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犬α-干擾素蛋白原核表達(dá)及條件優(yōu)化

2012-11-21 06:23:42李桂偉周慶民樊興冬馮萬宇高俊峰
中國畜牧獸醫(yī)文摘 2012年10期
關(guān)鍵詞:干擾素宿主質(zhì)粒

李桂偉 周慶民 樊興冬 馮萬宇 秦 博 高俊峰

(黑龍江省獸醫(yī)科學(xué)研究所,齊齊哈爾 161006)

隨著生活水平的日益提高,犬在人類的生活中占據(jù)越來越重要的地位,如作為寵物、警犬、搜救犬等。但是,犬類的各種病毒性疾病嚴(yán)重危害著犬類的健康和生存,也影響著我國養(yǎng)犬業(yè)的發(fā)展。為防止不同原因造成的免疫程序失敗,犬類病毒病的預(yù)防和治療顯得尤為重要。因此,臨床上迫切需要安全、有效、副作用少的干擾素制劑。

干擾素(IFN)是一類能誘導(dǎo)動物細(xì)胞產(chǎn)生多種廣譜抗病毒蛋白的細(xì)胞因子,具有阻止病毒繁殖、調(diào)節(jié)機(jī)體免疫反應(yīng)的生物學(xué)功能,是當(dāng)今應(yīng)用前景最為廣闊的重要生物制劑之一[1,2]。IFN按其細(xì)胞來源可分為α、β及γ3種類型。其中,IFN-α是由能在脊椎動物各種類型的細(xì)胞中增殖的病毒誘導(dǎo)白細(xì)胞產(chǎn)生的,主要活性是抗病毒[3-5]。因此,本試驗采用犬的肝臟組織擴(kuò)增干擾素基因,并進(jìn)一步篩選出高效表達(dá)干擾素蛋白的原核表達(dá)系統(tǒng),為犬α-干擾素的體外大量表達(dá)提供了依據(jù)。

1 材料及方法

1.1 試驗材料

1.1.1 動物組織、菌種及質(zhì)粒

犬肝臟由齊齊哈爾市警犬基地提供;pBV220載體由本實驗室保存;大腸桿菌E. coli DH5α、BL21、Rosetta由本研究室制備保存。

1.1.2 主要試劑

PremixTaq DNA聚合酶;DNA makerDL2000;T4 DNA連接酶;限制性內(nèi)切酶EcoRI、SalI等購自寶生物工程(大連)有限公司;DNA凝膠回收試劑盒、質(zhì)??焖偬崛≡噭┖匈徸栽金ㄌ旖颍┥锛夹g(shù)有限公司。

1.2 引物設(shè)計與合成

參照GenBank中發(fā)表的犬α-干擾素基因(EF990625)去掉信號肽后設(shè)計1對引物,引入EcoRI、SalI酶切位點。引物由上海生物工程有限公司合成,序列如下:上游引物序列:5-'ATAGAATTCAGACCTGCCCGACGCC-3’,下游引物序列:5-'TACGTCGAC TCATTTCCT CCTCCTGATTCT -3 ‘

1.3 試驗方法

1.3.1 犬肝臟組織基因組的提取

將肝臟研磨成勻漿,用滅菌生理鹽水稀釋。參照V-gene DNA提取試劑盒說明書方法提取肝組織DNA,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2 犬肝臟細(xì)胞基因的擴(kuò)增

以提取的肝組織DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,在50μL PCR擴(kuò)增體系中加入PremixTaq酶2μL、上游引物1μL、下游引物1μL、DNA模板10μL、補(bǔ)去離子水36μL,混勻瞬時離心后進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5min后進(jìn)入PCR循環(huán),94℃變性1min,56℃退火1min20s,72℃延伸2min,30個循環(huán),最后72℃延伸10min。0.8%瓊脂糖膠凝電泳觀察PCR擴(kuò)增結(jié)果。

1.3.3 犬α-干擾素基因的克隆及轉(zhuǎn)化

參照DNA凝膠回收試劑盒說明書,回收特異的DNA條帶。將回收純化的PCR產(chǎn)物與pBV220載體分別經(jīng)酶切后進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化DH-5α、BL21、Rosetta感受態(tài)細(xì)胞,涂布在含有氨芐青霉素的LB瓊脂平板上,37℃培養(yǎng)12~16 h。挑取單個菌落接種含有氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)12~16 h。用質(zhì)??焖偬崛≡噭┖刑崛≈亟M質(zhì)粒,對重組質(zhì)粒用PCR和EcoRⅠ、SalI進(jìn)行酶切及測序鑒定,確定為犬α-干擾素基因序列。

1.3.4 犬α-干擾素蛋白表達(dá)及條件優(yōu)化

1.3.4.1 干擾素-α蛋白的原核表達(dá)

挑取單個菌落接種于含50μg/mLAmp+的LB液體培養(yǎng)基中,30℃培養(yǎng)過夜。同時,設(shè)置未連接目的基因的空載體轉(zhuǎn)化的DH-5α、BL21、Rosetta作為對照組。取上述過夜培養(yǎng)物以1%的比例接種于新鮮含50μg/mL Amp+的LB液體培養(yǎng)基中,30℃振蕩培養(yǎng)2~3 h,當(dāng)OD600至0.4~0.6時,放到42℃恒溫水浴中熱激并繼續(xù)培養(yǎng),誘導(dǎo)表達(dá)。

1.3.4.2 干擾素-α蛋白的原核表達(dá)條件優(yōu)化

表達(dá)時間優(yōu)化:將DH-5α、BL21、Rosetta 3種含pBV220-CaIFN-α的陽性工程菌以1‰量分別接入液體LB培養(yǎng)基中,30℃振蕩過夜,以1%量接入液體LB培養(yǎng)基中30℃繼續(xù)培養(yǎng)3~4 h,當(dāng)OD600約等于0.4-0.6 時,快速變溫至42℃,誘導(dǎo)表達(dá)6 h。誘導(dǎo)后每小時分別留取樣品。同時設(shè)誘導(dǎo)前和空載體對照組。根據(jù)誘導(dǎo)時間的不同確定各宿主菌的最佳表達(dá)時間。

宿主菌優(yōu)化:取DH-5α、BL21、Rosetta 3種宿主菌最優(yōu)表達(dá)時間做SDS-PAGE,并比較各宿主菌的表達(dá)量,確定最佳宿主菌。

通過誘導(dǎo)時間及表達(dá)宿主菌的不同,確定最佳表達(dá)條件。采用SDS-PAGE 電泳鑒定表達(dá)產(chǎn)物。

2 結(jié)果

2.1 犬α-干擾素基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的鑒定結(jié)果

犬α-干擾素基因PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳分析,在約520 bp處可見特異性DNA條帶,大小與預(yù)期相符(如圖1所示)。

2.2 陽性重組質(zhì)粒的鑒定結(jié)果

取陽性重組質(zhì)粒pBV220-CaIFN-α分別用PCR鑒定,限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和SalⅠ進(jìn)行單雙酶切鑒定,雙酶切獲得2個片斷,分別為約3 660 bp的載體片斷和約520 bp的CaIFN-α基因。用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和SalⅠ進(jìn)行單酶切,獲得約4 200 bp片斷,結(jié)果與預(yù)期帶大小相符(如圖2所示)。

2.3 干擾素-α基因的測序結(jié)果

干擾素-α基因的測序結(jié)果與預(yù)期結(jié)果相符。推導(dǎo)氨基酸序列,通過在線軟件分析,試驗獲得的犬干擾素-α基因與天然犬干擾素-α的同源性為99.9%。

2.4 干擾素-α的表達(dá)及條件優(yōu)化

2.4.1 誘導(dǎo)時間的優(yōu)化結(jié)果

條件相同時,在相同宿主菌中,由于誘導(dǎo)時間的不同蛋白表達(dá)量也存在差異,因此本試驗比較了在相同宿主菌中誘導(dǎo)時間的長短對蛋白表達(dá)量的影響(結(jié)果如圖3-1、3-2、3-3所示)。Rosetta -pBV220-CaIFN-α誘導(dǎo)后1~6 h表達(dá)量分別為:1 h 11%、2 h 16%、3 h 17%、4 h 29%、5 h 18% 6 h 24%,蛋白在Rossta宿主菌中4 h表達(dá)量最高,表達(dá)量約為29%;BL21-pBV220-CaIFN-α誘導(dǎo)后1~6 h表達(dá)量分別為:1 h 11%、2 h 14%、3 h 16%、4 h 22%、5 h 27%、6 h 21%,蛋白在BL21宿主菌中5 h表達(dá)量最高,表達(dá)量約為27%;DH5α- pBV220-CaIFN-α誘導(dǎo)后1~6 h表達(dá)量分別為:1 h 9%、2 h 16%、3 h 19%、4 h 32%、5 h 23%、6 h 15%,蛋白在DH5α宿主菌中4 h表達(dá)量最高,表達(dá)量約為32%。

2.4.2 宿主菌的優(yōu)化結(jié)果

對于不同的宿主菌,蛋白的表達(dá)量也存在差異,因此本試驗具體比較了3種宿主菌對蛋白表達(dá)量的影響(如圖4-1所示)。圖中顯示,蛋白在DH-5α宿主菌中表達(dá)量最高,為32%左右。在相同條件下,同一宿主菌中,誘導(dǎo)時間的不同蛋白表達(dá)量也存在差異。根據(jù)誘導(dǎo)時間,宿主菌的不同確定出最佳誘導(dǎo)時間為4 h,最佳宿主菌為DH-5α。

3 討論

對于犬病毒病的預(yù)防,目前國內(nèi)主要采用注射犬五聯(lián)弱毒疫苗,但由于母源抗體的干擾及毒株的抗原漂移,常導(dǎo)致免疫失敗,因此研制安全高效的干擾素抗病毒制劑具有重大意義。由于犬α-干擾素屬于Ⅰ型干擾素,由不含內(nèi)含子的多拷貝基因編碼,因此本研究直接以犬肝基因組DNA為模板克隆出了犬α-干擾素基因,省去了從白細(xì)胞中提取mRNA為模板進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增的繁冗。由于大腸埃希菌表達(dá)系統(tǒng)具有遺傳背景清楚、目標(biāo)基因表達(dá)水平高、培養(yǎng)周期短、抗污染能力強(qiáng)等特點[6],因此試驗中選擇DH-5α、BL21、Rosetta 3種宿主菌作為試驗對象,確定了表達(dá)蛋白的最佳時間和高效表達(dá)的宿主菌,為表達(dá)產(chǎn)物的純化提供前提。研究結(jié)果表明,本試驗構(gòu)建的工程菌在DH-5α宿主菌中4 h時表達(dá)量最高,為進(jìn)一步探討犬α-干擾素蛋白的生物學(xué)特性、研制新型犬α-干擾素制劑,對我國犬α-干擾素生物制劑的生產(chǎn)、犬類病毒病的防治奠定了基礎(chǔ)。

[1]陸承平.獸醫(yī)微生物學(xué)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2001.

[2]Sun K,MetzgerDW. Inhibition ofpulmonary antibacterialdefense by interferon-gamma during recovery from influenza in-fection[J].NatMed,2008,14(5):558-564.

[3]孫亞萍,王英明,喬守怡,等.干擾素及其最新研究進(jìn)展[J].中國免疫學(xué)雜志,2006,22(7):676-679.

[4]童葵塘.重組干擾素α的抗病毒活性及其臨床作用[J].中國生物制品學(xué)雜志,2000,13(2):85-88.

[5]李云富,張水華,何凌冰,等.重組人干擾素α脂質(zhì)體乳膏的抗病毒作用及毒理學(xué)研究[J].中國生物制品學(xué)雜志,2008,21(6):510-512.

[6]Sambrook J,F(xiàn)ritsch EF,Maniatis T. Molecular cloning:a laboratory manual. 3rd eds.Cold Spring Harbor:Cold Spring Harbor Laboratory Press,2002:934.

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