国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

金屬蛋白酶組織抑制劑對涎腺腺樣囊性癌表達β—肌營養(yǎng)不良蛋白聚糖的影響

2013-05-10 01:29郝艷梅馬佳司晨晨徐佳景捷
華西口腔醫(yī)學雜志 2013年2期

郝艷梅 馬佳 司晨晨 徐佳 景捷

[摘要] 目的 研究涎腺腺樣囊性癌(SACC)中β-肌營養(yǎng)不良蛋白聚糖(β-DG)的表達情況,探討金屬蛋白酶組織抑制劑(TIMPs)對SACC細胞表達β-DG的影響。方法 采用免疫細胞化學染色法檢測經(jīng)不同濃度(10、15、20、25 μmol·L-1)TIMPs作用后SACC肺高轉移株ACC-M和肺低轉移株ACC-2中β-DG的表達情況,以未經(jīng)TIMPs作用的ACC-M和ACC-2細胞作為對照。收集7例SACC患者的腫瘤組織樣本,以10例正常涎腺組織作為對照,采用免疫組織化學染色法檢測β-DG的表達情況。結果 未經(jīng)TIMPs作用前,ACC-2和ACC-M細胞均未見β-DG表達,經(jīng)不同濃度TIMPs作用后,ACC-2和ACC-M細胞β-DG表達均為陽性。10例正常涎腺組織中,β-DG主要表達于腺泡的基膜上;SACC組織的癌巢周圍及癌細胞中β-DG表達陰性。結論 SACC細胞外基質和細胞骨架連接處的β-DG發(fā)生了斷裂,可能使其更容易發(fā)生侵襲和轉移,而TIMPs能夠逆轉β-DG的表達,為治療SACC提供了新思路。

[關鍵詞] 金屬蛋白酶組織抑制劑; 涎腺腺樣囊性癌; β-肌營養(yǎng)不良蛋白聚糖

[中圖分類號] R 739.87 [文獻標志碼] A [doi] 10.7518/hxkq.2013.02.002

β-肌營養(yǎng)不良蛋白聚糖(β-dystroglycan,β-DG)是一種跨膜蛋白,是連接細胞外基質和細胞內(nèi)骨架的重要結構,對維持細胞膜的完整性和信號轉導起著關鍵性作用[1]。人類宮頸癌、乳腺癌、結腸癌、前

列腺癌患者會出現(xiàn)β-DG異常,舌鱗狀細胞癌患者有β-DG斷裂的現(xiàn)象[2]。涎腺腺樣囊性癌(salivary adenoid cystic carcinoma,SACC)是最常見的唾液腺惡性腫瘤之一,侵襲性較強。目前有關SACC中β-DG的研究尚不多見。本研究通過觀察細胞骨架與細胞外基質這一連接體是否發(fā)生斷裂,從抑制SACC基底膜和細胞外基質降解的角度出發(fā),檢測金屬蛋白酶組織抑制劑(tissue inhibitor of metalloproteinases,TIMPs)調(diào)控SACC肺高轉移株ACC-M和SACC肺低轉移株ACC-2表達β-DG的情況,探討SACC侵襲和轉移的機制,為治療SACC提供新的理論基礎。

1 材料和方法

1.1 主要實驗材料

人SACC肺高轉移株ACC-M和人SACC肺低轉移株ACC-2購至武漢大學保藏中心。主要試劑:GM6001(屬于TIMPs的一種,美國Enzo Life Sciences Interna-tional公司產(chǎn)品),胎牛血清、DMEM培養(yǎng)液(HyClone公司,美國),含0.02%乙二胺四乙酸(ethylenedia-

mine tetraacetic acid,EDTA)的0.25%胰蛋白酶(杭州吉諾生物醫(yī)藥技術有限公司),一抗Beta-Dystro-glycan mouse monoclonal antibody(Novocastra Labo-ratories Ltd.,英國),SP9002(生物素標記山羊抗小

鼠IgG)HistostainTM-PlusKits免疫組織化學染色試劑盒、ZLI-9018DABKit/DAB濃縮型DAB試劑盒(北京

中杉金橋生物技術有限公司)。主要實驗儀器:CO2恒溫細胞培養(yǎng)箱(上海力申科學儀器有限公司),倒置相差顯微鏡(Nikon公司,日本),超凈工作臺(蘇州安泰空氣技術有限公司),數(shù)碼顯微攝影系統(tǒng),冰凍切片機等。

1.2 實驗方法

1.2.1 細胞培養(yǎng) 將ACC-M和ACC-2用含體積分數(shù)10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液在37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng),當細胞長滿80%時進行細胞傳代。

1.2.2 GM6001儲存液制備 將1 mg GM6001粉末溶于100 μL二甲基亞砜(dimethyl sulphoxide,DMSO)后配制成25 μmol·L-1的儲存母液,過濾除菌后,置于

-20 ℃冰箱內(nèi)保存,備用。使用時稀釋,使GM6001濃度分別為25、20、15、10 μmol·L-1。

1.2.3 細胞爬片制備 使用臺盼藍染色進行活細胞計數(shù),確定活細胞數(shù)達到全部細胞的95%以上,用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液稀釋細胞(密度為每毫升5×104個),接種于經(jīng)滅菌處理的蓋玻片上,待細胞貼壁后,去除培養(yǎng)液,按照實驗分組在適宜的條件下繼續(xù)培養(yǎng)24 h。

1.2.4 實驗分組 對照組加含10%胎牛血清DMEM培養(yǎng)液,在37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24 h;實驗組分別加入含GM6001濃度為10、15、20、25 μmol·L-1的培養(yǎng)液,于同樣條件下培養(yǎng)24 h。

1.2.5 免疫細胞化學染色法檢測ACC-M和ACC-2中β-DG的表達 將細胞爬片置于冰面上,用4%多聚甲醛固定5 min,PBS洗片3次,每次5 min;將細胞爬片浸入過氧化氫/甲醇溶液(150 μL 30%過氧化氫溶于50 mL甲醇液)中,室溫浸泡30 min,再用PBS液洗片3次,每次5 min;滴加山羊血清封閉液,室溫下作用30 min,甩去多余液體,不洗。實驗組加一抗(一抗與無菌三蒸水的體積比為1∶200),4 ℃孵育過夜,PBS洗片;對照組不加一抗,以PBS液孵育,4 ℃過夜后,PBS洗片。上述步驟完成后,滴加二抗,于37 ℃孵育60 min,PBS洗片;然后滴加辣根過氧化物酶標記的鏈霉素親和素復合物于切片上,作用30 min,PBS洗片;最后DAB顯色,自來水洗滌,蘇木精復染15 s,脫水,透明,封片,置于光學顯微鏡下觀察,數(shù)碼顯微攝影系統(tǒng)成像。結果判定:細胞核為藍色,β-DG陽性表達者呈棕黃色。

1.2.6 臨床標本中β-DG的表達 選擇2010年12月—2012年6月在寧夏醫(yī)科大學總醫(yī)院口腔頜面外科住院治療的7例SACC患者采集標本?;颊咝g前未經(jīng)任何治療,所有病例均經(jīng)病理診斷后確診,所有患者均行手術治療。7例患者中,男4例,女3例;年齡42~68歲,平均55歲;病史1~6個月,平均3.5個月;原發(fā)部位在左側者2例,右側者5例。另外取10例涎腺組織作為對照,其中5例取自舌下腺囊腫的正常舌下腺組織,3例取自腮腺多形性腺瘤瘤旁正常組織(切緣在腮腺下極距病灶約1 cm處),2例取自腮腺腺淋巴瘤瘤旁正常組織。所有標本均于術中切取,大小約1.0 cm×1.0 cm×0.3 cm,立即放入凍存管并投入液氮中保存?zhèn)溆?。在制作冰凍切片的過程中,切片機的溫度要維持在-20 ℃。切片完成后在冰面上用冷丙酮和甲醇固定4 min,PBS反復沖洗,再將冰凍切片浸入3%過氧化氫溶液中,室溫浸泡30 min以滅活內(nèi)源性酶,PBS液洗片,滴加山羊抗小鼠血清封閉液,室溫下作用60 min,甩去多余液體,不洗,后續(xù)步驟同1.2.5。

1.2.7 統(tǒng)計學分析 用Image Pro-Plus 6.0病理細胞圖像分析系統(tǒng),將各組免疫細胞化學結果進行圖像分析,每張切片至少選取5個高倍(40×10倍)視野,

計算出平均光密度值。采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件分析數(shù)據(jù),不同濃度的GM6001分別干預ACC-M和ACC-2細胞24 h后β-DG表達變化的比較采用單因素方差分析,ACC-M和ACC-2兩種細胞株β-DG表達變化的比較采用獨立樣本t檢驗,檢驗水準為雙側α=0.05。

2 結果

2.1 加入GM6001后對ACC-M和ACC-2細胞株β-DG

表達的影響

加入不同濃度GM6001后,用免疫細胞化學法檢測ACC-M和ACC-2細胞株中β-DG的表達,結果見表1:實驗組與對照組β-DG表達的差異有統(tǒng)計學意義(ACC-M:F=60.247,P<0.05;ACC-2:F=34.453,P<0.05);GM6001濃度為20 μmol·L-1時,ACC-M和ACC-2中β-DG表達量的差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),

其余3種濃度下,ACC-M和ACC-2中β-DG表達量的差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

加入GM6001前后ACC-M和ACC-2細胞株中β-DG表達的情況見圖1~4:加入GM6001前(對照組),

ACC-M和ACC-2細胞株中均無β-DG表達;加入GM6001后,2種細胞株中β-DG表達均為陽性。

2.2 臨床標本中β-DG的表達

2.2.1 正常涎腺組織β-DG的表達 正常涎腺組織中β-DG主要位于腺泡基膜上。圖5為正常舌下腺組織,可見舌下腺腺泡的外周有一層基膜包繞,基膜β-DG染色為陽性。

2.2.2 SACC組織β-DG的表達 7例SACC臨床標本中,癌巢周圍及癌細胞中β-DG表達均為陰性。圖6

中SACC組織呈管狀型,腫瘤細胞排列呈小管狀或條索狀結構,管狀結構的內(nèi)層襯有導管細胞,外層為腫瘤肌上皮細胞,均未見β-DG陽性染色。

3 討論

β-DG是廣泛表達于各種組織的跨膜糖蛋白,其功能很復雜,與細胞和基底膜的連接有關,而細胞與基底膜的連接對腫瘤細胞的侵襲和轉移至關重

要[3]。在胃癌的研究[4]中,β-DG是一種功能性蛋白,在原發(fā)性腫瘤和轉移性淋巴結中表達降低。在SACC中的表達情況,目前尚不明確。

SACC約占涎腺腫瘤的10%,易沿神經(jīng)擴散發(fā)生遠處轉移,其遠處轉移的機制尚不清楚,對其預防和治療尚無有效的方法。DeAngelis等[5]對24例SACC患者進行了長達22年的臨床回訪,發(fā)現(xiàn)患者5、10、20年的生存率分別為92%、72%、54%。對于SACC治療方式的選擇和預后的評估可能需要結合一些實驗室檢測指標。

β-DG是基質金屬蛋白酶(matrix metalloprotei-

nase,MMPs)的靶點。β-DG被MMPs降解后,造成

β-DG復合體斷裂, 使上皮細胞與細胞外基質的連接出現(xiàn)斷裂[6-7]。本實驗運用免疫組織化學法檢測臨床組織標本,結果發(fā)現(xiàn):正常涎腺組織表達β-DG,提示β-DG對維持正常涎腺的結構和功能有重要作用;7例SACC組織中β-DG表達缺失,提示細胞與細胞、細胞與細胞外基質之間的連接發(fā)生了斷裂,意味著癌細胞失去了自限性,獲得向鄰近正常組織侵襲和轉移的能力。應用ACC-M和ACC-2兩種細胞株進行體外研究,β-DG的表達情況與組織學的研究結果一致。

TIMPs是MMPs的天然抑制劑,正常情況下在組織細胞中MMPs和TIMPs處于一種相對平衡的狀態(tài)[8],如果這種平衡被打破,細胞就會出現(xiàn)病理學表現(xiàn)。有研究[9]表明,TIMP-1會干擾由某些因子的受體復合

物介導的凋亡作用,并能阻止病變發(fā)展和促進組織修復。由此可以推測,通過TIMPs調(diào)控MMPs有可能逆轉β-DG的異常表達,從而影響SACC的侵襲和轉移,這為治療SACC提供了新思路。本研究中,ACC-M和ACC-2兩種細胞株的β-DG表達均為陰性,經(jīng)GM6001干預后,ACC-M和ACC-2的細胞膜均出現(xiàn)了棕黃色的β-DG表達區(qū)域,這說明GM6001能夠抑制SACC中β-DG的斷裂,而且對β-DG的調(diào)控是通過抑制MMPs對基底膜的降解實現(xiàn)的。本研究還比較了不同濃度的GM6001干預ACC-2和ACC-M細胞株24 h后β-DG表達的變化,結果提示,低轉移細胞株ACC-2在10、15、25 μmol·L-1的GM6001調(diào)控下,β-DG表達較高轉移細胞株ACC-M為高,說明GM6001對ACC-2中異常β-DG的調(diào)控作用比ACC-M明顯,其機理還需后續(xù)的研究來證實。

本實驗分別從細胞和組織水平展開研究,檢測到SACC中β-DG表達缺失,通過GM6001的調(diào)控,ACC-M和ACC-2兩種細胞株均可恢復β-DG的表達。本研究證實了GM6001能夠逆轉SACC中β-DG的表達,為治療SACC提供了參考,但其機理還需要進一步研究。

[參考文獻]

[1] Lara-Chacón B, de León MB, Leocadio D, et al. Characterization

of an importin alpha/beta-recognized nuclear localization signal in

beta-dystroglycan[J]. J Cell Biochem, 2010, 110(3):706-717.

[2] 景捷, 趙磊, 靳曉曄, 等. TIMPs對舌鱗狀細胞癌異常β-DG的作

用[J]. 現(xiàn)代口腔醫(yī)學雜志, 2010, 24(6):448-452.

Jing Jie, Zhao Lei, Jin Xiaoye, et al. The roles of tissue inhibitors

of metalloproteinases on aberrant β-DG in squamous cell carci-

noma of the tongue[J]. J Modern Stomatol, 2010, 24(6):448-452.

[3] Schwock J, Dhani N, Hedley DW. Targeting focal adhesion kinase

signaling in tumor growth and metastasis[J]. Expert Opin Ther Tar-

gets, 2010, 14(1):77-94.

[4] Shen JG, Xu CY, Li X, et al. Dystroglycan is associated with tu-

mor progression and patient survival in gastric cancer[J]. Pathol

Oncol Res, 2012, 18(1):79-84.

[5] DeAngelis AF, Tsui A, Wiesenfeld D, et al. Outcomes of patients

with adenoid cystic carcinoma of the minor salivary glands[J]. Int J

Oral Maxillofac Surg, 2011, 40(7):710-714.

[6] Yamada H, Saito F, Fukuta-Ohi H, et al. Processing of beta-

dystroglycan by matrix metalloproteinase disrupts the link between

the extracellular matrix and cell membrane via the dystroglycan

complex[J]. Hum Mol Genet, 2001, 10(15):1563-1569.

[7] Jing J, Lien CF, Sharma S, et al. Aberrant expression, processing

and degradation of dystroglycan in squamous cell carcinomas[J].

Eur J Cancer, 2004, 40(14):2143-2151.

[8] Moore CS, Crocker SJ. An alternate perspective on the roles of

TIMPs and MMPs in pathology[J]. Am J Pathol, 2012, 180(1):

12-16.

[9] Sa Y, Hao J, Samineni D, et al. Brain distribution and elimina-

tion of recombinant human TIMP-1 after cerebral ischemia and

reperfusion in rats[J]. Neurol Res, 2011, 33(4):433-438.

(本文采編 周學東)