李明石 曲 迪 李成龍 王呈玉 王玉軍 趙蘭坡
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),長(zhǎng)春,130118)
多菌靈(Carbendazim)是一種廣譜型內(nèi)吸性、環(huán)境激素類化學(xué)農(nóng)藥[1],化學(xué)名稱 N-(2-苯并咪唑基)氨基甲酸甲酯。許多國(guó)家用于農(nóng)業(yè)上防治各種作物病害[2],其它內(nèi)吸性殺菌劑如苯菌靈、苯并咪唑類和托布津類殺菌劑均可在土壤中和作物體中轉(zhuǎn)化為多菌靈而起到藥效作用[3]。多菌靈在土壤和水體中化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,半衰期較長(zhǎng),長(zhǎng)期施用多菌靈對(duì)土壤和水體造成污染,同時(shí)可以在水果蔬菜等作物中殘留,對(duì)哺乳動(dòng)物易導(dǎo)致免疫功能下降和染色體畸變而影響后代繁衍[4-9]。
近年來(lái),隨著農(nóng)業(yè)的發(fā)展,在設(shè)施蔬菜生產(chǎn)過(guò)程中,大量的使用有機(jī)合成農(nóng)藥——多菌靈,導(dǎo)致多菌靈在設(shè)施土壤中有一定的累積,造成了土壤和地下水污染加劇,這不僅影響到設(shè)施蔬菜的高產(chǎn)、高效及優(yōu)質(zhì)生產(chǎn),而且影響蔬菜的質(zhì)量安全,成為設(shè)施蔬菜可持續(xù)發(fā)展的關(guān)鍵制約因素[10]。多菌靈污染場(chǎng)地的生物修復(fù)作為多菌靈污染治理的一種易于實(shí)現(xiàn)原位修復(fù)、經(jīng)濟(jì)、環(huán)保又有效的重要方法,受到國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注。分離篩選高效降解菌是多菌靈污染土壤微生物修復(fù)技術(shù)中需要解決的關(guān)鍵問(wèn)題,成為國(guó)內(nèi)外的研究熱點(diǎn)。
本實(shí)驗(yàn)針對(duì)設(shè)施蔬菜土壤多菌靈污染比較嚴(yán)重的特點(diǎn),通過(guò)低溫條件下富集篩選,從長(zhǎng)期施用多菌靈的設(shè)施蔬菜土壤中分離到一株高效降解菌Enterobacter sp.D5,并對(duì)其降解特性進(jìn)行分析,以期為多菌靈污染設(shè)施蔬菜土壤及水體的生物修復(fù)提供實(shí)驗(yàn)材料和科學(xué)依據(jù)。
供試土壤和藥劑:供試土壤采自吉林省撫松市某長(zhǎng)期施用多菌靈的土壤(0~30 cm);多菌靈標(biāo)準(zhǔn)品(有效成分含量≥98%)由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院農(nóng)藥教研室提供;甲醇(色譜純)、三氯甲烷(色譜純)、丙酮(色譜純)、鹽酸(分析純)、氫氧化鈉(分析純)、無(wú)水硫酸鈉(分析純)。
儀器:Eppendorf 5810R低溫高速離心機(jī)(德國(guó)艾本德公司)、GA92-II2DB細(xì)胞超聲破碎儀(無(wú)錫上佳生物科技有限公司)、UV1200型紫外可見(jiàn)分光光度、1100液相色譜儀(美國(guó)Agilent公司)、BS224S電子天平、HZ-9211K恒溫振蕩器。
無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)液:Na2HPO4· 2H2O 8.5 g,KH2PO43.0 g,NaCl 0.5 g,NH4Cl 1.0 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,CaCl214.7 mg,CuSO40.4 mg,KI 1.0 mg,MnSO4· H2O 4.0 mg,ZnSO4· 7H2O 4.0 mg,H3BO35.0 mg,H2MoO4·2H2O 1.6 mg,F(xiàn)eCl3·6H2O 2.0 mg,蒸餾水1 000 mL。pH 值7.0 ~7.2、121.3 ℃滅菌25 min。
富集培養(yǎng)基:無(wú)菌的無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)液中加入需要量的多菌靈。
分離培養(yǎng)基:無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)液,多菌靈15 g,瓊脂18 g。pH 值7.0 ~7.2、121.3 ℃滅菌25 min。
LB培養(yǎng)基:胰化蛋白胨10 g,NaCl 10 g,酵母提取物5 g,瓊脂18 g。
1.2.1 多菌靈高效降解菌的富集篩選
將10 g土樣加入到100 mL以多菌靈為唯一碳源的富集培養(yǎng)基中,15℃,200 r·min-1搖床培養(yǎng)5 d,取富集的菌懸液10 mL,加入到新鮮的富集培養(yǎng)基中,在相同條件下富集培養(yǎng)5 d,連續(xù)富集傳代5次,使多菌靈質(zhì)量濃度依次為 20、40、60、80、100 mg·L-1。經(jīng)鑒定能降解多菌靈達(dá)90%以上的富集液為有活性的富集液。將活性富集液進(jìn)行梯度稀釋涂布LB平板。挑取單菌接種液體富集培養(yǎng)基,通過(guò)HPLC分析驗(yàn)證其降解能力。
1.2.2 多菌靈降解菌的鑒定
對(duì)分離純化得到的菌株進(jìn)行菌體形態(tài)觀察、生理生化試驗(yàn)。同時(shí)將獲得的菌株接入LB液體培養(yǎng)基中擴(kuò)大培養(yǎng),離心收獲菌體,提取菌株RNA。以細(xì)菌16 S rRNA通用引物27 f和1 492 r對(duì)該菌株基因組進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增條件:95℃ 5 min;94 ℃ 1 min,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1.5 min,30 個(gè)循環(huán);72℃10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)純化后送上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測(cè)序,用Clustal W對(duì)測(cè)序結(jié)果與GenBank中相關(guān)的16 S rRNA序列進(jìn)行比對(duì),通過(guò)MEGA4.0軟件對(duì)菌株進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,采用鄰接法(neighbor-joining)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),用Bootstrap法(1 000次重復(fù))檢驗(yàn)。
1.2.3 菌株對(duì)多菌靈降解的最佳條件
降解試驗(yàn)基本條件為:在100 mL基礎(chǔ)培養(yǎng)基的三角瓶中,以100 mg·L-1多菌靈為唯一碳源,接種量 OD600nm=0.2、20 ℃、pH 值 7.0、200 r·min-1;最佳條件降解試驗(yàn):通過(guò)分別改變降解基本條件中的初始 pH 值(5.0、6.0、7.0、8.0、9.0 和 10.0)、溫度(5、10、15、20、25、30 和 35 ℃)、多菌靈添加量(50、100、150、200 和 250 mg·L-1),在其他條件保持不變的情況下,培養(yǎng)12 d,進(jìn)行單因素條件試驗(yàn)。各單因素設(shè)計(jì)以不接種和滅活菌為對(duì)照,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù),測(cè)定菌株對(duì)多菌靈農(nóng)藥的降解量。
1.2.4 最優(yōu)條件下菌株生長(zhǎng)量和多菌靈降解曲線的測(cè)定
將菌株置于100 mL含100 mg·L-1多菌靈的無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中,于 20 ℃、pH 值 7.0、200 r·min-1搖床培養(yǎng),分別在 2、4、6、8、10、12 d 測(cè)定菌株對(duì)多菌靈農(nóng)藥的降解量,同時(shí)測(cè)定菌株OD600nm生長(zhǎng)量,分析菌株生長(zhǎng)量與降解量之間的關(guān)系。
1.2.5 多菌靈的HPLC檢測(cè)方法
三波長(zhǎng)校正法[11]:配置5 g·L-1(有效成分)的多菌靈標(biāo)準(zhǔn)溶液,按需稀釋成相應(yīng)質(zhì)量濃度。稱取100 μL樣品,用稀鹽酸(1+11)定容至 10 mL,分別測(cè)定其在278、280和290 nm波長(zhǎng)處的吸光度,由ΔA=A280-(A278+A290)/2計(jì)算出校正吸光度ΔA,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)樣品中的多菌靈含量進(jìn)行定量分析。
100 mL培養(yǎng)液中加入250 mL三氯甲烷震蕩萃取30 min倒入分液漏斗中,再用250 mL三氯甲烷清洗培養(yǎng)瓶后全部倒入分液漏斗中震蕩萃取,在10 mL的比色管中加入2 mL萃取液,于60℃恒溫水浴中至三氯甲烷完全揮發(fā),用10 mL甲醇定容,待測(cè)。色譜柱:C18 柱,25 cm×4.16 mm;柱溫為30 ℃;流動(dòng)相為V(甲醇)∶V(水)=70∶30;流速為0.8 mL·min-1;檢測(cè)波長(zhǎng)為280 nm;進(jìn)樣體積為20 μL。
以多菌靈為唯一碳源,經(jīng)過(guò)50 d的富集篩選,得到1株多菌靈高效降解菌D5。該菌短桿狀,革蘭氏染色陰性、無(wú)芽胞;純培養(yǎng)菌落為乳黃色且略透明;其能利用葡萄糖產(chǎn)氣,V.P.反應(yīng)、甲基紅反應(yīng)、吲哚實(shí)驗(yàn)、氧化酶、產(chǎn)H2S實(shí)驗(yàn)、苯丙氨酸脫氫酶、精氨酸雙水解酶及明膠液化反應(yīng)陰性。應(yīng)用細(xì)菌16 S rDNA通用引物27 f和1492 r有效擴(kuò)增出1265 bp的片段,將測(cè)序結(jié)果在GenBank中利用Blast軟件進(jìn)行同源性序列比對(duì),以大腸桿菌為外源構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),如圖1所示。
圖1 根據(jù)16 S rRNA部分基因序列構(gòu)建的菌株D5與相關(guān)種屬的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
菌株D5與已報(bào)道的Enterobacter屬細(xì)菌親緣關(guān)系最近,與Blast結(jié)果一致。因此,菌株D5在分類學(xué)地位上初步確定是歸屬于腸桿菌屬Enterobacter。
目前,國(guó)內(nèi)外關(guān)于多菌靈降解菌的報(bào)道很少,分離到的多菌靈降解菌有紅平紅球菌Rhodococcus erythropolis[12-13]和 Rhodococcus qingshengii sp.nov.[14]、羅爾斯通氏菌屬 Ralstonia sp.[15]、短小芽孢桿菌 Bacillus pumilus[16]、假單胞菌屬 Pseudomonas sp.[17]、木霉 Trichonderma sp.[18]、諾卡氏菌 Nocardioides sp.SG-4G[19]、巴西固氮螺菌 Azospirillum brasilense[20],尚未見(jiàn)關(guān)于 Enterobacter菌屬降解多菌靈菌株的報(bào)道。
<1),且各件產(chǎn)品是否為不合格品相互獨(dú)立.
2.2.1 初始pH值變化對(duì)降解能力的影響
為考察培養(yǎng)基的初始pH值對(duì)菌株D5降解作用的影響,將菌株D5接種于含100 mg·L-1多菌靈的不同pH緩沖液中,在20℃、200 r·min-1條件下培養(yǎng)12 d。菌株D5在不同pH值條件下的多菌靈的降解率如圖2所示。由圖2可知,無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基初始pH值對(duì)菌株D5降解多菌靈有較大影響,強(qiáng)酸(pH值5.0)和強(qiáng)堿(pH值10.0)均不利于菌株D5的生長(zhǎng)和對(duì)多菌靈的降解;菌株D5在pH值6.0~9.0均能生長(zhǎng),而最適生長(zhǎng) pH 值為 6.0~7.0,8 d后的降解率分別為100%和82.34%。
圖2 不同初始pH值對(duì)多菌靈降解的影響
2.2.2 溫度變化對(duì)降解能力的影響
溫度是影響微生物降解農(nóng)藥等有機(jī)污染物的主要環(huán)境因素之一。本研究對(duì)菌株D5在不同溫度下(5、10、15、20、25、30、35 ℃)多菌靈的降解特性進(jìn)行研究,結(jié)果如圖3所示。圖3結(jié)果表明,在5~30℃,菌株D5對(duì)多菌靈均具有降解能力;在溫度為15和20℃時(shí),菌株D5對(duì)多菌靈降解效果好,分別在培養(yǎng)12和8 d時(shí)降解率達(dá)到100%。菌株D5在溫度為5和30℃時(shí),仍具有一定降解效果,培養(yǎng)12 d后降解率分別為24.26%和47.42%;溫度為 25℃時(shí),菌株D5對(duì)多菌靈的降解效果明顯不如20℃,降解率僅為74.38%;當(dāng)溫度超過(guò)20℃時(shí),隨著溫度的升高,降解率逐漸降低。由此可見(jiàn),菌株D5在10~25℃的低溫條件下具有較強(qiáng)的降解活性。
圖3 不同溫度對(duì)多菌靈降解的影響
目前,已經(jīng)分離的多菌靈降解菌多屬于中溫菌,最佳降解溫度均在25~35℃[12-20],菌株D5在10~20℃的條件下對(duì)多菌靈的降解效果明顯優(yōu)于25℃以上的溫度,按照Morita的定義屬于耐冷菌。因此,菌株D5對(duì)北方多菌靈污染土壤的低溫生物修復(fù)與其它菌株相比具有很大的優(yōu)勢(shì)。
2.2.3 菌株D5對(duì)不同質(zhì)量濃度多菌靈降解效果
由圖4可見(jiàn),在pH值7.0、20℃條件下培養(yǎng)時(shí),菌株D5對(duì)多菌靈的耐受質(zhì)量濃度高于250 mg·L-1,完全降解初始質(zhì)量濃度為 50、100、150、200 mg·L-1的多菌靈所需的時(shí)間分別為4、8、10、12 d。由此可見(jiàn),多菌靈的初始質(zhì)量濃度對(duì)菌株D5的降解率有較大的影響,在12 d內(nèi)多菌靈的初始質(zhì)量濃度越高,降解率越低。
圖4 菌株D5對(duì)不同質(zhì)量濃度多菌靈的降解效果
2.2.4 營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)對(duì)菌株降解多菌靈的影響
在處理液中加入外源氮素營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)可以顯著提高菌株對(duì)多菌靈的降解效果,見(jiàn)圖5。隨著外源氮素基質(zhì)的加入,菌株D5對(duì)多菌靈的降解量明顯增加,以加入蛋白胨時(shí)菌株D5對(duì)多菌靈的降解量最大,在6 d后達(dá)到100%,菌體生長(zhǎng)量的增加可能是在外源氮素基質(zhì)存在條件下多菌靈的降解速率加快的原因,并且外源氮素基質(zhì)的加入沒(méi)有抑制多菌靈的降解。從圖5結(jié)果對(duì)比來(lái)看,有機(jī)氮源的加入促降解作用明顯優(yōu)于有機(jī)碳源,且菌株D5在利用外源碳源營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)的同時(shí)不能利用多菌靈作為碳源,菌體的量的增加較以多菌靈為唯一碳源的多,隨著外源碳源基質(zhì)的消耗,多菌靈的降解量逐漸增多。
圖5 不同營(yíng)養(yǎng)基質(zhì)對(duì)菌株D5降解率的影響
這表明,在使用菌株D5進(jìn)行多菌靈污染土壤修復(fù)時(shí),外加有機(jī)氮源可以促進(jìn)多菌靈的生物降解,這與朱鳳曉等[21]添加少量氮源可以促進(jìn)復(fù)合菌對(duì)多菌靈的降解的研究結(jié)果是一致的,但與張麗珍等[16]關(guān)于尿素會(huì)抑制短小芽胞桿菌NY97-1降解多菌靈能力的研究結(jié)果相反。
2.2.5 菌株生長(zhǎng)與降解多菌靈的關(guān)系
如圖6所示,菌株D5在20℃,pH值7.0的最適生長(zhǎng)條件下,能以多菌靈為唯一碳源生長(zhǎng),菌株D5的生長(zhǎng)曲線和多菌靈的降解曲線相吻合。該圖也表明,菌株生長(zhǎng)沒(méi)有明顯的滯后期,培養(yǎng)2 d后進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,隨著細(xì)菌細(xì)胞數(shù)量的增多,多菌靈的降解量也逐漸增大,當(dāng)培養(yǎng)8 d時(shí)多菌靈的降解率達(dá)到100%,說(shuō)明該菌株在20℃、pH值7.0的生長(zhǎng)條件下,能較快適應(yīng)環(huán)境并利用多菌靈作為生長(zhǎng)基質(zhì)。
圖6 最優(yōu)條件下菌株D5生長(zhǎng)和多菌靈降解情況
綜上所述,從長(zhǎng)期施用多菌靈土壤中分離得到1株耐低溫的多菌靈高效降解菌Enterobacter sp.D5具有較好的多菌靈降解能力,菌株D5能以多菌靈為唯一碳源生長(zhǎng),在15℃、pH值7.0的最適生長(zhǎng)條件下12 d可完全降解100 mg·L-1多菌靈,外加氮源可以有效促進(jìn)多菌靈的生物降解,這為該菌株用于多菌靈污染土壤的低溫生物修復(fù)提供了良好的材料和理論依據(jù)。
致謝:多菌靈標(biāo)樣由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)逯忠斌教授提供;馬秀蘭副教授和撫松市環(huán)境監(jiān)測(cè)站對(duì)樣品采集給予的幫助,在此表示感謝。
[1]馬承鑄,顧真榮.環(huán)境激素類化學(xué)農(nóng)藥污染及其控制[J].上海農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2003,19(4):98-103.
[2]Chen Yu,Zhou Mingguo.Characterization of fusarium graminearum isolates resistant to both carbendazim and a new fungicide JS399-19[J].Phytopathology,2009,99(4):441-446.
[3]Cuppen J G M,P J Van Den Brink,E Camps,et al.Impact of the fungicide carbendazim in freshwater microcosms water quality,breakdown of particulate organic matter and responses of macroinvertebrates[J].Aquat Toxicol,2000,48(2/3):233-250.
[4]Arora S,Mukherjee I,T P Trivedi.Determination of pesticid residue in soil,water and grain from IPM and non-IPM field trials of rice[J].Bull Environ Contam Tocicol,2003,81(4):373-376.
[5]Bergl?f T,T Van Dung,H Kylin,et al.Carbendazim sorption-desorption in vietnames soils[J].Chemosphere,2002,48(3):267-273.
[6]Carbo L,Martins E L,Dores E F,et al.Acetamiprid,carbendazim,diuron and thiamethoxam sorption in two Brazilian tropical soils[J].J Environ Sci Health B,2007,42(5):499-507.
[7]Holmes M,Kennedy M C,Riccio R,et al.Assessing the risk to U.K.children from carbendazim residues in apple products[J].J Occup Environ Health,2008,14:86-93.
[8]Moffit J S,Bryant B H,Hall S J,et al.Dosedependent effects of sertoli cell toxicants 2,5-hexanedione,carbendazim,and mono-(2-ethylhexyl)phthalate in adult rat testis[J].Toxicol Pathol,2007,35(5):719-727.
[9]Yu Gongchang,Guo Qiming,Xie Lin,et al.Effects of subchronic exposure to carbendazim on spermatogenesis and fertility in male rats[J].Toxicol Ind Health,2009,25(1):41-47.
[10]李明石,王玉軍,徐徐,等.多菌靈在黑土中的吸附及解吸行為[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2011,39(5):131-132.
[11]于彥彬,苗在京,萬(wàn)述偉,等.三波長(zhǎng)校正光度法測(cè)定水果蔬菜中多菌靈殘留量[J].理化檢驗(yàn):化學(xué)分冊(cè),2005,41(5):353-357.
[12]Holtman M A,Kobayashi D Y.Identification of rhodococcus erythropolis isolates capable of degrading the fungicide carbendazim[J].Applied Microbiology and Biotechnology,1997,47(5):578-582.
[13]黃玉杰,張新建,任艷,等.多菌靈降解菌的分離、鑒定及其降解特性研究[J].山東科學(xué),2011,24(2):28-34.
[14]Xu Jingliang,He Jian,Wang Zhichun,et al.Rhodococcus qingshengii sp.nov.,a carbendazim-degrading bacterium[J].International Journal of Systematic Evolutionary Microbiology,2007,57(12):2754-2757.
[15]Zhang Guishan,Jia Xiaoming,Cheng Tianfan,et al.Isolation and characterization of a new carbendazim-degrading Ralstonia sp.strain[J].World Journal of Microbiology and Biotechnology,2005,21(3):265-269.
[16]張麗珍,喬雄梧,馬利平,等.多菌靈降解菌NY97-1的鑒定及降解條件[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2006,26(9):1440-1444.
[17]Fang Hua,Wang Yiqi,Gao Chunming,et al.Isolation and characterization of pseudomonas sp.CBW capable of degrading carbendazim[J].Biodegradation,2010,21:939-946.
[18]田連生,陳菲.木霉對(duì)多菌靈的生物降解特性研究[J].土壤學(xué)報(bào),2009,46(6):1127-1131.
[19]Gunjan Pandey,Susan J Dorrian,Robyn J Russell,et al.Cloning and biochemical characterization of a novel carbendazim(Methyl-1 H-Benzimidazol-2-ylcarbamate)-hydrolyzing esterase from the newly isolated nocardioides sp.strain SG-4G and its potential for use in enzymatic bioremediation[J].Applied Environmental Microbiology,2010,76(9):2940-2945.
[20]Xu Gangming,Zheng Wei,Li Yingying,et al.Biodegradation of chlorpyrifos and 3,5,6-trichloro-2-pyridinol by a newly isolated paracoccus sp.strain TRP[J].International Biodetetioration and Biodegradation,2008,62:51-56.
[21]朱鳳曉,孔潔,由焦化,等.高效復(fù)合菌對(duì)多菌靈的生物降解[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2011,31(5):1045-1050.