劉純真 王云龍 景建洲
摘要:根據(jù)單增李斯特菌(Listeria monocytogenes)的hly、prfA和iap基因設(shè)計了3對常規(guī)引物和DPO(Dual priming oligonucleotide)引物,采用多重PCR的方法,建立了單增李斯特菌的快速檢測體系,并比較了常規(guī)引物和DPO引物的優(yōu)劣,結(jié)果表明DPO引物的特異性強,能夠快速準確地檢測單增李斯特菌。
關(guān)鍵詞:單增李斯特菌;DPO(Dual priming oligonucleotide)引物;多重PCR
中圖分類號:R378文獻標識碼:A文章編號:0439-8114(2011)15-3197-04
Multiplex PCR for Detection of Listeria monocytogenes with DPO Primers
LIU Chun-zhen1,WANG Yun-long2,JING Jian-zhou1
(1. Food and Bioengineering School Zhengzhou University of Light Industry, Zhengzhou 450002, China;
2. Henan Bioengineering Technology Research Center, Zhengzhou 450002, China)
Abstract: Dual priming oligonucleotide(DPO) primers of three genes, hly, prfA and iap, of Listeria monocytogenes were applied for the detection of L. monocytogenes by multiplex polymerase chain reaction(PCR), and compared with 3 pairs of regular primers. The results showed that DPO primers had high specificity compared with conventional PCR primers, could detect L. monocytogenes accurately and quickly.
Key words: Listeria monocytogenes; DPO(Dual priming oligonucleotide) primers; multiplex PCR
單核細胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes,簡稱單增李斯特菌)是危害公共衛(wèi)生和食品行業(yè)的一種重要人畜共患病致病菌,使人和動物患腦膜炎、腦炎、敗血癥及造成孕婦流產(chǎn)、死胎等疾病,病死率很高。它能夠耐受低pH、高鹽環(huán)境,并且能在較寬溫度范圍內(nèi)生長[1]。近年來,很多的突發(fā)病例都與消費的食品被單增李斯特菌污染有關(guān)。因此,快速、準確地檢測單增李斯特菌對于預防這些疾病的發(fā)生至關(guān)重要。目前,PCR技術(shù)被廣泛應(yīng)用于單增李斯特菌的檢測。多重PCR是在常規(guī)PCR基礎(chǔ)上改進并發(fā)展起來的一種新型PCR擴增技術(shù),是在同一反應(yīng)體系中加入多對引物同時擴增多條目的DNA片段的方法[2],采用這一技術(shù)可同時檢測多種病原微生物。多重PCR雖為一種特異靈敏、簡便快速、高通量的檢測技術(shù),但如果實驗條件控制不當,很容易導致擴增失敗或非特異性產(chǎn)物[3];引物的設(shè)計及靶序列的選擇不當?shù)榷伎赡芙档推潇`敏度和特異性。
近年來,一種新興的DPO(Dual priming oligonucleotide)技術(shù),既可保證擴增的特異性,又可大大提高擴增效率,為多重PCR技術(shù)的應(yīng)用提供了新的前景[4]。本研究采用DPO技術(shù),建立了多重PCR檢測體系,以達到快速準確檢測單增李斯特菌的目的。
1材料與方法
1.1材料與儀器
菌種:單增李斯特菌(GIM1.228)購于廣東省微生物菌種保藏中心;試劑:10×PCR buffer、Taq DNA聚合酶購于北京百泰克生物技術(shù)有限公司;DNA Marker購于寶生物工程有限公司;設(shè)備:梯度PCR儀(美國ABI公司),凝膠成像系統(tǒng)(美國ULTRA. LUM.Inc)。
1.2引物的設(shè)計與合成
根據(jù)單增李斯特菌的hly、prfA、iap基因的保守序列[5-7]分別設(shè)計3對常規(guī)引物以及相應(yīng)的DPO引物,由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,具體如下(表1)。
1.3實驗方法
1.3.1單增李斯特菌DNA的提?。茫瑁澹欤澹保埃胺ㄌ崛卧隼钏固鼐模危粒郏福?。Chelex-100作為一種離子螯合劑,由苯乙烯和苯二乙烯組成。其懸液在堿性環(huán)境(pH 10~11)和100 ℃的條件下,可導致細胞膜的破裂和DNA的變性并釋放出來。①取適量細菌到1.5 mL離心管中,加入500 μL純水,劇烈振蕩,室溫下放置15 min。②12 000 r/min離心3 min,去上清,收集沉淀(必要時可用蒸餾水反復洗沉淀物,直至無色或色素很少)。③沉淀中加入200 μL 5% Chelex-100溶液(使用前充分振搖,使Chelex-100顆粒懸?。谡袷幤魃戏磸驼袷?,56 ℃保溫30 min以上。④取出后振蕩,100 ℃保溫8 min,振蕩后12 000 r/min離心3 min,取上清液用于PCR擴增,或放4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.23重PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化以單增李斯特菌DNA為模板,分別對常規(guī)引物和DPO引物的3重PCR的反應(yīng)條件進行優(yōu)化并比較。反應(yīng)體系為25 μL,包括10×PCR buffer 2.5 μL,25 mmol/L Mg2+ 2.0 μL,2.5 mmol/L dNTPs 2.0 μL,3對10 μmol/L引物各0.5 μL,3 U/μL Taq DNA 聚合酶0.5 μL。對PCR反應(yīng)的退火溫度、Mg2+濃度、引物濃度等進行優(yōu)化。
1.3.3DPO引物與常規(guī)引物的特異性檢測以金黃色葡萄球菌、金黃色葡萄球菌亞Ⅰ型、金黃色葡萄球菌亞Ⅱ型、沙門氏菌、乙型沙門氏菌、甲型沙門氏菌、鼠傷寒沙門氏菌、單增李斯特菌、威爾氏李斯特菌、痢疾志賀氏菌、宋氏志賀氏菌、福氏志賀氏菌、大腸桿菌(肉中提取、JM109、ATCC25922、大腸桿菌O157)的DNA為模板,分別用3個基因的常規(guī)和DPO引物進行PCR擴增,所得的PCR產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測。
1.3.4DPO引物多重PCR的靈敏度檢測將單增李斯特菌標準菌株培養(yǎng)至對數(shù)期,通過LB瓊脂平板計數(shù)測菌落數(shù)。將菌樣分別用超純水進行倍比稀釋,12 000 r/min離心2 min,采用Chelex-100法抽提DNA。PCR反應(yīng)程序為:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性1 min,58 ℃退火40 s,72 ℃延伸50 s,30個循環(huán);72 ℃延伸7 min。?。校茫耶a(chǎn)物7 μL進行瓊脂糖凝膠電泳(60 V 1 h),照相觀察和分析。
2結(jié)果與分析
2.13重PCR反應(yīng)條件
2.1.1退火溫度對常規(guī)引物和DPO引物的3重PCR的退火溫度進行優(yōu)化,電泳結(jié)果見圖1、圖2,兩種引物在55~59 ℃之間都能擴增出目的條帶,但DPO引物擴增出的條帶亮度更好。
2.1.2Mg2+ 濃度對常規(guī)引物和DPO引物的3重PCR的Mg2+濃度進行優(yōu)化,電泳結(jié)果見圖3、圖4。Mg2+濃度較低時,兩種引物都僅能擴增出2條目的條帶;Mg2+濃度大于2.5 mmol/L時,DPO引物擴增出3條目的條帶,而常規(guī)引物擴增出非特異性條帶。由此可見Mg2+對DPO引物的影響較小,用DPO引物擴增時,在較高Mg2+濃度條件下也能保證擴增的特異性。此后的反應(yīng)中,在25 μL 3重PCR反應(yīng)體系中添加Mg2+濃度為1.8 mmol/L。
2.1.3引物濃度由圖5和圖6可知,不同濃度的常規(guī)引物和DPO引物都能擴增出3條目的條帶,都有很強的特異性。此后的反應(yīng)中,在25 μL 3重PCR擴增體系中添加3種引物的上下游引物濃度都為200 nmol/L。
2.2DPO引物與常規(guī)引物特異性比較
對常規(guī)引物和DPO引物的特異性檢測結(jié)果見圖7和圖8。DPO引物僅在單增李斯特菌擴增出目的條帶,而常規(guī)引物在大腸桿菌(肉中提?。?、威爾氏李斯特菌和宋氏志賀氏菌中均有非特異性條帶出現(xiàn)。因此,DPO引物的特異性要強于常規(guī)引物。
2.3DPO引物與常規(guī)引物靈敏度的比較
LB瓊脂平板計數(shù)法測得單增李斯特菌的菌體濃度約為108 CFU/mL。將菌液稀釋,分別用常規(guī)和DPO引物進行3重PCR擴增。從圖9、圖10可以看出常規(guī)和DPO引物擴增單增李斯特菌的檢測靈敏度都為107 CFU/mL,沒有太大差別。DPO多重PCR體系中菌體稀釋到100倍以后就沒有條帶出現(xiàn),并沒有表現(xiàn)出優(yōu)勢,這可能與DPO引物的結(jié)構(gòu)有關(guān),需要進一步研究。
3結(jié)論
DPO引物具有特殊的結(jié)構(gòu),引物自身以及引物之間很少形成二級結(jié)構(gòu),試驗過程中不需要對引物進行篩選,從而可以簡化操作步驟[9]。DPO引物特異性強,與模板發(fā)生錯配的幾率很小,一旦有3個以上堿基錯配,就不會成功擴增[10]。本研究中DPO引物與常規(guī)引物相比,在退火溫度上沒有表現(xiàn)出很大的優(yōu)越性,但對Mg2+濃度不敏感,在高Mg2+濃度下還能保證擴增特異性。
本研究建立的DPO多重PCR方法可在較短時間內(nèi)準確地完成對單增李斯特菌的檢測。其與常規(guī)引物的對比表明DPO引物具有很強的特異性,DPO引物的應(yīng)用可以解決限制多重PCR發(fā)展的非特異性問題,具有較強的應(yīng)用價值。
參考文獻:
[1] 徐偉,李素芳,劉軍. PCR技術(shù)檢測單核細胞增生李斯特氏菌研究進展[J]. 生物技術(shù)通報,2008(1):95-99.
[2] 宋岱松.多重PCR技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用[J]. 山東畜牧獸醫(yī),2009,30(5):57-58.
[3] 韋兵, 劉永松,趙明. 食源性致病菌快速檢測方法研究進展[J]. 河北農(nóng)業(yè)科學,2008,12(2):3-5.
[4] CHUN J Y,KIM K J,HWANG I T,et al. Dual priming oligonucleotide system for the multiplex detection of respiratory viruses and SNP genotyping of CYP2C19 gene[J]. Nucleic Acids Research,2007,35(6):e40.
[5] 陳偉,楊迎伍,鄧偉,等. 3種致病菌多重PCR檢測體系的建立及應(yīng)用[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè),2008,34(9):132-136.
[6] 徐偉,劉軍,李素芳. 單增李斯特菌與志賀氏菌多重PCR檢測技術(shù)的建立[J]. 中國食品學報,2009,9(1):201-206.
[7] 李盛豐,趙嬌,鐘名華,等.單增李斯特菌不同PCR快速檢測方法比較[J],中國公共衛(wèi)生,2008,24(8):1021-1023.
[8] 景建洲,趙培培,王博飛. 利用Agilent 2100 Bioanalyzer檢測食源性致病志賀氏菌[J]. 食品科技,2010,35(1):293-296.
[9] KIM J K,LEE H J,LEE Y J,et al. Direct detection of lamivudine-resistant hepatitis B virus mutants by a multiplex PCR using dual-priming oligonucleotide primers[J]. Journal of Virological Methods,2008,149(1):76-84.
[10] 劉梅,黃新,馬占鴻,等. 應(yīng)用DPO引物檢測馬鈴薯病毒的多重RT-PCR技術(shù)研究[J]. 植物病理學報,2009,39(4):431-444.