王 淋,烏云塔娜,葉生晶
(1.中南林業(yè)科技大學 a.經(jīng)濟林育種與栽培國家林業(yè)局重點實驗室;b.林學院,湖南 長沙 410004;2.中國林業(yè)科學研究院經(jīng)濟林研究開發(fā)中心,河南 鄭州 450003;3.國家林業(yè)局杜仲工程技術(shù)研究中心,河南 鄭州 450003;4.國家林業(yè)局中南林業(yè)調(diào)查規(guī)劃設計院,湖南 長沙 410014)
杜仲Eucommia ulmoidesOliv.是落葉喬木,高達20 m,皮、枝及葉均含膠質(zhì)[1]。杜仲是我國特有的物種,也是名貴的藥材,富含大量綠原酸、類胡蘿卜素等活性成[2-3],不僅如此,杜仲還是寶貴的天然橡膠資源[4]。杜仲膠獨有的橡塑二重性,廣泛應用于工業(yè)、建筑以及人們的日常生活中,作為我國特有的經(jīng)濟物種,栽培面積廣泛,不僅在北京、河南、河北,而且在新疆的喀什等地區(qū)都能生長[5],我國杜仲的栽培面積占世界總栽培面積的90%以上,因此我國被譽為是世界上溫帶膠資源最為豐富的國家[6-7]。
杜仲膠的化學成分為聚異物二烯,與天然橡膠的順勢異戊二烯相比,杜仲膠為反式異戊二烯,分子式相同,但結(jié)構(gòu)始不同,均屬于多萜類化合物[8]。萜類化合物(isoprenoid)是植物生長發(fā)育中重要的次生代謝產(chǎn)物[9]。天然萜類化合物都來源于2個基本的植物萜類物質(zhì)合成途徑,一是位于質(zhì)體的丙酮酸/磷酸甘油醛(MEP)途徑,另一個是位于細胞質(zhì)的甲羥戊酸為前體的甲羥戊酸(MVA)途徑[10],這2個途徑均能合成萜類物質(zhì)前體異戊烯基焦磷酸(IPP)及其異構(gòu)物二甲基烯丙基焦磷酸(DMAPP)[11]。3-羥基-3-甲基戊二單酰輔酶A還原酶(HMGR)是位于MVA途徑中的第1個限速酶,對于萜類生物合成的重要的調(diào)控作用[12-13]。在HMGR的催化作用下,3-羥基,3-甲基戊二單酰輔酶A(HMG-CoA)可以生成甲羥戊酸(MVA),這一過程是不可逆轉(zhuǎn)過程[14]。在MVA途徑中,HMGR家族基因?qū)祁愇镔|(zhì)合成的“碳流”變化起到了決定性的作用[15]。Harker等對HMGR進行了相關研究,得出HMGR的表達量與植物體內(nèi)萜類物質(zhì)的含量成正相關,因此提高HMGR的表達量有利于提高植物中萜類物質(zhì)的含量[16-20]。近年來,對其它植物HMGR的基因報道較多,但就杜仲HMGR基因的研究較少,從全基因組和轉(zhuǎn)錄組的角度對整個杜仲HMGR基因家族的分析和研究鮮見報道。
杜仲各個組織器官中含優(yōu)質(zhì)天然橡膠-杜仲膠,是目前極具發(fā)展?jié)摿Φ膬?yōu)質(zhì)天然膠資源。目前,杜蘭英等[21]通過環(huán)剝與環(huán)割技術(shù),大幅度提高杜仲產(chǎn)果量以及產(chǎn)膠量,但是沒有闡述杜仲膠的分子合成機制。
杜仲膠屬于多萜類化合物,3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶基因(HMGRS)是萜類化合物合成重要途徑MVA途徑的關鍵酶之一。本研究在杜仲轉(zhuǎn)錄組和基因組測序的基礎上,對EuHMGRS基因家族的一級結(jié)構(gòu)特征、二級結(jié)構(gòu)、三級結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)、保守結(jié)構(gòu)域、系統(tǒng)進化關系、內(nèi)含子/外顯子、啟動子相關元件進行了系統(tǒng)分析,旨在為其功能研究和生物合成杜仲膠研究提供分子基礎。
文中數(shù)據(jù)來源于杜仲轉(zhuǎn)錄組以及全基因組數(shù)據(jù)庫[22-23]。
文中根據(jù)相關生物信息學分析軟件及數(shù)據(jù)庫 phytozome(http://www.phytozome.net/search.php) 數(shù)據(jù)庫、ExPASyProtParam(http: //cn.expasy.org)、TMHMM(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM2.0/)、PSIPRED(http: //bioinf.cs.ucl.ac.uk /psipred)、Swiss model(http://swissmodel.expasy.org/)、MEME(http://meme.nbcr.net/meme/)、GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/index.php)、PLACE (http://www.dna.affrc.go.jp/PLACE/signalscan.html)、PLANT CARE (http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)、MEGA5.1和ClustalX2對杜仲HMGSR蛋白的結(jié)構(gòu),理化性質(zhì)、系統(tǒng)進化樹、保守結(jié)構(gòu)域以及啟動子元件等進行了預測和詳盡的分析[24-25]。
對HMGRS基因進行多序列比對分析(見圖1)。在HMGRS基因均存在HMGRS蛋白特有的保守的活性位點,其中包括2個HMG-CoA結(jié)合位 點 EMPVGYVQIP、TTEGCLVA和 2個 NADP(H)結(jié)合位點DAMGMNM、GTVGGGT[26],因此可以確定為杜仲HMGRS基因家族,在杜仲中該家族成員至少包含3個基因,記為EuHMGR12、EuHMGR18、EuHMGR19[27]。杜仲 HMGRS 與其它植物的HMGRS蛋白相比在中間區(qū)域和C端保守性高,在N端的序列相似性較低,預示不同的HMGRS基因功能上具有高度的保守性,但是對于在亞細胞定位可能會具有多樣性[28]。
杜仲HMGRS基因家族與其它植物HMGRS基因的聚類分析(見圖2)。不同植物的HMGR基因之間同源性很高,其在進化上具有很強的保守性。根據(jù)系統(tǒng)進化樹可知,19個HMGR基因的氨基酸序列分為3個分支:單子葉植物、雙子葉植物以及苔蘚類植物,這3個分支完全符合植物的分類規(guī)律。杜仲HMGRS基因家族與雙子葉植
物葡萄和擬南芥的HMGS基因家族同為一個大分支,EuHMGS12與EuHMGS18和EuHMGS19不屬于同一分支,EuHMGS12與VvHMGR3的遺傳距離較為接近,而EuHMGS18和EuHMGS19與VvHMGR2的遺傳距。
圖1 全長HMGRS蛋白多序列對比Fig.1 Multiple sequence alignment of the full length HMGRS proteins
圖2 HMGRS蛋白的聚類分析Fig.2 Cluster analysis of HMGRS proteins
對HMGRS基因家族的蛋白質(zhì)理化性質(zhì)進行了預測,結(jié)果見表1。HMGRS基因編碼氨基酸為404~642之間;相對分子質(zhì)量為44~69;理論等電點為5.9~10.0;其中EuHMGRS基因編碼氨基酸為580~590之間。由不穩(wěn)定系數(shù)可 知,EuHMGS19、PpHMGR1、PpHMGR2、PpHMGR3、VvHMGER2、ZmHMGR3為 穩(wěn) 定 蛋白, 而 AtHMGR1、AtHMGR2、EuHMGR12、EuHMGR18、OsHMG2、OsHMGR1、VvHMGR1、VvHMGR3、ZmHMGR1、ZmHMGR2、ZmHMGR4、ZmHMGR5、ZmHMGR6、ZmHMGR7為不穩(wěn)定蛋白。由蛋白質(zhì)的親水/疏水性可知,AtHMGR1、EuHMGR18、EuHMGR19、OsHMG2、OsHMGR1、 PpHMGR1、PpHMGR3、VvHMGR2、VvHMGR1、ZmHMGR3、ZmHMGR4為親水性蛋白,而AtHMGR2、EuHMGR12、PHMGR2、VvHMGR3、ZmHMGR1、ZmHMGR2、ZmHMGR5、ZmHMGR6、ZmHMGR7為疏水性蛋白。因此,同一家族的HMGRS基因理化性質(zhì)參數(shù)也有很大不同。
表1 EuHMGRS編碼蛋白質(zhì)的基本理化參數(shù)Table 1 Some basis physical and chemical parameters of EuHMGRS
利用MEME在線工具分析HMGRS氨基酸序列的功能結(jié)構(gòu)(見圖3、圖4)。除了ZmHMGR3以外,其它植物HMGR的氨基酸序列均含有3個HMG-CoA-reductaseclass功 能 域:RfSCsTGDaMGmNmV、VGtVGGGT、AIaAgqLvKSHMkY, 其 中RfSCsTGDaMGmNmV、VGtVGGGT包含了2個NADP(H)結(jié)合位點,其中EuHMGR12的3個功能域分別位于355~369 aa、 510~517 aa、564~577 aa;EuHMGR18的3個功能域分別位于 354~ 368 aa、509~ 516 aa、563~ 576 aa;EuHMGR19的3個功能域分別位于350~364 aa、505~512 aa、559~572 aa。
應用TMHMM-2.0對EuHMGS12、EuHMGS18和EuHMGS19跨膜結(jié)構(gòu)域進行分析(見圖5)。結(jié)果表明杜仲HMGRS均具有2個跨膜區(qū),EuHMGS12的跨膜區(qū)為:TMhelix1(46~68)、TMhelix2(89~111);EuHMGS18的跨膜區(qū)為:TMhelix1(42~ 64)、TMhelix2(85~ 107);EuHMGS19的跨膜區(qū)為:TMhelix1(41~63)、TMhelix2(84~106)。EuHMGS的2個跨膜區(qū)均含有22個氨基酸殘基;跨膜區(qū)氨基酸數(shù)位置極為相似,2個跨膜區(qū)均位于N端,C端無明顯的跨膜區(qū)。已知大多數(shù)植物HMGR蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中運轉(zhuǎn),具有相同的拓撲跨膜結(jié)構(gòu),HMGR蛋白行使功能不是完全在細胞質(zhì)中進行,而是通過短氨基酸鏈連接2個跨膜區(qū),經(jīng)蛋白運轉(zhuǎn),完成萜類物質(zhì)的生物合成[24-25]。
圖3 HMGRS基因的保守結(jié)構(gòu)域Fig.3 The conserved domains in HMGRS gene
圖4 HMGR蛋白的功能結(jié)構(gòu)域Fig.4 The functional domains in HMGR protein
圖5 EuHMGRS蛋白的跨膜區(qū)預測Fig.5 Predicted transmembrane region of the deduced protein of EuHMGRS protein
通過GOR4在線預測EuHMGRS蛋白二級結(jié)構(gòu)(見圖6)。結(jié)果表明,EuHMGR12蛋白二級結(jié)構(gòu)為α-螺旋占42.88%,β-折疊占12.88%,螺環(huán)結(jié)構(gòu)占44.24%;EuHMGR18蛋白二級結(jié)構(gòu)中α-螺旋占42.88%,β-折疊占12.88%,螺環(huán)結(jié)構(gòu)占44.24%;EuHMGR19蛋白二級結(jié)構(gòu)中α-螺旋占43.45%,β-折疊占13.79%,螺環(huán)結(jié)構(gòu)占42.76%;EuHMGRS蛋白二級結(jié)構(gòu)較為相似,均屬于混合型結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)。
通過在線SWISS-MODEL中的Automated Mode進行同源建模得到EuHMGRS蛋白的三級結(jié)構(gòu)模型(見圖7)。ExPAsy structure assessment 程序評測推導的EuHMGR12蛋白模型QMEAN6 得分為0.63,蛋白序列的相似性為55.37 %;EuHMGR18蛋白模型QMEAN 6 得分為0.62,蛋白序列的相似性為57.92 %;EuHMGR19蛋白模型QMEAN 6 得分為0.61,蛋白序列的相似性為57.14 %。
圖6 EuHMGRS蛋白二級結(jié)構(gòu)預測Fig.6 Predicted secondary structure of the deduced EuHMGRS protein
圖7 EuHMGRS蛋白三級結(jié)構(gòu)預測Fig.7 Predicted tertiary structure of the deduced EuHMGRS protein
將杜仲HMGRS基因組序列及其對應的完整編碼序列(coding sequence CDS)提交到GSDS在線網(wǎng)站預測基因組的序列特征(見圖8,表2)。EuHMGS基因家族不同的基因具有不同的外顯子和內(nèi)含子數(shù)量。EuHMGR12有4個外顯子,3個內(nèi)含子,其中位于0、1、2相位的內(nèi)含子各占1個;EuHMGR18有4個外顯子,2個內(nèi)含子,其中位于0、2相位的內(nèi)含子各占1個,無1相位的內(nèi)含子;EuHMGR19有2個外顯子,1個內(nèi)含子,內(nèi)含子屬于1相位。
圖8 EuHMGRS基因內(nèi)含子和外顯子預測Fig.8 Prediction of the introns and exons in EuHMGRS
表2 EuHMGRS外顯子和內(nèi)含子分布序列Table 2 Distribution sequence of the introns and exons in EuHMGRS bp
利用PLACE 和plantCARE 在線數(shù)據(jù)庫,預測EuHMGRS啟動子(5′UTR 2 000 bp)的主要順式元件潛在的分布以及功能,EuHMGRS家族基因啟動子主要順式元件潛在的分布以及功能見表3。EuACOTS家族啟動子含有大量基本順式作用元件TATAbox、CAATbox,參與生理調(diào)節(jié)(circadian)、防御與脅迫(TC-rich repeats)、熱脅迫(HSE)、脫落酸(ABRE)應答相關調(diào)控元件。其中EuHMGR12特有低溫(LTR)和厭氧(ARE)響應作用元件;EuHMGR12可能參與受低溫脅迫或厭氧基因的表達調(diào)控;EuHMGR18特有赤霉素(TATC-box)、水楊酸(TCA-element)以及真菌誘導(Box-W1)響應元件響應元件,EuHMGR18可能參與生長素相關基因的調(diào)控,此外EuHMGR18還具有6個增強子(TA-rich region)可大大的提高了基因的轉(zhuǎn)錄頻率;而EuHMGR19中的順式作用元件與分生組織(CAT-box)以及種子特異表達(RY-element)等相關。
表3 EuHMGRS基因啟動子區(qū)順式元件作用預測Table 3 Function prediction of the cis-elements of promoter in EuHMGRS
續(xù)表3Table 3 Continuation
隨著越來越多的植物全基因組測序的完成,從全基因組的角度來分析和研究基因家族成為可能。植物體內(nèi)的萜類代謝是植物體內(nèi)重要的代謝途徑,是植物中不可少的部分[29]。HMGR是植物甲羥戊酸代謝途徑的第1個關鍵酶,對甲羥戊酸代謝碳流的調(diào)控起決定作用[30]。根據(jù)葡萄、擬南芥、水稻、玉米等HMGR基因序列相似分析可知,杜仲HMGRS家族基因在N端較低,而中間和C端區(qū)域的保守型較高,且具有2個HMG-CoA結(jié)合位點(EMPVGYVQIP、TTEGCLVA)和2個NADP(H)結(jié)合位點(DAMGMNM、GTVGGGT),這些序列特征與其它植物的HMGR基因家族相一致。EuHMGRS基因家族3個基因的遺傳距離較近,但是屬于不同的進化分支。馬鈴薯HMGR基因家族中HMGR1基因的表達與甾類化合物合成相關,而HMGR2和HMGR3基因的表達與倍半萜植保素合成相關[31]。因此,推測EuHMGR12、EuHMGR18、EuHMGR19在參與萜類物質(zhì)合成時功能具有多樣性。
目前,HMGR被認為是該合成途徑中第1個最關鍵的限速酶[32]。Wititsuwannakul[33]等提出調(diào)節(jié)巴西橡膠HMGR基因的表達量會影響橡膠的生物合成量。因此推斷,提高杜仲HMGRS基因,勢必會對杜仲膠的生物合成產(chǎn)生一定影響。
轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點主要在轉(zhuǎn)錄起始位點上游附近出現(xiàn)[34],本研究選取轉(zhuǎn)錄起始位點上游2 000 bp 啟動子序列進行啟動子元件預測分析。EuHMGR基因家族含有大量基本元件TATA 框(TACATAAA)和CAAT框(CAAT),同時還含有光(BoxⅠ等)、熱脅迫(HSE)、脫落酸(ABRE)等相關元件,EuHMGR家族基因不是含有大量相同的作用元件,且每個家族成員還存在特異的啟動元件,不同的基因啟動子順式作用元件使基因?qū)Σ煌h(huán)境的響應及基因表達的能力均有所不同。
參考文獻:
[1] 張玲玲,蘇印泉,何德飛.杜仲不同栽培模式的光合、水分生理及負離子效應對比[J].中南林業(yè)科技大學學報, 2012,32(10): 24-28.
[2] 杜紅巖.杜仲活性成分與藥理研究的新進展[J].經(jīng)濟林研究,2003,21(2):58-61.
[3] 杜紅巖,劉昌勇,李 欽,等.杜仲葉中3種主要活性成分含量的季節(jié)變化[J].中南林業(yè)科技大學學報,2011, 31(8): 6-9.
[4] 申 延,何 潑,秦俊哲.杜仲含膠細胞的整體觀察[J].西北林學院學報,2006, 21(3): 41-44.
[5] 何 方,張康健,王承南,等.杜仲產(chǎn)區(qū)劃分[J].經(jīng)濟林研究,2010, 28(2):15-17.
[6] 方世壁.杜仲膠的研究與開發(fā)[J].中外科技信息, 1998, (8):10-11.
[7] 杜紅巖,胡文臻,俞 銳.杜仲產(chǎn)業(yè)綠皮書:中國杜仲橡膠資源與產(chǎn)業(yè)發(fā)展報告[M].北京:社會科學文獻出版社, 2013:1-5.
[8] 宋 磊,張學俊,董大鵬,等.杜仲膠性質(zhì)及提取研究的進展[J].貴州化工, 2006,31(4):4-8.
[9] Holstein SA, H oh R J.Isoprenoids: remarkable diversity of formand function [J].Lipids, 2004, 39(4): 293-311.
[10] Lichtenthaler H K, Schwender J, Disch A.Biosynthesis of isoprenoids in higher plant chloroplasts proceeds via a mevalonate independent pathway [J].FEBS Lett,1997, 400: 271-27.
[11] Dewick P M.The biosynthes is of C5-C25 terpenoid compounds[J].Nat Prod Rep, 2002, 19: 181-222.
[12] Bach T J.Hydroxy methylglutary-CoA reductase, a key enzyme in phytosterol synthesis [J].Lipids, 1986, 21: 82-88.
[13] Choi D, Ward B L, Bostock R M.Differential induction and suppress ion of potato 3-hydroxy-3-m ethylglutaryl coenzyme A reductase genes in response toPhytophthora infestansand to its elicitor arachidonic acid [J].Plant Cell, 1992, 4: 1333.
[14] 陳大華,葉和春,李國鳳.馬鈴薯HMGR基因的克隆、序列分析及其表達特征[J].植物學報,2000, 42(7):724-727.
[15] Chen DH, Ye HC, Li GF,et al.Advances in molecular biology of plant isoprenoid metabolic pathway [J].Acta BotSin, 2000, 42:551-558.
[16] Harker M, Holmberg N, Clayton JC,et al.Enhancement of seed phytosterol levels by expression of an N-terminal truncated Hevea brasiliensis (rubber tree) 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase [J].Plant Biotechnol J, 2003, 1: 113-121.
[17] Wang YY, Jing FY, Yu SY,et al.Co-overexpression of the HMGR and FPS genes enhances artemisinin content inArtemisia annuaL [J].J Med Plants Res, 2011, 5: 3396-3403.
[18] Aquil S, Husaini AM, Abdin MZ,et al.Over-expression of the HMG-CoA reductase gene leads to enhanced artemisinin biosynthesis in transgenicArtemisia annuaplants [J].Planta Med, 2009, 75: 1453-1458.
[19] Alam P, Abdin MZ.Over-expression of HMG-CoA reductase and amorpha-4,11-diene synthase genes inArtemisia annuaL and its influence on artemisinin content [J].Plant Cell Rep, 2011, 30:1919-1928.
[20] Ram M, Khan MA, Jha P,et al.HMG-CoA reductase limits artemisinin biosynthesis and accumulation inArtemisia annuaL pants [J].Acta Physiol Plant, 2010, 32: 859-866.
[21] 杜蘭英,劉攀峰,朱景樂,等.環(huán)剝與環(huán)割強度對果園化栽培條件下杜仲生長和結(jié)果的影響[J].中南林業(yè)科技大學學報,2013,33(8):14-18.
[22] 李鐵柱,杜紅巖,劉慧敏,等.杜仲果實和葉片轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝及基因功能注釋[J].中南林業(yè)科技大學學報, 2012, 32(11):122-130.
[23] 李鐵柱,杜紅巖,劉慧敏,等.杜仲幼果和成熟果實轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝及基因功能注釋[J].中南林業(yè)科技大學學報, 2012 ,32(10): 9-17.
[24] 龍?zhí)鹛?張紅梅,王 婕,等.毛果楊全基因組ANK基因的鑒定及表達分析[J].安徽農(nóng)業(yè)大學學報,2013,40(2):210-218.
[25] 劉攀峰,杜紅巖,杜蘭英,等.杜仲1-羥基-2-甲基-2-(E)-丁烯基-4-二磷酸合酶基因cDNA全長克隆與序列分析[J].植物研究, 2012, 32(4): 444-451.
[26] Ruiz-Albert J, Cerda-Olmedo E, Corrochano L M.Gene for mevalonate biosynthese inPhycomyces[J].Molecular Genetics and Genomics, 2002, 266(5):768-777.
[27] 葉生晶.杜仲MVA途徑相關基因表達差異及全長cDNA序列特征[D].長沙:中南林業(yè)科技大學,2012.
[28] 鄭 鵬,化文平,王喆之.秦艽HMGR基因家族的克隆及序列分析[J].陜西師范大學學報:自然科學版, 2012, 140(6):67-72.
[29] Campos N, Boronat A.Targeting and topology in the membrane of plant 3-hydroxy-3-methylglutrane coenzyme A reductase[J].Plant Cell, 1995,7(12):2163-2174.
[30] 雷 桅,湯紹虎,周啟貴,等.桑萜類生物合成酶HMGR的生物信息學分析[J].蠶業(yè)科學,2008,24(3):393-399.
[31] Leivar P, Antolin-Llovera M, Ferrero S,et al.Multilevel control of Arabidopsis 3-hydroxy-3-methylglutrane coenzyme A reductase by protein phosphatase 2A[J].Plant Cell, 2001,23(4):1494-1511.
[32] Chappell J.Biochemistry and molecular biology of the isoprenoid biosynthesis pathway in plants[J].Ann Rev Plant Physio Plant Mol, 1995, 46: 521-547.
[33] Wititsuwannakul R, Wititsuwannakul D, Suwanmanee P.Puri fi cation and characterization of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase from latex ofHevea brasiliensis[J].Phytochem,1990,29: 1401-1403.
[34] 姜志磊,李淑芳,胡慶才,等.水稻、擬南芥組織特異性啟動子的序列特征分析[J].中國農(nóng)學通報, 2013,29(15):142-148.