孟曉林,劉梅,王寶杰,蔣克勇,田雪,王雷
(1.中國科學(xué)院 海洋研究所,山東 青島266071;2.中國科學(xué)院 研究生院,北京100049;3.山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,山西 太谷030801)
蝦夷扇貝(Mizuhopecten yessoensis)隸屬于軟體動(dòng)物門(Mollusca)瓣鰓綱(Lamellibranchiata),珍珠貝目(Pterioida),扇貝科(Pectinidae),是中國北部重要的海水養(yǎng)殖品種。到2005年,年產(chǎn)量已達(dá)到15萬噸。近些年來,由于夏季環(huán)境高溫、氣候變化以及人類活動(dòng),沿海水體相關(guān)的環(huán)境因子已經(jīng)發(fā)生了極大的變化,并且對(duì)蝦夷扇貝養(yǎng)殖業(yè)造成了巨大的損害[1]。
重金屬是對(duì)生態(tài)環(huán)境造成極大危害的污染物,具有來源廣、殘毒時(shí)間長(zhǎng)、易蓄積、污染后不易被發(fā)現(xiàn)且難于恢復(fù)等特征,并且對(duì)無脊椎動(dòng)物具有極大的毒性[2]。其中鎘(Cadmium,Cd)是目前我國渤海灣海域污染比較嚴(yán)重的重金屬[3],因此研究其在蝦夷扇貝體組織的蓄積規(guī)律和毒性作用具有重要意義。谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase,GPx)是一種重要的內(nèi)源性抗氧化蛋白并且廣泛分布于耗氧的生物體組織中,它通過催化過氧化氫還原為水調(diào)節(jié)組織的抗氧化防御反應(yīng)[3]。谷胱 甘 肽 硫 轉(zhuǎn) 移 酶 (Glutathione S-transferases,GSTs)是谷胱甘肽復(fù)合物解毒酶家族中的重要組成部分,它可增加異源物質(zhì)的可溶性并使其從細(xì)胞中排出[4]。由于GPx、GST在解毒和抗氧化防御中的重要作用,已有研究將其作為環(huán)境監(jiān)控生物標(biāo)志物[5],但對(duì)于在重金屬作用下機(jī)體相關(guān)酶活性的變化還存在誘導(dǎo)或抑制的不同研究結(jié)論[6,7]。本研究以不同濃度的Cd在亞急性毒性條件下分別脅迫蝦夷扇貝,通過對(duì)其鰓、消化腺中兩種重金屬含量及GPx、GST活性的檢測(cè),初步研究了Cd在蝦夷扇貝體組織內(nèi)的沉積規(guī)律及對(duì)谷胱甘肽依賴性酶活性的影響,明確了GPx、GST作為蝦夷扇貝Cd污染生物標(biāo)志物的可行性。
成體蝦夷扇貝購自大連獐子島漁業(yè)公司。挑選健康及殼高大小為8.730±0.167cm(means±SD,n=30)的蝦夷扇貝作為實(shí)驗(yàn)用貝。將扇貝在實(shí)驗(yàn)條件下養(yǎng)殖于溫度為16±1℃及鹽度為30‰的過濾海水中,所用海水來源于青島第一海水浴場(chǎng)。暫養(yǎng)及實(shí)驗(yàn)期間以螺旋藻作為餌料進(jìn)行投喂,并24h不間斷充氧,每天換水一半,實(shí)驗(yàn)期所換海水以損失的Cd離子進(jìn)行補(bǔ)充。暫養(yǎng)期為7d。
Cd實(shí)驗(yàn)組共4組(1個(gè)對(duì)照組及3個(gè)脅迫組),每組設(shè)3個(gè)平行,每平行隨機(jī)放養(yǎng)25只實(shí)驗(yàn)用貝于50×40×30cm3的塑料水族箱中。所用脅迫試劑為CdCl2·2.5H2O(購自Sigma公司),加入海水中使Cd2+終濃度分別為0mg·L-1、0.05 mg·L-1、0.1mg·L-1、0.2mg·L-1。Cd的含量為中國漁業(yè)水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)的0、10、20及40倍。實(shí)驗(yàn)期為14d,分別在0d、1d、3d、6d、10d、14d隨機(jī)選取3只蝦夷扇貝,并對(duì)鰓、消化腺組織采樣,凍存于-80℃冰箱供測(cè)試分析備用。
取0d、3d、6d、10d、14d的蝦夷扇貝鰓、消化腺組織,于60℃烘箱中48h烘干至恒重,取約0.5 g鰓或0.2g消化腺加入30mL大小的特氟龍管中,并加入6mL HNO3在室溫下放置1h。將溶液在100℃條件下煮沸6h至澄清,將剩余物在100℃條件下溶解于6mL 1%的HNO3溶液中。Cd含量采用電感耦合等離子質(zhì)譜儀(ICP-MS,Elan 6100,美國)測(cè)定。
取適量蝦夷扇貝鰓、消化腺組織,稱量后置于10倍體積的預(yù)冷緩沖液中(pH 7.5,0.01mol·L-1Tris-HCl,0.0001mol·L-1EDTA-2Na,0.01mol·L-1蔗糖),并在勻漿器上勻漿,勻漿液于4℃條件下10 000g·min-1離心10min,取上清液待測(cè)。
GPx活性測(cè)定參照Xia等[8]改進(jìn)的方法進(jìn)行。活力單位定義為:每毫克組織蛋白質(zhì),每分鐘扣除非酶反應(yīng)的作用,使反應(yīng)體系中GSH濃度降低1 nmol為一個(gè)酶活性單位/U·mg-1protein·min-1。
GST活力測(cè)定參照Habig等[9]的方法經(jīng)改進(jìn)后進(jìn)行測(cè)定。酶活力定義為:每分鐘每毫克蛋白催化產(chǎn)生1nmol的2,4二硝基苯谷胱甘肽(2,4-dinitrophenyl glutathione)定義為一個(gè)酶活力單位/U·mg-1protein·min-1。
蛋白含量測(cè)定采用BradfordG-250染色法進(jìn)行[10]。所有吸光值均在Powerwave XS2(BioTek,美國)酶標(biāo)儀上測(cè)定。
所有數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(means±SD)表示,所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均與對(duì)照組進(jìn)行比較,并采用單因素方差分析(ANOVA)和LSD法進(jìn)行檢驗(yàn)。統(tǒng)計(jì)軟件采用SPSS16.0,取P<0.05做為差異性顯著標(biāo)準(zhǔn)。
亞急性濃度Cd脅迫實(shí)驗(yàn)表明(圖1),對(duì)照組鰓、消化腺組織實(shí)驗(yàn)期間Cd的含量分別為1.8~3.2μ·g-1和2.41~2.93μ·g-1。兩組織中最大Cd沉積分別出現(xiàn)在10d,0.2mg·L-1脅迫組(鰓,134.20μg·g-1)和14d,0.1mg·L-1脅迫組(消化腺,109.20μg·L-1)。與對(duì)照組相比,分別提高了52倍和36倍。鰓組織中0.1mg·L-1、0.2mg·L-1脅迫組Cd的沉積于10d均達(dá)到最大值,后開始下降,而消化腺組織中各組Cd沉積濃度均隨著脅迫濃度升高、脅迫時(shí)間的延長(zhǎng)而增大,并且消化腺組織中Cd的累積明顯高于鰓組織中Cd的累積。
圖1 Cd在蝦夷扇貝鰓(A)、消化腺(B)組織中的生物累積Fig.1 Accumulation of cadmium (Cd)in gill(A)and digestive gland(B)of Japanese scallop.
亞急性濃度Cd脅迫對(duì)蝦夷扇貝鰓、消化腺組織GPx活性影響表明(圖2),兩組織中GPx活性總體隨脅迫時(shí)間的延長(zhǎng)呈先升高后下降的趨勢(shì)。其中鰓組織在0.05mg·L-1、0.1mg·L-1、0.2 mg·L-1脅迫條件下,分別于6d、3d和1d達(dá)到最大值,0.2mg·L-1脅迫組GPx活性在14d達(dá)到顯著抑制(P<0.05)。消化腺組織在0.2mg·L-1脅迫條件下,于1d達(dá)到最大值,在0.05mg·L-1、0.1mg·L-1脅迫條件下,于3d達(dá)到最大值。消化腺組織GPx活性顯著高于鰓組織。
圖2 Cd脅迫對(duì)蝦夷扇貝鰓(A)、消化腺(B)GSH-Px活性的影響Fig.2 The effect of Cd on GSH-Px activity in gill(A)and digestive gland(B)of M.yessoensis
亞急性濃度Cd脅迫對(duì)蝦夷扇貝鰓組織GST活性的影響表明(圖3A),各脅迫濃度隨脅迫時(shí)間均呈現(xiàn)先升高后下降趨勢(shì),0.05mg·L-1、0.1mg·L-1、0.2mg·L-1分別于10d、6d和1d達(dá)到最大值。0.2mg·L-1脅迫組在1d后,GST活性顯著下降,6d時(shí)與對(duì)照相比出現(xiàn)顯著性抑制(P<0.05)。
Cd脅迫對(duì)消化腺組織GST活性影響表明(圖3B),0.2mg·L-1脅迫組在脅迫1d時(shí)GST活性出現(xiàn)顯著性抑制(P<0.05),后逐步上升。0.05 mg·L-1、0.1mg·L-1脅迫組均呈現(xiàn)先升高后下降趨勢(shì),最大值均出現(xiàn)在6d。
圖3 Cd脅迫對(duì)蝦夷扇貝鰓(A)、消化腺(B)GST活性的影響Fig.3 The effect of Cd on GST activity in gill(A)and digestive gland(B)of M.yessoensis
蝦夷扇貝對(duì)不同重金屬在不同組織間的累積存在較大的差異性[11],本研究結(jié)果表明,隨著脅迫濃度的增加,Cd在鰓及消化腺組織中的累積均出現(xiàn)了極顯著的上升,呈現(xiàn)明顯的線性關(guān)系。此外發(fā)現(xiàn),鰓組織中0.1mg·L-1、0.2mg·L-1組Cd的含量在10天后下降,說明在前10天的脅迫時(shí)間內(nèi),細(xì)胞內(nèi)金屬綁定配體持續(xù)性的與金屬離子結(jié)合,Cd離子穿過細(xì)胞膜而在組織細(xì)胞內(nèi)沉積下來,但10d后由于胞內(nèi)金屬綁定配體綁定位點(diǎn)的飽和,金屬離子不在結(jié)合,而出現(xiàn)下降。但消化腺組織在整個(gè)14天實(shí)驗(yàn)期內(nèi)Cd離子含量均隨著時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,這可能與消化腺組織是主要的解毒器官,對(duì)金屬離子的耐受力更強(qiáng)有關(guān)。這與Choi研究結(jié)果一致[12]。
抗氧化防御體系是機(jī)體受到異源物質(zhì)脅迫時(shí)重要的代謝調(diào)節(jié)機(jī)制,其中谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)通過消除H2O2來減少機(jī)體損傷。前人研究表明當(dāng)雙殼貝類受到低濃度重金屬脅迫或短時(shí)間脅迫的條件下,抗氧化酶均出現(xiàn)上升,但隨著濃度的上升、脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),酶活性可能會(huì)出現(xiàn)降低甚至抑制[13]。這與本研究結(jié)果相一致。Wang等對(duì)蛤的研究顯示,不同濃度Cd脅迫下,鰓及消化腺GPx活性在脅迫24h時(shí)均出現(xiàn)最大值,而本研究結(jié)果顯示,高濃度(0.2mg·L-1)脅迫條件下,GPx活性均在24h出現(xiàn)高峰,而中低濃度脅迫下(0.05mg·L-1、0.1mg·L-1),GPx活性最大值則出現(xiàn)在3d或6d。這可能和物種不同對(duì)Cd的耐受力不同有關(guān)。
谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶(GST)主要功能是催化某些內(nèi)源性或外來有害物質(zhì)的親電子基團(tuán)與還原型谷胱甘肽的巰基偶聯(lián),增加其疏水性使其易于穿越細(xì)胞膜,分解后排出體外,從而達(dá)到解毒的目的,保護(hù)DNA及一些蛋白質(zhì)免受損傷[14]。本研究結(jié)果顯示,中低濃度Cd(0.05mg·L-1、0.1mg·L-1)脅迫條件下,隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),GST活性表現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(shì),這與 Wang[15]對(duì)蛤仔(Ruditapes philippinarum)研究的結(jié)果相一致。但在高濃度(0.2mg·L-1)脅迫條件下,鰓中GST在24小時(shí)達(dá)到最大值后迅速降低,消化腺中GST則出現(xiàn)顯著性抑制。這可能與在高濃度下短時(shí)間內(nèi)蝦夷扇貝鰓及消化腺細(xì)胞受到嚴(yán)重?fù)p傷相關(guān)。此外,研究結(jié)果表明消化腺中GPx、GST活性均高于鰓組織,進(jìn)一步驗(yàn)證了消化腺是蝦夷扇貝的主要解毒器官,而鰓是主要的濾過性器官。
生物標(biāo)志物(biomarkers)常被用來偵測(cè)和診斷毒性物質(zhì)對(duì)海洋生物的影響,對(duì)其在分子和細(xì)胞水平的檢測(cè)被推薦用作生物影響評(píng)估的早期監(jiān)測(cè)工具[16]。本研究顯示蝦夷扇貝鰓、消化腺組織GPx、GST活性在不同濃度的Cd脅迫條件下均顯現(xiàn)出了敏感、顯著的變化,據(jù)此我們推斷GPx、GST可作為蝦夷扇貝養(yǎng)殖過程中受到Cd污染時(shí)的早期環(huán)境生物監(jiān)測(cè)的敏感生物標(biāo)志物。
[1]Liu W,He C,Li W,et al.Discovery of host defence genes in the Japanese scallop Mizuhopecten yessoensis Jay by expressed sequence tag analysis of kidney tissue[J].Aquac Res,2010,41:1602-1613.
[2]Viarengo A,Heavy metals in marine invertebrates:mechanisms of regulation and toxicity at the cellular level.Rev[J].Aquat Sci,1989,1(2):295-317.
[3]彭士濤,胡焱弟,白志鵬.渤海灣底質(zhì)重金屬污染及其潛在生態(tài)風(fēng)險(xiǎn)評(píng)價(jià)[J].水道港口,2009,30(1):57-60.
[4]Salazar-Medina A,Garcia-Rico L,Garacia-Orozco K,et al,Inhibition by Cu2+and Cd2+of a mu-class glutathione S-transferase from shrimp Litopenaeus vannamei[J].J Biochem Mol Toxic,2010,24(4):218-222.
[5]Cunha I,Mangas-Ramirez E,Guilhermino L.Effects of copper and cadmium on cholinesterase and glutathione S-transferase activities of two marine gastropods(Monodonta lineata and Nucella lapillus)[J].Comp Biochem Phys C,2007,145(4):648-657.
[6]Canesi L,Viarengo A,Leonzio C,et al.Heavy metals and glutathione metabolism in mussel tissues[J].Aquat Toxicol,1999,46(1):67-76.
[7]Moreira S,Guilhermino L.The use of Mytilus galloprovincialis acetylcholinesterase and glutathione S-transferases activities as biomarkers of environmental contamination along the northwest Portuguese coast[J].Environ Monit Assess,2005,105(1):309-325.
[8]Xia Y,Zhu L.Measurement method of glutathione peroxidase activity in blood and tissue[J].Hygi Res,1987,16(4):29-33.
[9]Habig,W H,M J Pabst,W B Jakoby.Glutathione S-transferases[J].J Biol Chem,1974.249(22):7130.
[10]Bradford M.A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding[J].Anal Biochem,1976,72:248-254.
[11]王軍,翟毓秀,寧勁松,等.養(yǎng)殖蝦夷扇貝不同組織中重金屬含量的分布[J].海洋科學(xué),2009,33(8):44-47.
[12]Choi H J,Ji J,Chung K H,et al.Cadmium bioaccumulation and detoxification in the gill and digestive gland of the Antarctic bivalve Laternula elliptica[J].Comp Biochem Phys C,2007,145(2):227-235.
[13]Wang X,Yang H,Liu G,et al.Enzyme responses and lipid peroxidation in gills and hepatopancreas of clam Mactra vereformis,following cadmium exposure[J].Chinese Journal of Oceanology and Limnology,2011,29(5):981-989.
[14]馬森.谷胱甘肽過氧化物酶和谷胱甘肽轉(zhuǎn)硫酶研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2008,29(10):53-56.
[15]Wang L,Pan L,Liu N,et al.Biomarkers and bioaccumulation of clam Ruditapes philippinarum in response to combined cadmium and benzo[α]pyrene exposure[J].Food Chem Toxicol,2011,49(12):3407-3417.
[16]Cajaraville M P,Bebianno M J,Blasco J,et al.The use of biomarkers to assess the impact of pollution in coastal environments of the Iberian Peninsula:apractical approach[J].The Science of The Total Environment,2000,247:295-311.