劉怡彤,段振華,2,* ,馬華林,李 霜,張 雄,李婧怡
(1.海南大學(xué)食品學(xué)院,海南海口570228;2.海南大學(xué)熱帶生物資源教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,海南海口570228)
黃秋葵(Abelmoschus esculentus(L.)Moench),為錦葵科秋葵屬一年生草本植物,別名秋葵夾、羊角豆等,原產(chǎn)于非洲,現(xiàn)在全國各地均有栽培[1]。黃秋葵含有豐富的蛋白質(zhì)、游離氨基酸、礦物質(zhì)、多糖、黃酮和多酚類化合物等多種生物活性成分[2-4]。豐富的生物活性物質(zhì)使得黃秋葵具有抗疲勞[5]、提高機(jī)體免疫力、減少肺損傷和抗癌等作用[6-7],臨床上已經(jīng)應(yīng)用于治療皮膚癌[8]、燙燒傷等疾病的治療。有研究表明[9]黃秋葵多糖具有體外結(jié)合膽酸的能力。多酚具有較強(qiáng)的清除自由基、抗氧化活性、抗腫瘤、抗輻射以及保護(hù)心血管系統(tǒng)等重要的生物活性功能[10],但關(guān)于黃秋葵多酚的研究卻鮮有報(bào)道。因此開發(fā)研究黃秋葵多糖和多酚,對于黃秋葵資源的充分利用具有積極意義。超聲波輔助提取技術(shù)利用機(jī)械及熱力學(xué)特征產(chǎn)生極大的沖擊力與剪切力,產(chǎn)生空化作用,使細(xì)胞破碎,通過提高破碎速度來提高提取效率[11]。利用超聲波技術(shù)輔助提取植物中活性物質(zhì)具有減少溶劑用量,減少提取時(shí)間,降低提取溫度等優(yōu)點(diǎn)[12-14]。本實(shí)驗(yàn)以新鮮黃秋葵為原料,采用超聲波輔助提取技術(shù),對黃秋葵水提液中多酚和多糖進(jìn)行研究,通過單因素和正交實(shí)驗(yàn)確定黃秋葵中多酚和多糖水提取的最佳工藝條件,以期為黃秋葵的產(chǎn)品研發(fā)和有效開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)。
黃秋葵新鮮嫩果 ??谑心蠂?沒食子酸分析標(biāo)準(zhǔn)品(純度>99%) 阿拉丁試劑公司;福林酚(FC)、碳酸鈉、無水葡萄糖、苯酚、濃硫酸 均為國產(chǎn)分析純。
KS-300E超聲波清洗機(jī) 寧波科生儀器廠;101-2型電熱鼓風(fēng)恒溫干燥箱 常州市華普達(dá)教學(xué)儀器有限公司;7200可見分光光度計(jì) 尤尼柯(上海)儀器有限公司;IKA A11 basic分析用研磨機(jī) 德國儀科;HH-S26S電熱恒溫水浴鍋 金壇市大地自動(dòng)化儀器廠;BS124S電子天平 Sartorius公司;SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵 鄭州長城科工貿(mào)有限公司;TDZ5-WS多管架自動(dòng)平衡離心機(jī) 湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司。
1.2.1 提取工藝流程 新鮮黃秋葵→蒸餾水清洗→去蒂→打漿→加入一定量蒸餾水→攪拌均勻→超聲處理→抽濾→濾液離心→提取液
1.2.2 多酚的測定 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定:采用福林-酚法[15]。精密稱取20mg沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品,蒸餾水溶解并定容至 200mL,分別吸取 0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mL標(biāo)準(zhǔn)品溶液,各補(bǔ)水至0.5mL。然后加入10%FC試劑2.5mL,充分搖勻。反應(yīng)5min后加入7.5%Na2CO3溶液5mL,50℃水浴鍋中反應(yīng)5min。室溫避光保存1h。于波長760nm處測定吸光度。標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程結(jié)果為:Y=5.3986X+0.0202,R2=0.9954,其中Y:吸光度;X:沒食子酸質(zhì)量濃度(mg/mL)。
樣品測定:吸取提取液0.5mL,按上述步驟操作測定吸光度,以標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程和料液比計(jì)算黃秋葵多酚得率。
1.2.3 多酚含量的計(jì)算 根據(jù)公式計(jì)算多酚得率:多酚含量(mg/g)=黃秋葵多酚質(zhì)量(mg)/黃秋葵質(zhì)量(g)。
1.2.4 多糖的測定 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定:采用苯酚-硫酸法[16]。精密稱取100mg干燥至恒重的葡萄糖,蒸餾水溶解并定容至1000mL,分別吸取0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL葡萄糖溶液,各補(bǔ)水至1.0mL。然后加入6%苯酚溶液1mL,充分搖勻后加入濃硫酸5mL,迅速搖勻后室溫放置30min,于波長490nm處測定吸光度。標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程結(jié)果為:Y=9.5871X+0.0065,R2=0.9983,其中 Y:吸光度;X:葡萄糖質(zhì)量濃度(mg/mL)。
樣品測定:量取一定量提取液,加入三倍量95%乙醇,于4℃冰箱過夜保存。抽濾取沉淀后復(fù)溶于水。取1mL復(fù)溶液,按上述步驟操作測定吸光度,以標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程和料液比計(jì)算黃秋葵多糖得率。
1.2.5 多糖含量的計(jì)算 多糖含量(mg/g)=黃秋葵多糖質(zhì)量(mg)/黃秋葵質(zhì)量(g)
1.2.6 單因素實(shí)驗(yàn) 選定超聲時(shí)間、料液比、超聲溫度和超聲功率四個(gè)因素作單因素實(shí)驗(yàn),在其他因素不變的情況下,考察各個(gè)單因素對黃秋葵多酚和多糖得率的影響。
1.2.7 正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以超聲時(shí)間、料液比、超聲溫度和超聲功率為考察因素,設(shè)計(jì)4因素3水平的正交實(shí)驗(yàn),對超聲提取黃秋葵水溶液多酚和多糖的工藝進(jìn)行優(yōu)化。因素水平設(shè)計(jì)見表1。
表1 工藝優(yōu)化L9(34)正交實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and their levels in L9(34)orthogonal array design
固定料液比為1∶40,超聲溫度為50℃,超聲功率為120W,改變超聲時(shí)間為 30、60、90、120、150min。考察超聲時(shí)間對黃秋葵多酚和多糖含量的影響。結(jié)果如圖1所示。
圖1 超聲時(shí)間對含量的影響Fig.1 Effect of ultrasound treatment time on yield
由圖1可以看出,隨著超聲時(shí)間的增加,多酚和多糖的含量先明顯增大,當(dāng)時(shí)間增加至90min時(shí),隨著時(shí)間的繼續(xù)增加,得率又出現(xiàn)減小的趨勢。這可能是因?yàn)殚L時(shí)間的超聲處理破壞了產(chǎn)物結(jié)構(gòu),加劇了多酚物質(zhì)的氧化,導(dǎo)致多酚含量下降;同時(shí)使得大分子多糖的糖苷鍵斷裂,從而導(dǎo)致多糖含量下降[17]。
固定超聲時(shí)間為90min,超聲溫度為50℃,超聲功率為 120W,改變料液比為 1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50。考察料液比對黃秋葵多酚和多糖含量的影響。結(jié)果如圖2所示。
圖2 料液比對含量的影響Fig.2 Effect of material/liquid ratio on yield
由圖2可以看出,隨著料液比的增大,多酚含量呈現(xiàn)明顯增加趨勢,在1∶40料液比時(shí)出現(xiàn)最大值,隨后減小。多糖增加趨勢較為平緩,也在1∶40出現(xiàn)最大值。這可能是因?yàn)殡S著料液比的增大,細(xì)胞壁內(nèi)外的物質(zhì)濃度差增大,增大了擴(kuò)散速度,從而促進(jìn)物質(zhì)溶出。而當(dāng)料液比增加到一定程度之后,水分子分散了超聲波對有效成分的作用,導(dǎo)致細(xì)胞破碎不完全,從而降低得率[18]。
固定超聲時(shí)間 90min,料液比1∶40,超聲功率120W,改變超聲溫度為 30、40、50、60、70℃??疾斐暅囟葘S秋葵多酚和多糖含量的影響。結(jié)果如圖3所示。
圖3 超聲溫度對含量的影響Fig.3 Effect of ultrasound temperature on yield
由圖3可以看出,在30~40℃時(shí),多酚和多糖含量都有所增加,40℃之后,隨著溫度增加,兩者得率均持續(xù)減小,在60℃之后變化平緩。因?yàn)辄S秋葵酚類化合物在較高的溫度下容易發(fā)生氧化,所以溫度的升高會(huì)導(dǎo)致多酚含量下降;提取溫度過高也會(huì)引起水溶性多糖分子結(jié)構(gòu)的破壞[19]。隨后含量變化平緩,這可能是因?yàn)榇蟛糠侄喾优c多糖已被高溫破壞,只有少量結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的酚類與多糖未被破壞,溶解于提取液中。因此提取溫度選在40℃。
固定超聲時(shí)間為90min,料液比為1∶40,超聲溫度為 40℃,改變超聲功率為 48、72、96、120、144W。考察超聲功率對黃秋葵多酚和多糖得率的影響。結(jié)果如圖4所示。
圖4 超聲功率對含量的影響Fig.4 Effect of ultrasound power on yield
由圖4可以看出,在超聲功率低于96W時(shí),隨功率增大多酚含量明顯增大,當(dāng)超聲功率超過96W時(shí),隨功率增大多酚含量逐漸減小。多糖在72W時(shí)出現(xiàn)最大值,72W與96W含量略有減小,但相差不大,因此考慮到多酚在96W出現(xiàn)最大值,超聲功率選在96W。多酚與多糖含量均先增大后減小可能是因?yàn)殡S著功率增大,超聲波空化作用更劇烈,分子擴(kuò)散就越劇烈。而當(dāng)超聲波功率達(dá)到一定值時(shí)會(huì)對多酚和多糖產(chǎn)生破壞作用,引起多酚和多糖物質(zhì)的分解[14,20]。
根據(jù)表1正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)表進(jìn)行四因素三水平正交實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
由表2可以看出,影響黃秋葵多酚含量的因素次序?yàn)锳>C>B>D,最優(yōu)組合為A2B3C3D2,影響黃秋葵多糖得率的因素次序?yàn)镃>A>D>B,最優(yōu)組合為A2B3C3D1。黃秋葵多酚與多糖的最優(yōu)組合僅僅在D功率因素上存在差異??紤]到在多酚和多糖兩種物質(zhì)中,目前對黃秋葵的研究主要集中在黃秋葵多糖,有大量研究表明黃秋葵多糖具有很多功能活性[9,21-23],故選擇多糖的最優(yōu)組合 A2B3C3D1為最佳工藝條件即超聲時(shí)間90min,超聲溫度45℃,料液比1∶45,超聲功率84W。
表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of orthogonal test
選取超聲時(shí)間90min,超聲溫度45℃,料液比1∶45,超聲功率84W進(jìn)行三次平行實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)結(jié)果平均值為:多酚含量為 4.207mg/g,多糖含量為2.671mg/g。均高于正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果,說明該工藝條件穩(wěn)定可行。
超聲波輔助水提取黃秋葵多酚和多糖的最佳工藝條件為超聲時(shí)間90min,超聲溫度45℃,料液比1∶45,超聲功率84W,其中超聲時(shí)間是影響多酚和多糖得率的最主要因素。在該條件下水提取黃秋葵多酚和多糖的含量分別為4.207、2.671mg/g。
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