(jìn)行標(biāo)記。針對這點(diǎn),目前許多研究者使用轉(zhuǎn)染試劑輔助進(jìn)行磁性標(biāo)記,使用較多的轉(zhuǎn)染試劑主要分為兩類。一類為陽離子物質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,如多聚左旋賴氨酸(PLL) 、硫酸魚精蛋白等;另一類為脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑。其工作原理都是依靠吸附作用使轉(zhuǎn)染試劑與對比劑結(jié)合后,共同進(jìn)入靶細(xì)胞內(nèi)。陽離子物質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑主要依靠刺激細(xì)胞膜促進(jìn)胞吞,而脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑則主要依靠與胞膜融合將包裹的對比劑遞送入細(xì)胞內(nèi)。
SPIOs表面帶有負(fù)電荷,無法有效吸附到細(xì)胞膜上,Arbab等使用魚精蛋白在體外將SPIOs的標(biāo)記入人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞和CD34+造血干細(xì)胞中實(shí)現(xiàn)MRI監(jiān)測,標(biāo)記效果在CD34+造血干細(xì)胞中達(dá)到2.01±0.1 pg/細(xì)胞,在骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞中達(dá)到10.94±1.86 pg/細(xì)胞,并證實(shí)這種標(biāo)記方法不會引起明顯的細(xì)胞毒性,標(biāo)記細(xì)胞的增殖和分化能力沒有明顯改變[22]。van den Bos等分別單獨(dú)使用SPIOs或使用脂質(zhì)體輔助SPIO對細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記,發(fā)現(xiàn)為了達(dá)到相同的有效標(biāo)記濃度,不使用轉(zhuǎn)染試劑標(biāo)記組所需的SIPOs濃度是使用轉(zhuǎn)染試劑標(biāo)記組的100倍,且由于SPIOs濃度過高引起細(xì)胞內(nèi)的自由基生成增加,對細(xì)胞產(chǎn)生明顯毒副作用[23]。
采用受體介導(dǎo)的胞吞方式進(jìn)行細(xì)胞標(biāo)記,需要對對比劑進(jìn)行局部修飾,針對目的細(xì)胞的特異受體,在對比劑上連接可與這些受體特異結(jié)合的基團(tuán),以達(dá)到提高轉(zhuǎn)染效率的目的。目前主要選用的多為干細(xì)胞膜上的轉(zhuǎn)鐵蛋白受體,在對比劑上共價(jià)結(jié)合轉(zhuǎn)鐵蛋白后與細(xì)胞進(jìn)行孵育進(jìn)行轉(zhuǎn)染。1998年,Moore等首次構(gòu)建了含有轉(zhuǎn)鐵蛋白基團(tuán)的氧化鐵顆粒后,用這種特異對比劑標(biāo)記干細(xì)胞,其轉(zhuǎn)鐵蛋白基團(tuán)會和干細(xì)胞細(xì)胞膜上的轉(zhuǎn)鐵蛋白受體特異性結(jié)合,引起局部細(xì)胞膜內(nèi)陷,進(jìn)而形成內(nèi)飲泡,將受體-轉(zhuǎn)鐵蛋白-氧化鐵顆粒轉(zhuǎn)運(yùn)入細(xì)胞內(nèi),受體與轉(zhuǎn)鐵蛋白-氧化鐵顆粒分離后,返回細(xì)胞膜,而將轉(zhuǎn)鐵蛋白-氧化鐵顆粒則留在細(xì)胞內(nèi),可供MRI檢測[24]。任靜等構(gòu)建前列腺干細(xì)胞抗原(PSCA)特異性MR分子探針7F5@GoldMag用于體外前列腺癌細(xì)胞MR成像,實(shí)現(xiàn)了對前列腺細(xì)胞的高效特異性標(biāo)記,而對照組中使用7F5@GoldMag標(biāo)記物對肝癌細(xì)胞無法進(jìn)行有效標(biāo)記[25]。
電穿孔是功能強(qiáng)大轉(zhuǎn)染技術(shù),可將核酸、蛋白及其他分子導(dǎo)入多種細(xì)胞。通過高強(qiáng)度的電場作用,瞬時(shí)提高細(xì)胞膜的通透性,從而吸收周圍介質(zhì)中的外源分子。這種技術(shù)可以將核苷酸、DNA 與RNA、蛋白、糖類、染料及病毒顆粒等導(dǎo)入原核和真核細(xì)胞內(nèi)。Geninatti等使用電穿孔方法將質(zhì)粒DNA和Gd-DOTA-spd共同轉(zhuǎn)入干細(xì)胞內(nèi),通過免疫組化和MRI共同證實(shí)了此方法對干細(xì)胞標(biāo)記的有效性[26]。Walczak等使用130 V和17 ms的電脈沖條件將菲立磁顆粒轉(zhuǎn)染入骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞和神經(jīng)干細(xì)胞,并證實(shí)電穿孔標(biāo)記法對干細(xì)胞分化能力沒有明顯影響[27]。Terreno等[5],應(yīng)用電穿孔方法將Gd-HPDO3A標(biāo)記入大鼠肝癌細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中,并采用直接孵育法將Gd-HP-DO3A標(biāo)記入大鼠肝癌細(xì)胞的內(nèi)囊泡中,發(fā)現(xiàn)等量的Gd-HP-DO3A進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)比進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)囊泡能在MRI下造成更強(qiáng)的信號變化,其認(rèn)為對比劑在細(xì)胞內(nèi)分布的均勻程度影響MRI信號變化的幅度。
MRI監(jiān)測移植細(xì)胞要求細(xì)胞內(nèi)對比劑濃度達(dá)到一定劑量,為了提高被標(biāo)記細(xì)胞中磁共振對比劑的濃度,最簡單的辦法就是在標(biāo)記的過程中增大對比劑的用量或者延長標(biāo)記時(shí)間,但是這都將造成較強(qiáng)的細(xì)胞毒性,降低細(xì)胞的活力、增殖力以及分化能力,直接影響到細(xì)胞移植后的治療效果。而且,某些情況下提高對比劑濃度并不一定能有效提高標(biāo)記效果。較早的研究已經(jīng)總結(jié)出了各類常用對比劑在不引起明顯細(xì)胞毒性的范圍內(nèi)所能使用的最高劑量和最長標(biāo)記時(shí)間。隨后研究者將目光集中于開發(fā)新型對比劑和輔助標(biāo)記方法,如輔助轉(zhuǎn)染試劑、對比劑表面靶向修飾等,通過這些方法,研究者已經(jīng)可以對多種較難標(biāo)記的細(xì)胞實(shí)現(xiàn)在低毒甚至無毒的條件下完成標(biāo)記。通過以上努力,研究者實(shí)現(xiàn)了通過MRI監(jiān)測移植細(xì)胞的遷移與分布的目的。但隨著移植細(xì)胞的凋亡、增殖或其他生理活動,細(xì)胞中的部分對比劑會釋放到組織間隙或其他內(nèi)源性細(xì)胞中引起假陽性,這一問題仍待解決。事實(shí)上,目前更多的研究集中于監(jiān)測移植細(xì)胞在體內(nèi)功能狀態(tài)的變化,本文作者所在課題組現(xiàn)在也在進(jìn)行此類研究。此類研究主要以兩種策略為主,既基因表達(dá)報(bào)告標(biāo)記物策略和酶解激活報(bào)告標(biāo)記物策略。細(xì)胞功能狀態(tài)的改變實(shí)際上是由某些特定基因表達(dá)的變化引起的,針對這些基因及其下游表達(dá)產(chǎn)物設(shè)計(jì)可調(diào)控對比劑,就可以實(shí)現(xiàn)依靠特定基因的表達(dá)控制對比劑的活性,只有特定基因表達(dá)后對比劑才被激活,才能引起MRI信號變化,從而實(shí)現(xiàn)通過MRI監(jiān)測細(xì)胞功能狀態(tài)的目的。本課題組正在進(jìn)行新型基因表達(dá)報(bào)告標(biāo)記物的研究工作,預(yù)期通過MRI監(jiān)測移植干細(xì)胞在體內(nèi)定向分化的過程。
[References]
[1]Romano G.Stem cell transplantation therapy:controversy over ethical issues and clinical relevance.Drug News Perspect,2004,17(10):637-645.
[2]Modo M.Noninvasive imaging of transplanted cells.Curr Opin Organ Transplant,2008,13(6):654-658.
[3]Baligand C,Vauchez K,Fiszman M,et al.Discrepancies between thefate ofmyoblast xenograft in mouse leg muscle and NMR label per2sistency after loadingwith Gd2DTPA or SPIOs.Gene Ther,2009,16(6):734-745.
[4]Crich SG,Biancone L,Cantaluppi V,et al.Improved Route for the Visualization of Stem Cells Labeled With a Gd-/Eu-Chelate as Dual (MRI and Fluorescence) Agent.Magnetic Resonance in Medicine,2004,51(5):938-944.
[5]Terreno E,Crich SG,Belfiore S,et al.Effect of the Intracellular Localization of a Gd-Based Imaging Probe on the Relaxation Enhancement of Water Protons.Magnetic Resonance in Medicine,2006,55(3):491-497
[6]Deng YB,Bi XB,Shen J,et al.Tracking of mesenchymal stem cells labeled with Gd-DTPA by MR imaging in spinal cord injury model.Chin J Med Imaging Technol,2008,24(6):843-847.鄧宇斌,畢小彬,沈君,等.Gd-DTPA標(biāo)記骨髓間質(zhì)干細(xì)胞在脊髓損傷模型中的磁共振示蹤研究.中國醫(yī)學(xué)影像技術(shù),2008,24(6):843-847.
[7]Laura E.Gonzalez-Lara,Xiaoyun Xu,Klara Hofstetrova,et al.The Use of Cellular Magnetic Resonance Imaging to Track the Fate of Iron-Labeled Multipotent Stromal Cells after Direct Transplantation in a Mouse Model of Spinal Cord Injury.Mol Imaging Biol,2010 Aug 5.[Epub ahead of print]
[8]Bonnemain B.Superparamagnetic agents in magnetic resonance imaging:physicochemical characteristics and clinical applications.J Drug Targeting,1998,6(3):167-174.
[9]Chen CQ,Wang XY,Chen C,et al.In vivo MR tracking imaging of SPIO-labeled adipose-derived stem cells transplantation in rat models of brain infarction.Chin J Magn Reson Imaging,2010,1(1):50-54.陳長青,王小宜,陳晨,等.SPIO標(biāo)記脂肪干細(xì)胞移植治療大鼠腦梗死的磁共振示蹤成像研究.磁共振成像,2010,1(1):50-54.
[10]Frank JA,Anderson SA,Kalsih H,et al.Methods for magnetically labeling stem and other cells for detection by in vivo magnetic resonance imaging.Cytotherapy,2004,6(6):621-625.
[11]Bulte JW,Kraitchman DL.Iron oxide MR contrast agents for molecular and cellular imaging.NMR Biomed,2004,17(7):484-499.
[12]Wang JD,Hu QJ,Zhu FP,et al.Ferritin coordinates with SPIO in tracking C6 rat glioma cells by MRI.Chin J Magn Reson Imaging,2010,1(4):299-304.王建東,胡秋菊,朱飛鵬,等.鐵蛋白與SPIO在磁共振細(xì)胞活體示蹤中的增效作用.磁共振成像,2010,1(4):299-304.
[13]RogersWJ,Meyer CH,Kramer CM,et al.Technology insight:in vivo cell tracking by use of MRI.Nat Clin Pract Cardiovasc Med,2006,3(10):554-562.
[14]Ahrens ET,Flores R,Xu HY,et al.In vivo imaging platform for tracking immunotherapeutic cells.Nat Biotechnol,2005,23(8):983-987.
[15]Janjic JM,Ahrens ET.Fluorine-containing nanoemulsions for MRI cell tracking.Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol,2009,1(5):492-501.
[16]Rausch M,Baumann D,Neubacher U,et al.In-vivo visualization of phagocytotic cells in rat brains after transient ischemia by USPIO.NMR Biomed,2002,15(4):278-283.
[17]Saleh A,Wiedermann D,Schroeter M,et al.Central nervous system infl ammatory response after cerebral infarction as detected by magnetic resonance imaging.NMR Biomed,2004,17(4):163-169.
[18]de Vries IJM,Lesterhuis WJ,Barentsz JO,et al.Magnetic resonance tracking of dendritic cells in melanoma patients for monitoring of cellular therapy.Nat Biotechnol,2005,23(11):1407-1413.
[19]Himmelreich U,Aime S,Hieronymus T,et al.A responsive MRI contrast agent to monitor functional cell status.Neuroimage,2006,32(3):1142-1149.
[20]Jendelová P,Herynek V,DeCroos J,et al.Imaging the fate of implanted bone marrow stromal cells labeled with superparamagnetic nanoparticles.Magn Reson Med,2003,50(4):767-776.
[21]Pawelczyk E,Jordan EK,Balakumaran A,et al.In vivo transfer of intracellular labels from locally implanted bone marrow stromal cells to resident tissue macrophages.PLoS One,2009,4(8):e6712.
[22]Arbab AS,Yocum GT,Kalsih H,et al.Effi cient magnetic cell labeling with protamine sulfate complexed to ferumoxides for cellular MRI.Blood,2004,104(4):1217-1223.
[23]van den Bos EJ,Wagner A,Mahrholdt H,et al.Improved efficacy of stem cell labeling for magnetic resonance imaging studies by the use of cationic liposomes.Cell Transplant,2003,12(7):743-756.
[24]Moore A,Basilion JP,Chiocca EA,et al.Measuring transferrin receptor gene expression by NMR imaging.Biochim Biophys Acta,1998,1402(3):239-249.
[25]Ren J,Yang Y,Wang F,et al.MRI of prostate stem cell antigen specific MR molecular probe in human prostate cancer at 3.0 T:in vitro experimental study.Chin J Magn Reson Imaging,2010,1(2):138-141.任靜,楊勇,王芳,等.前列腺干細(xì)胞抗原特異性MR分子探針體外成像實(shí)驗(yàn)研究.磁共振成像,2010,1(2):138-141.
[26]Geninatti CS,Lanzardo S,Barge A,et al.Visualization throughmagnetic resonance imaging of DNA internalized following in vivoelectroporation.Mol Imaging,2005,4(1):7-17.
[27]Walczak P,Kedziorek DA,Gilad AA,et al.Instant MR labeling of stem cells using magnetoelectroporation.Magn Reson Med,2005,54(4):769-774.