韓鵬 梁媛媛 趙昱 劉陽 楊潤琴 鄧志宏
聲帶是發(fā)聲的主要器官,其固有層的組織結(jié)構(gòu)是正常發(fā)聲的基礎(chǔ)。手術(shù)、外傷、慢性炎癥均有可能導(dǎo)致聲帶固有層損傷,造成細(xì)胞外基質(zhì)成分的正常結(jié)構(gòu)破壞,大量纖維組織增生、排列紊亂,從而產(chǎn)生瘢痕導(dǎo)致發(fā)聲障礙。目前用于治療聲帶損傷的方法主要為聲帶注射術(shù),通過注射生物材料作為填充物,以減少聲帶瘢痕的形成,而術(shù)后對瘢痕愈合過程的觀察多限于大體形態(tài)觀察,包括損傷處局部有無充血、水腫、萎縮及瘢痕形成等。對聲帶細(xì)胞外基質(zhì)成分的變化缺乏敏感指標(biāo),聲帶固有層細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)成分主要包括膠原纖維、彈力纖維、透明質(zhì)酸和纖維連接蛋白(fibronectin)。膠原纖維起ECM的支架作用,聲帶損傷后其含量增加,呈粗而排列紊亂的纖維束;彈力纖維可以維持組織的彈力,損傷后其含量下降,排列紊亂;透明質(zhì)酸影響聲帶的粘彈力,損傷后含量持續(xù)下降;纖維連接蛋白則是纖維化過程的前驅(qū)物質(zhì),損傷后含量持續(xù)增加[1~5]。因此,這些成分的變化可以在組織水平反應(yīng)聲帶固有層損傷后的修復(fù)情況。
為更好的觀察各種材料對聲帶損傷的修復(fù)作用,建立完善的聲帶損傷動物模型十分關(guān)鍵。目前常用的聲帶損傷動物模型有小鼠、大鼠、兔及犬模型等。因犬聲帶組織結(jié)構(gòu)與人相近,是理想的實(shí)驗(yàn)動物[6,7]。聲帶手術(shù)導(dǎo)致的損傷常見的有激光造成的熱損傷及手術(shù)器械造成的銳性損傷,半導(dǎo)體激光因其出血少等優(yōu)點(diǎn)已廣泛應(yīng)用于嗓音外科[8~11]。因此,本實(shí)驗(yàn)選用犬為實(shí)驗(yàn)動物,模擬臨床激光手術(shù),在支撐喉鏡下用半導(dǎo)體激光損傷雙側(cè)聲帶,觀察術(shù)后聲帶愈合的大體形態(tài)及組織學(xué)變化,為下一步用干細(xì)胞修復(fù)聲帶損傷的實(shí)驗(yàn)提供基礎(chǔ)。
1.1實(shí)驗(yàn)動物 健康成年中華田園犬5只,體重10~15 kg,隨機(jī)編為1、2、3、4、5號犬,1號為對照組,2~5號為實(shí)驗(yàn)組。實(shí)驗(yàn)動物由第四軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供,實(shí)驗(yàn)期間在第四軍醫(yī)大學(xué)西京醫(yī)院動物中心飼養(yǎng)。
1.2主要材料及器材 支撐喉鏡(定制),半導(dǎo)體激光儀(Leica),冷光源(Olympus),0o內(nèi)鏡(Stryker),視頻記錄系統(tǒng)(Sony),冰凍切片機(jī)(Leica),抗Fibronectin抗體(1:100 abcam),Masson三色染色、Elastin VG、愛先藍(lán)染色套裝(珠海貝索生物)。
1.3犬聲帶損傷模型建立方法 動物術(shù)前禁食12 小時,制動后稱重,經(jīng)后肢肌肉注射速眠新0.1 mg/kg,戊巴比妥鈉0.2 mg/kg。麻醉后將動物固定于手術(shù)臺,將2~5號犬在支撐喉鏡下暴露雙側(cè)聲帶,局部噴少量利多卡因,半導(dǎo)體激光10 W點(diǎn)狀損傷雙側(cè)聲帶膜部中后1/3段,面積約8 mm2,深達(dá)甲杓肌。術(shù)后3 d連續(xù)肌肉注射慶大霉素2 ml/只。1號犬不作任何處理,作為對照組。
1.4大體形態(tài)學(xué)及組織學(xué)觀察 分別于術(shù)后4 d、2、4、8 w在支撐喉鏡下觀察聲帶創(chuàng)傷大體愈合情況后,各處死一只犬,于聲帶損傷處取材,一側(cè)聲帶冰凍切片行免疫組化Fibronectin染色,另一側(cè)石蠟切片行HE染色觀察聲帶的炎癥情況及Masson三色染色、Elastin VG染色、愛先藍(lán)染色分別觀察膠原、彈力纖維、透明質(zhì)酸的變化。
1.5統(tǒng)計學(xué)方法 組織切片40倍顯微鏡下觀察聲帶固有層結(jié)構(gòu),100倍顯微鏡下通過PhotoshopCS3軟件對固有層細(xì)胞外基質(zhì)成分進(jìn)行全層量化數(shù)據(jù)分析,計算各個時間點(diǎn)聲帶固有層中膠原、彈力纖維、透明質(zhì)酸及纖維連接蛋白的面積同固有層面積的百分比,每側(cè)任意選3張切片行計量分析。
2.1術(shù)后犬聲帶大體形態(tài)變化 術(shù)后動物均健康存活,支撐喉鏡下見正常聲帶表面呈白色,粘膜光滑。術(shù)后4 d(2號犬)雙側(cè)聲帶充血、水腫,處于急性炎癥期;術(shù)后2 w(3號犬)雙側(cè)聲帶充血水腫減輕,表面覆有偽膜;4 w(4號犬)時損傷部位基本愈合,表面不規(guī)則且瘢痕形成,無明顯水腫或萎縮;8 w(5號犬)時可見聲帶瘢痕,損傷局部萎縮(圖1)。
2.2組織學(xué)變化
2.2.1HE染色結(jié)果 正常聲帶表面被覆復(fù)層扁平上皮,下為結(jié)締組織構(gòu)成的固有層,主要含有膠原纖維、彈力纖維、纖維連接蛋白及透明質(zhì)酸。術(shù)后4 d,雙側(cè)聲帶損傷處未被上皮覆蓋,局部大量炎性細(xì)胞浸潤及血管形成;術(shù)后2 w受損部位已被上皮完全覆蓋,炎性細(xì)胞較前減少;4 w時受損聲帶固有層被致密的纖維組織所替代,大量纖維組織無序排列;8 w時纖維組織有所增粗,排列紊亂,但局部無明顯炎性細(xì)胞浸潤。由于炎癥反應(yīng),術(shù)后2 w開始固有層出現(xiàn)大量腺體增生,至8 w時腺體未減少(圖2a~e)。
圖1 支撐喉鏡下所見正常、激光損傷即刻、損傷后各觀察時間點(diǎn)犬聲帶形態(tài)
圖2 聲帶組織HE染色及Masson三色染色圖片
圖3 聲帶組織EVG及愛先藍(lán)染色圖片
圖4 免疫組化DAB顯色圖片(×100)
2.2.2特殊染色及免疫組化觀察固有層ECM變化 Masson三色染色示膠原在正常聲帶內(nèi)主要分布在固有層深層;2 w時膠原含量持續(xù)增加,膠原間夾雜大量腺體;4 w時膠原纖維呈條索狀,排列紊亂,含量持續(xù)增加;8 w時膠原呈粗大條索狀,分布紊亂,含量增加(圖2f~i)。EVG染色示正常犬聲帶內(nèi)彈力纖維主要分布在固有層中層;術(shù)后2 w時其含量減少,排列紊亂;4 w時含量持續(xù)降低,纖維束較細(xì);8 w時含量趨于穩(wěn)定,排列略顯紊亂(圖3a~d )。愛先藍(lán)染色示透明質(zhì)酸在正常聲帶內(nèi)分布于固有層全層,術(shù)后2 w時含量降低,隨后含量持續(xù)下降(圖3e~h)。
免疫組化染色示纖維連接蛋白在正常犬聲帶內(nèi)位于固有層全層,淺層含量略多。損傷后2 w至4 w,其含量持續(xù)增加,損傷后8 w時,含量略有上升(圖4a~d )。損傷后各組動物聲帶固有層細(xì)胞外基質(zhì)成分含量的變化見表1。因術(shù)后4 d時聲帶充血水腫明顯,膠原纖維與肌組織結(jié)構(gòu)混亂,各種ECM成分含量不易檢測,故表1中無術(shù)后4 d的數(shù)據(jù)。
研究聲帶損傷的修復(fù)需要相應(yīng)的聲帶損傷動物模型,既往有學(xué)者選用小鼠、大鼠、兔及犬模型等[12~15],由于不同種屬動物組織結(jié)構(gòu)不同,獲得的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)差異較大,小鼠和大鼠雖易飼養(yǎng)和實(shí)驗(yàn)操作,但其聲帶偏短不利于行聲帶注射術(shù),且術(shù)后愈合情況不易觀察;兔的聲帶雖較長,但由于解剖原因兔聲帶不易暴露,手術(shù)多采用喉裂開方式,創(chuàng)傷較大;犬易飼養(yǎng),其聲帶組織結(jié)構(gòu)與人類相近,較適合作為實(shí)驗(yàn)動物。因此,本實(shí)驗(yàn)選用犬為研究對象,模擬臨床激光手術(shù),建立了激光損傷犬雙側(cè)聲帶的動物模型。
表1 對照組及損傷后不同時間犬聲帶固有層中膠原、彈力纖維、透明質(zhì)酸及纖維連接蛋白含量的變化(%)(n=1)
既往Tateya等[16]在內(nèi)窺鏡下用顯微鑷將大鼠聲帶固有層剝離,術(shù)后2、4及8 w分別觀察聲帶固有層ECM的改變,結(jié)果顯示隨著時間的推移,術(shù)后聲帶中膠原纖維含量持續(xù)增加,透明質(zhì)酸含量持續(xù)下降,纖維連接蛋白含量持續(xù)上升。Rousseau等[17]在內(nèi)窺鏡下用顯微剪將犬聲帶固有層與肌層銳性分離,分別于術(shù)后2、6月時觀察聲帶內(nèi)膠原纖維、彈力纖維、透明質(zhì)酸、纖維連接蛋白的含量,結(jié)果示術(shù)后2月時聲帶固有層膠原含量上升,彈力纖維含量下降,膠原纖維及透明質(zhì)酸含量與對照組無明顯差別,術(shù)后6月時膠原含量上升,彈力纖維含量下降,透明質(zhì)酸含量與對照組無顯著性差異。本研究結(jié)果顯示,激光損傷犬聲帶后4 d時,聲帶表面充血水腫,膠原纖維與肌組織結(jié)構(gòu)混亂,各種ECM成分不易檢測,術(shù)后2 w時膠原纖維增生,固有層細(xì)胞合成大量ECM成分修復(fù)缺損,術(shù)后4~8 w時膠原含量增加,纖維連接蛋白含量略上升,此期瘢痕組織漸趨于成熟,與上述學(xué)者的研究結(jié)果基本相符。說明半導(dǎo)體激光損傷聲帶的效果與使用顯微剪、顯微鑷損傷固有層的效果無明顯差別,提示半導(dǎo)體激光熱損傷是一種可行的建立聲帶損傷動物模型的方式。
綜上所述,支撐喉鏡下應(yīng)用半導(dǎo)體激光造成犬聲帶膜部熱損傷,損傷后聲帶固有層內(nèi)大量纖維組織形成,膠原含量上升,彈力纖維含量降低,透明質(zhì)酸含量降低,纖維連接蛋白含量上升,為研究聲帶損傷的修復(fù)提供了可靠的動物模型。
4 參考文獻(xiàn)
1 Hirano S. Current treatment of vocal fold scarring[J]. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg, 2005,13: 143.
2 Hansen J, Thibeault S. Current understanding and review of the literature: vocal fold scarring[J]. J Vioce,2006,20:110.
3 Hirano S, Minamiguchi S, Yamashita M. Histologic characterization of human scarred vocal folds[J]. J Voice, 2009, 23:399.
4 Ichiro T, Tomoko T, Diane B, et al. Cell production in injured vocal fold: a rat stady[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol, 2006, 115:135.
5 Gray SD, Titze IR, Alipour F. Biomechanical and histologic observations of vocal fold fibrous proteins[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol, 2000, 109:77.
6 Kanemanl S, NakamruaT, Omori L, et al .Regeneration of the vocal fold using autologous mesenchymal stem cells[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol, 2003,112:915.
7 Byung G, Soo GW, Jin SJ, et al.The prevention of vocal fold scarring using autologous adipose tissue-derived stomal cells[J]. Cells Tissues Organs, 2006,184:198.
8 Sittel C, Eckel H, Eschenburg C. Phonatory results after laser surgery for glottic carcinoma[J]. Otolaryngol Head Neck Surg, 1998,119:418.
9 Yan Y, Olszewski A, Jiang J. Use of lasers in laryngeal surgery[J]. J Voice, 2010,24:102.
10 Benninger S. Laser surgery for nodules and other benign laryngeal lesions[J]. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2009,17:440.
11 Remijn E, Marres A, Hoogen J. Endoscopic laser treatment in pre-malignant and malignant vocal fold epithelial lesions[J]. Laryngol Otol, 2002,116:1 019.
12 Kanemal L, Nakamura T, Yamashita M, et a1.Destiny of autologous bone marrow-derived stromal cells implanted in the vocal fold[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol, 2005,114:907.
13 Hertegard S,Cedervall J,Svensson B,et al.Viscoelastic and histologic properties in scarred rabbit vocal folds after mesenchymal stem cell injection[J].Laryngoscope,2006,116:1 248.
14 Babak J, Dinesh C, Ming Y,et al. Hylan B Gel Restores Structure and Function to Laser-Ablated Canine Vocal Folds[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol,2008,117:703.
15 Halum SL, Naidu M, Delo DM, Autologous musclestem cells for the treatment of vocal fold paralysis:pilot study[J]. Laryngoscope, 2007, 117:917.
16 Tateya T, Tateya I, Sohn JH. Histological study of acute vocal fold injury in a rat model[J]. Ann Otol Rhinol Laryngol,2006,115:285.
17 Rousseau B,Hirano S,Scheidt T,Characterization of vocal fold scarring in a canine model[J]. Laryngoscope, 2003,113: 620.