黃藝,張郅灝
1. 北京大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,北京 100871;2. 北京大學(xué)深圳研究生院環(huán)境與能源學(xué)院,廣東 深圳 518055
人類(lèi)生產(chǎn)和生活產(chǎn)生的大量氮、磷,隨著地表徑流、排污系統(tǒng)和大氣的干濕沉降過(guò)程進(jìn)入水體中,引起水體的富營(yíng)養(yǎng)化。當(dāng)富營(yíng)養(yǎng)化嚴(yán)重的水體遇到適合藻類(lèi)生長(zhǎng)的溫度和光照等條件時(shí),會(huì)產(chǎn)生藻類(lèi)水華現(xiàn)象。藻類(lèi)在水期間會(huì)分泌出一種次級(jí)代謝產(chǎn)物——藻毒素,用以抑制水體種其他物種的生長(zhǎng),確保藻類(lèi)本身的生長(zhǎng)優(yōu)勢(shì)。這些毒素對(duì)接觸水體的動(dòng)植物和人類(lèi),亦具有潛在的危害。
自Francis[1]首次報(bào)道了動(dòng)物因飲用含有藍(lán)藻的水而死亡以來(lái),世界各地藍(lán)藻毒素引起鳥(niǎo)類(lèi)、魚(yú)類(lèi)、家畜甚至人類(lèi)的大規(guī)模疾病乃至死亡的事件時(shí)有報(bào)道。1975年,美國(guó)賓西法尼亞小鎮(zhèn)Sewickley的飲用水源遭到有毒藍(lán)藻污染,最后導(dǎo)致約8 000人(占當(dāng)?shù)厝丝诘?2%)患上急性胃腸炎[2]。1996年,巴西一家血液透析中心,因透析液被藻毒素污染,導(dǎo)致130名病人中有116人出現(xiàn)異常癥狀,并有50余人最終死亡[3]。
近年來(lái),人們對(duì)藻毒素的關(guān)注點(diǎn)由其急性毒效向長(zhǎng)期低劑量暴露下的慢性毒效轉(zhuǎn)變,尤其是微囊藻毒素(microcystin, MC)。其中,微囊藻毒素的促癌作用受到了重點(diǎn)關(guān)注。在應(yīng)用二甲基苯并蒽致小鼠皮膚癌的實(shí)驗(yàn)中,與正常飲水的對(duì)照組相比,飲用含微囊藻提取物的小鼠皮膚腫瘤的平均質(zhì)量顯著增加[4]。在我國(guó),通過(guò)流行病學(xué)研究發(fā)現(xiàn),在肝癌高發(fā)的東南沿海地區(qū),原發(fā)性肝癌(HCC)發(fā)病率與其生產(chǎn)和生活中使用溝塘水有密切關(guān)系。飲用含藻毒素的溝塘水居民的肝癌死亡率為100/100 000左右,顯著高于飲淺井或深井水者(20/100 000)[5]。為了證明藻毒素與癌癥的關(guān)系,以便有效防治藻毒素的生物毒害,研究者對(duì)藻毒素的致癌機(jī)理進(jìn)行了大量研究。
同時(shí),為對(duì)微囊藻毒素的不良健康效應(yīng)進(jìn)行綜合性和定量性分析,并為預(yù)防和管理藻毒素對(duì)人體健康的影響提供科學(xué)依據(jù),研究者和衛(wèi)生管理部門(mén)一起對(duì)藻毒素的人體健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)價(jià)方法和標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行了大量的研究工作,如,世界衛(wèi)生組織(WTO)提出了微囊藻毒素的人體日可容許攝入劑量(TDI)和飲用水參考標(biāo)準(zhǔn)(GV),為各國(guó)控制藻毒素健康風(fēng)險(xiǎn)提供了有力的依據(jù)[6]。
本文擬綜述微囊藻毒素對(duì)生物的毒害機(jī)理,以及其對(duì)人體的健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估兩個(gè)方面的研究現(xiàn)狀和發(fā)展趨勢(shì),為進(jìn)一步研究藍(lán)藻水華的生態(tài)毒理和評(píng)估其健康風(fēng)險(xiǎn)提供信息。
在細(xì)胞層面上,微囊藻毒素?fù)p傷生物的主要方式可分為4種:(1)直接破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),引發(fā)細(xì)胞溶解;(2)誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡;(3)誘導(dǎo)細(xì)胞癌變;(4)誘導(dǎo)基因突變和DNA損傷 。
短時(shí)間、大劑量的藻毒素暴露會(huì)引發(fā)動(dòng)物體內(nèi)細(xì)胞變形、失活甚至壞死,這是藻毒素急性致毒的主要表現(xiàn)方式。細(xì)胞是一切生理活動(dòng)的基本單位,細(xì)胞結(jié)構(gòu)的完整性為它們功能的正常運(yùn)作提供了支持,當(dāng)細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞時(shí),細(xì)胞內(nèi)的生理化學(xué)過(guò)程就會(huì)受到干擾,細(xì)胞功能喪失,繼而導(dǎo)致細(xì)胞壞死。組織細(xì)胞學(xué)研究表明,高濃度的藻毒素會(huì)改變相應(yīng)組織器官內(nèi)(特別是肝臟)細(xì)胞的結(jié)構(gòu),這種損傷同時(shí)作用于細(xì)胞的膜系統(tǒng)與骨架系統(tǒng)[7]。
膜系統(tǒng)將細(xì)胞分為若干功能區(qū)域,它保證了細(xì)胞內(nèi)環(huán)境的相對(duì)穩(wěn)定,使各種區(qū)域內(nèi)的生化反應(yīng)能夠有序運(yùn)行。對(duì)小鼠或魚(yú)腹腔注射藻毒素,通過(guò)肝組織的解剖觀(guān)察可知,肝細(xì)胞內(nèi)線(xiàn)粒體、高爾基體腫脹,粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)折疊,顯示細(xì)胞膜系統(tǒng)的形態(tài)變化[8]。還有研究表明,微囊藻毒素會(huì)破壞細(xì)胞膜的穩(wěn)定性和完整性,增加其通透性。Ding等[9]發(fā)現(xiàn)微囊藻毒素能提高細(xì)胞的乳酸脫氫酶(LDH)滲出率,而LDH滲出率的變化正是細(xì)胞膜損傷的標(biāo)注;Ding認(rèn)為,細(xì)胞膜被微囊藻毒素-LR誘導(dǎo)產(chǎn)生的活性氧自由基(ROS)攻擊后會(huì)發(fā)生過(guò)氧化連鎖反應(yīng),造成生物膜的脂質(zhì)過(guò)氧化(LPO)損傷,破壞膜的功能,最終表現(xiàn)上述特征。Paulina等[10]發(fā)現(xiàn),暴露于不同濃度微囊藻毒素-LR的人類(lèi)紅細(xì)胞,呈現(xiàn)細(xì)胞膜脂質(zhì)過(guò)氧化、膜流動(dòng)性下降的狀態(tài),同時(shí)鋸齒狀紅細(xì)胞的數(shù)量上升,并出現(xiàn)溶血現(xiàn)象。
細(xì)胞骨架是細(xì)胞內(nèi)由蛋白質(zhì)所搭建的骨架網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),對(duì)維持細(xì)胞形態(tài),保證細(xì)胞功能有重要意義,細(xì)胞膜出泡、細(xì)胞形態(tài)改變都是細(xì)胞骨架解體、重組的結(jié)果。微管、微纖絲、中間纖維是細(xì)胞骨架的主要成分,微囊藻毒素正是通過(guò)改變這些結(jié)構(gòu)相關(guān)蛋白的形態(tài)與排列,最終破壞細(xì)胞骨架系統(tǒng)。許多研究者都認(rèn)為,微囊藻毒素能抑制細(xì)胞內(nèi)蛋白磷酸酶1和2A(PP1、PP2A)的活性,使細(xì)胞骨架上的蛋白質(zhì)因過(guò)磷酸化而變性,進(jìn)而損傷細(xì)胞骨架系統(tǒng)[11]。將原代培養(yǎng)的肝細(xì)胞用4 μm·L-1的微囊藻毒素-LR處理30 min后,可觀(guān)察到細(xì)胞內(nèi)纖維和微絲網(wǎng)絡(luò)解體、塌陷、重組。中國(guó)倉(cāng)鼠卵巢細(xì)胞(CHO-K1)暴露于微囊藻毒素-LR后,也出現(xiàn)了類(lèi)似的微絲網(wǎng)絡(luò)崩潰現(xiàn)象,同時(shí)還可觀(guān)察到微管系統(tǒng)的解體[12]。
細(xì)胞膜系統(tǒng)及骨架系統(tǒng)受到損傷后,會(huì)引發(fā)細(xì)胞形態(tài)的變化,如細(xì)胞變圓、組織內(nèi)細(xì)胞間接觸降低、橋粒張力絲喪失、竇狀隙結(jié)構(gòu)喪失等,這些都有可能導(dǎo)致相應(yīng)器官失活、衰竭甚至壞死。對(duì)暴露于微囊藻毒素-LR的魚(yú)進(jìn)行解剖觀(guān)察,發(fā)現(xiàn)其肝臟腫大、充血以致壞死[8]。肝臟是微囊藻毒素的主要靶器官,同時(shí)也有部分研究觀(guān)察到微囊藻毒素在腎、腦、腮等器官中也有分布,并會(huì)攻擊這些器官[13]。如有研究發(fā)現(xiàn),微囊藻毒素-LR可以導(dǎo)致魚(yú)的腎小囊腔膨大,凝結(jié)管壞死。微囊藻毒素對(duì)器官的選擇性攻擊現(xiàn)象與其化學(xué)性質(zhì)有關(guān)。微囊藻毒素是親水性多肽,極難以被動(dòng)運(yùn)輸方式通過(guò)脊椎動(dòng)物的細(xì)胞膜,因此在滲透過(guò)程中需要主動(dòng)運(yùn)輸系統(tǒng)參與。有機(jī)陰離子轉(zhuǎn)運(yùn)多肽(OATP)類(lèi)蛋白家族能夠介導(dǎo)對(duì)于不依賴(lài)鈉離子的兩性有機(jī)化合物的吸收,在細(xì)胞吸收微囊藻毒素上起到至關(guān)重要的作用,因此能夠表達(dá)有機(jī)陰離子轉(zhuǎn)運(yùn)多肽的組織或器官的細(xì)胞對(duì)微囊藻毒素吸收能力更強(qiáng),受到的毒性損傷也更為嚴(yán)重[14-15]。
凋亡是細(xì)胞為維護(hù)內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,由基因控制的主動(dòng)死亡過(guò)程[16]。細(xì)胞凋亡是多細(xì)胞生物生命活動(dòng)過(guò)程中不可缺少的組成內(nèi)容,貫穿于整個(gè)生命周期,這一過(guò)程受到高度精密的調(diào)控,并且受多種因子誘導(dǎo),異常的信號(hào)物質(zhì)上調(diào)、下調(diào)可能會(huì)導(dǎo)致生物體增殖-凋亡平衡的破壞,若細(xì)胞凋亡發(fā)生功能障礙或失去控制將導(dǎo)致多種疾病的發(fā)生。
多種類(lèi)型的藻毒素都可誘導(dǎo)生物體內(nèi)細(xì)胞的凋亡,影響相應(yīng)器官的功能及活性。肝、腎、腮、脾、免疫系統(tǒng)等都會(huì)受到藻毒素致凋亡作用的影響[17]。微囊藻毒素在經(jīng)過(guò)相應(yīng)載體的運(yùn)輸作用進(jìn)入細(xì)胞后,會(huì)引發(fā)ROS的快速產(chǎn)生[18],誘導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)氧化應(yīng)激反應(yīng),干擾細(xì)胞內(nèi)某些信號(hào)物質(zhì)(如Bcl-2族蛋白)的傳導(dǎo),影響細(xì)胞凋亡、增殖等進(jìn)程[19]。ROS還能通過(guò)損傷內(nèi)質(zhì)網(wǎng),影響Caspase通路及鈣調(diào)蛋白激酶II (CaMKⅡ)通路,促進(jìn)細(xì)胞凋亡[20]。
同時(shí),微囊藻毒素-LR可以與PP2A的催化亞基結(jié)合,抑制該酶的蛋白脫磷酸活性,通過(guò)干擾蛋白分子脫磷酸化而打破細(xì)胞內(nèi)信號(hào)物質(zhì)平衡(如p53蛋白、Bcl-2蛋白家族、CaMKII等),影響線(xiàn)粒體、細(xì)胞核、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細(xì)胞器的功能,最終開(kāi)啟、加速細(xì)胞凋亡程序[21-22]。
Sueoka[23]首次報(bào)道微囊藻毒素-LR會(huì)改變致癌基因和腫瘤抑制基因的表達(dá),促進(jìn)細(xì)胞癌變。小鼠肝細(xì)胞暴露實(shí)驗(yàn)顯示,在微囊藻毒素-LR暴露6 h后,細(xì)胞內(nèi)jun、fos和myc癌早期相應(yīng)基因族的表達(dá)由于細(xì)胞增殖刺激而顯著提高[24]。同時(shí),另一種內(nèi)源性腫瘤促進(jìn)劑腫瘤壞死因子(TNF-α)的表達(dá)也明顯上升[25]。微囊藻毒素-LR還誘導(dǎo)DNA損傷響應(yīng)基因表達(dá)的提高。
Toivola[26]等提出關(guān)于微囊藻毒素促進(jìn)肝癌形成的分子機(jī)制假說(shuō),他認(rèn)為,微囊藻毒素抑制PP2A活性并影響MAPK信號(hào)的過(guò)程是其促進(jìn)腫瘤的關(guān)鍵。在細(xì)胞增殖過(guò)程中,MAPK信號(hào)調(diào)節(jié)著數(shù)個(gè)基因轉(zhuǎn)錄過(guò)程,MAPK活性增加可能促進(jìn)細(xì)胞分裂繁殖速度,促使細(xì)胞癌化。另外,MAPK活性能明顯抑制細(xì)胞凋亡,使癌細(xì)胞逃避凋亡途徑。PP2A是MAPK信號(hào)最主要的負(fù)調(diào)節(jié)因子,微囊藻毒素抑制PP2A的同時(shí)也促進(jìn)了MAPK活性,增強(qiáng)了細(xì)胞裂殖能力,最終促進(jìn)腫瘤形成。
微囊藻毒素對(duì)DNA的損傷也是基于抑制PP2A和產(chǎn)生ROS這2種生理過(guò)程,主要通過(guò)誘導(dǎo)DNA突變、損傷DNA結(jié)構(gòu)、抑制DNA修復(fù)這3種方式損傷細(xì)胞DNA,形成遺傳毒性。
1.4.1 誘導(dǎo)DNA突變
微囊藻毒素能通過(guò)誘導(dǎo)ROS形成,導(dǎo)致離體培養(yǎng)細(xì)胞和動(dòng)物活體細(xì)胞的DNA損傷。8-oxo-dG是一種常見(jiàn)的DNA氧化損傷生物標(biāo)記,它的形成標(biāo)志著細(xì)胞內(nèi)ROS含量上升,抗氧化劑減少[27]。Maatouk等[28]在微囊藻毒素-LR誘導(dǎo)原代小鼠肝細(xì)胞的DNA損傷過(guò)程中,觀(guān)察到有8-oxo-dG形成,在6 h時(shí)達(dá)到最高,其后伴隨損傷的修復(fù)而下降,這表明誘導(dǎo)ROS氧化是微囊藻毒素?fù)p傷DNA的一種方式。
Zegura等[29]在以HepG2細(xì)胞為材料的研究中發(fā)現(xiàn),微囊藻毒素-LR能誘導(dǎo)嘧啶和嘌呤的氧化。在細(xì)胞暴露于微囊藻毒素-LR 8 h后,氧化嘧啶開(kāi)始修復(fù),但氧化嘌呤并未同時(shí)得到修復(fù),嘌呤的氧化損傷就累積了下來(lái)。如果在DNA復(fù)制之前沒(méi)有修復(fù)氧化損傷,嘌呤的氧化就會(huì)導(dǎo)致DNA中的GC→TA轉(zhuǎn)化突變。微囊藻毒素-LR誘導(dǎo)的DNA突變可以通過(guò)許多ROS清除劑避免(TEMPOL、DMSO、DFO、DMTU等),進(jìn)一步說(shuō)明微囊藻毒素-LR是通過(guò)誘導(dǎo)ROS產(chǎn)生而表達(dá)其遺傳毒性的[18]。
1.4.2 改變細(xì)胞核形態(tài)和損傷DNA結(jié)構(gòu)
許多研究證明,微囊藻毒素不僅直接影響細(xì)胞核的形態(tài),如暴露于微囊藻毒素-LR的斑馬魚(yú)肝臟細(xì)胞,細(xì)胞核產(chǎn)生蜂窩狀結(jié)構(gòu)[29],還使染毒細(xì)胞內(nèi)形成微核、多核、大核等現(xiàn)象[30]。
微囊藻毒素誘導(dǎo)產(chǎn)生的ROS,同樣作用于DNA結(jié)構(gòu)。Repavich等[31]發(fā)現(xiàn),野外藍(lán)藻樣品中提取的凈化毒素能誘導(dǎo)人體淋巴細(xì)胞染色體斷裂,并呈劑量相關(guān)性。Lankoff等[32]則報(bào)道了純微囊藻毒素-LR導(dǎo)致人體血淋巴細(xì)胞的凋亡和DNA鏈斷裂現(xiàn)象。
1.4.3 抑制DNA修復(fù)
除了直接損傷DNA,微囊藻毒素還會(huì)抑制DNA修復(fù)過(guò)程,進(jìn)一步增強(qiáng)促突變、促癌效果。微囊藻毒素的非同源性末端連接(NHEJ)抑制性,使其可以同時(shí)影響核苷酸切除(NER) 和DNA雙鏈斷裂(DSB)2種修復(fù)過(guò)程。當(dāng)DNA修復(fù)進(jìn)程有缺陷,或者DNA修復(fù)以易于出錯(cuò)的方式進(jìn)行時(shí),受損DNA就容易產(chǎn)生突變,最終導(dǎo)致細(xì)胞癌變[33]。
Lankoff等[34]在聯(lián)合微囊藻毒素-LR與紫外誘變的實(shí)驗(yàn)中,首次發(fā)現(xiàn)微囊藻毒素-LR會(huì)削弱NER效果。實(shí)驗(yàn)使用的中國(guó)倉(cāng)鼠卵巢細(xì)胞首先經(jīng)微囊藻毒素-LR的預(yù)處理,隨后暴露于紫外輻射下(25 J·m-2),結(jié)果顯示,用微囊藻毒素-LR處理過(guò)的細(xì)胞的DNA損傷遠(yuǎn)高于僅用紫外照射的細(xì)胞,研究者認(rèn)為是微囊藻毒素-LR抑制了NER過(guò)程中的剪切階段和再鏈接階段。Lankoff[35]在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中再次驗(yàn)證了這一結(jié)論,并探索了這一抑制過(guò)程的機(jī)理:DNA依賴(lài)蛋白激酶(DNA-PK)是NHEJ過(guò)程中的關(guān)鍵酶,微囊藻毒素-LR正是通過(guò)抑制DNA-PK活性影響NHEJ。實(shí)驗(yàn)中還觀(guān)察到了對(duì)DNA鏈斷裂修復(fù)和染色體畸變修復(fù)的抑制現(xiàn)象。
在研究微囊藻毒素致毒機(jī)理的同時(shí),多國(guó)衛(wèi)生部門(mén)及WHO都進(jìn)行了針對(duì)微囊藻毒素的健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估工作,以明確其毒性、暴露程度與人體健康效應(yīng)的關(guān)系,為實(shí)施環(huán)境管理提供依據(jù)。健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估一般有4個(gè)步驟(美國(guó)環(huán)保局(EPA)的NAS四步法):危害鑒定、暴露評(píng)價(jià)、劑量反應(yīng)關(guān)系評(píng)價(jià)、危險(xiǎn)特征分析。現(xiàn)有的研究主要也多是從這四個(gè)角度展開(kāi)的。
對(duì)微囊藻毒素危害鑒定經(jīng)歷了一個(gè)較大的轉(zhuǎn)折。早期學(xué)者普遍認(rèn)為微囊藻毒素是一種急性肝毒素,并且有通過(guò)皮膚接觸對(duì)人體造成刺激性損傷的能力。后續(xù)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,微囊藻毒素對(duì)腎[36]、腦[37]等器官有慢性毒害作用,并會(huì)影響呼吸[38]、生殖系統(tǒng)[39]。同時(shí),流行病學(xué)研究與動(dòng)物實(shí)驗(yàn)都證明微囊藻毒素有致、促癌作用,并可引發(fā)基因突變。2010年,國(guó)際癌癥研究機(jī)構(gòu)(IARC)依據(jù)微囊藻毒素對(duì)人體的潛在致癌力將其分入“可能的人類(lèi)致癌物”組(Group 2B)[40]。當(dāng)前,學(xué)者對(duì)微囊藻毒素致毒方式研究主要集中在其對(duì)人體全系統(tǒng)損傷能力[41]、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的機(jī)理[42]以及致癌致突變的機(jī)理[43]等幾個(gè)方面。
表1 藻毒素暴露途徑及暴露特征 Table 1 The exposure pathways of microcystin
微囊藻毒素進(jìn)入人體的主要途徑是通過(guò)飲水,少部分是在工作、娛樂(lè)活動(dòng)中經(jīng)口、皮膚接觸,同時(shí),微囊藻毒素通過(guò)食物鏈以及藍(lán)藻類(lèi)保健品(BGAS)損害人體的事件也有報(bào)道。此外,還有一種特殊的暴露方式——通過(guò)血液透析直接進(jìn)入透析患者體內(nèi)。
對(duì)微囊藻毒素暴露的研究目前集中于環(huán)境、氣候?qū)ψ匀凰w中毒素分泌、變化的影響[47],微囊藻毒素通過(guò)食物鏈對(duì)人體健康的影響[48],以及快速鑒定、檢測(cè)自然水體中微囊藻毒素組分、濃度的方法[49]等方面。
確立劑量反應(yīng)關(guān)系是健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估工作中最重要的一步,一般是通過(guò)流行病學(xué)或動(dòng)物實(shí)驗(yàn)得出污染物的劑量反應(yīng)曲線(xiàn),確定不致引起有害健康效應(yīng)的最高劑量(NOAEL),并經(jīng)過(guò)推算得出日容許攝入量(TDI)及指導(dǎo)值(GV),通常低于TDI和GV的暴露劑量產(chǎn)生有害效應(yīng)的可能性很小,因此這些標(biāo)準(zhǔn)可用作環(huán)境管理的依據(jù)。
1998年,WHO采納了Fawell等為期13周的小白鼠微囊藻毒素-LR毒性試驗(yàn)得出的NOAEL(40 μg·kg-1),最終得出TDI為0.04 μg·kg-1,飲用水中微囊藻毒素質(zhì)量濃度指導(dǎo)值為1 μg·L-1[6]。
UF:不確定系數(shù)(種內(nèi)差異10、種間差異10、數(shù)據(jù)庫(kù)限制性10)。
bw: 國(guó)際成人體質(zhì)量(60或70 kg);AF: 分配系數(shù);C: 日常暴露量。
WHO對(duì)微囊藻毒素的評(píng)估是基于考察其對(duì)肝臟的慢性損害,其急性毒害閾值則大許多。Kotak[50]考察微囊藻毒素在單次腹腔注射情況下對(duì)肝的急性毒性效果實(shí)驗(yàn)中,得出NOAEL為25 μg·kg-1,推算TDI為2.5 μg·kg-1(UF取10)。
危險(xiǎn)特征分析的主要內(nèi)容是根據(jù)劑量反應(yīng)關(guān)系所得指導(dǎo)值,針對(duì)具體暴露人群,分析、判斷其發(fā)生危害可能性的大小。也有學(xué)者根據(jù)EPA推薦的人體暴露評(píng)價(jià)的標(biāo)準(zhǔn)值[51]計(jì)算各種暴露方式的人體可耐受值,如Dietrich[52]提出在飲用水與受污染食物多重暴露情況下的微囊藻毒素參考標(biāo)準(zhǔn)(表2);另外,還提出了在多種典型環(huán)境下,避免急性毒害效果的暴露極限(表3)。
表2 復(fù)合暴露情景下微囊藻毒素-LR的參考標(biāo)準(zhǔn) Table 2 Daily tolerable total microcystin-LR exposure based on two different TDIs, concurrent calculations of guideline values for food and water
表3 避免急性毒害的環(huán)境暴露極限 Table 3 Calculated possible daily ingestion to avoid acute health problems
對(duì)微囊藻毒素的致毒機(jī)理,包括直接致細(xì)胞壞死、凋亡和誘導(dǎo)細(xì)胞癌變、突變等方面目前已得出了許多成果,但同時(shí)還有許多問(wèn)題需要進(jìn)一步研究:
(1)微囊藻毒素致毒的分子機(jī)制,誘導(dǎo)ROS生成的過(guò)程;
(2)微囊藻毒素為何會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞凋亡與癌變2種相反的結(jié)果,2種現(xiàn)象發(fā)生的對(duì)應(yīng)條件是什么;
(3)誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡和DNA裂解2種現(xiàn)象有無(wú)關(guān)聯(lián),還是2個(gè)獨(dú)立的過(guò)程;
(4)不同類(lèi)型微囊藻毒素的復(fù)合作用是否會(huì)增加其毒性,藍(lán)藻粗提取物中能提高微囊藻毒素毒性的物質(zhì)是什么;
(5)微囊藻毒素的毒代動(dòng)力學(xué),不同類(lèi)型微囊藻毒素在生物體中代謝有何差異,代謝產(chǎn)物是否對(duì)其他器官有毒性。
對(duì)微囊藻毒素致毒機(jī)理的研究,一方面是為了治療藻毒素的生理毒害提供依據(jù),另一方面是為藻毒素的人體健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)價(jià)提供依據(jù)和標(biāo)準(zhǔn)。目前在微囊藻毒素人體健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估中,指標(biāo)選擇和標(biāo)準(zhǔn)確定等方面,還存在許多有待討論的問(wèn)題:
(1)目前的評(píng)估都依賴(lài)于流行病學(xué)以及動(dòng)物毒理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),而無(wú)論數(shù)據(jù)的產(chǎn)生還是向人體情景推導(dǎo)的過(guò)程都會(huì)增加評(píng)估結(jié)果的不確定性。這是因?yàn)榱餍胁W(xué)無(wú)法確保微囊藻毒素是影響人體健康的單一因素;同時(shí),動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的暴露情景與人現(xiàn)實(shí)中的暴露途徑有很大差異,而這種差異會(huì)嚴(yán)重影響微囊藻毒素的毒性效果。
(2)有實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),相同毒素劑量下,水華浮沫中提取的物質(zhì)比純微囊藻毒素的毒性更強(qiáng),一般認(rèn)為這是由于混合提取物中有協(xié)助微囊藻毒素進(jìn)入生物的物質(zhì),增強(qiáng)微囊藻毒素的生物利用率。因此,通過(guò)純毒素得出毒性評(píng)估結(jié)果往往低于實(shí)際的暴露情景。
(3)目前評(píng)估中重要指標(biāo)NOAEL的推導(dǎo)過(guò)程中,只考察了肝的病理變化以及相關(guān)酶的活性,僅適用于肝的慢性損傷及癌前病變,未考慮微囊藻毒素的致癌、致突變風(fēng)險(xiǎn)。目前有證據(jù)表明,微囊藻毒素是強(qiáng)效的促癌物質(zhì),潛在的癌癥誘導(dǎo)物質(zhì)可引發(fā)細(xì)胞內(nèi)DNA斷裂,基因突變,這提示在評(píng)估微囊藻毒素毒性是必須考慮其基因毒性,如Duy[53]在計(jì)算微囊藻毒素的TDI時(shí)就將UF定為3 000(因促癌性增加系數(shù)3)。但這僅是在外推過(guò)程中的調(diào)整,實(shí)際工作中還需進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn),確定微囊藻毒素在長(zhǎng)期甚至終生暴露下不會(huì)導(dǎo)致癌癥的安全閾值。另外,NOAEL的推導(dǎo)只考慮了微囊藻毒素對(duì)小白鼠肝臟的毒性,并未涉及其他器官。而許多現(xiàn)有文獻(xiàn)都證明微囊藻毒素對(duì)腎臟、心臟等器官以及生殖系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)等系統(tǒng)有損傷作用,因此需要進(jìn)一步研究微囊藻毒素對(duì)人體全系統(tǒng)的毒害效果,以得出微囊藻毒素真實(shí)的無(wú)健康風(fēng)險(xiǎn)劑量。
(4)現(xiàn)有毒理數(shù)據(jù)仍局限于幾種微囊藻毒素的同系物,特別是微囊藻毒素-LR,評(píng)估工作也僅就微囊藻毒素-LR展開(kāi),而現(xiàn)實(shí)環(huán)境中存在80余種類(lèi)型的微囊藻毒素。不同類(lèi)型毒素的毒性常有較大差異,這就使復(fù)雜混合情況下的毒性水平難以評(píng)估。Wolf[54]提出了建立藻毒素等效毒性框架(toxicity equivalent factor, TEF)的方案,為常見(jiàn)微囊藻毒素以及節(jié)球藻毒素賦以相應(yīng)的 TEF值,在實(shí)際操作用疊加以評(píng)估毒性。然而,TEF的建立是基于不同毒素的LD50數(shù)據(jù),而非根據(jù)可靠的器官解剖實(shí)驗(yàn),這就削弱它的有效性。另外,復(fù)合毒素的毒性能否直接線(xiàn)性疊加也是一個(gè)問(wèn)題。因此,需要建立一種更為有效的方法評(píng)估復(fù)合毒素的健康風(fēng)險(xiǎn)。
(5)現(xiàn)有的健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估體系是基于慢性暴露情景,而急性事件的評(píng)估卻沒(méi)有得到應(yīng)有的重視。自然水體中,藻毒素的濃度常隨水華爆發(fā)而呈周期性變化,因而人群常是在一年的某一個(gè)時(shí)間才面臨較高微囊藻毒素健康風(fēng)險(xiǎn)。在這個(gè)時(shí)間點(diǎn),為預(yù)防突發(fā)急性中毒事故就需要建立有效、快速的評(píng)估手段,并確定適宜急性情景的環(huán)境標(biāo)準(zhǔn),避免在采用現(xiàn)有由慢性實(shí)驗(yàn)得出的較嚴(yán)苛的標(biāo)準(zhǔn)。
微囊藻毒素作為一種廣泛存在的強(qiáng)效毒素,得到了科學(xué)界與衛(wèi)生管理部門(mén)的重視,已有的毒理學(xué)研究以及人體健康影響評(píng)估工作為保護(hù)人體健康,管理水體污染提供許多有意義的理論依據(jù)。然而,許多信息表明,現(xiàn)有的微囊藻毒素指導(dǎo)值可能顯著超出了實(shí)際的安全閾值,這與毒理研究及健康評(píng)估的不足都有密切的關(guān)系。種種現(xiàn)象似乎提示我們,過(guò)去的研究方法、評(píng)估手段已有明顯不足,需要開(kāi)拓新的方法用以研究微囊藻毒素在細(xì)胞水平的致毒機(jī)理,評(píng)估自然水體中微囊藻毒素的毒性。
微生物目前已被廣泛用于污染物的研究、評(píng)估工作中,它既可避免活體動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中不同暴露方式的干擾,也不會(huì)有離體細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中細(xì)胞功能單一化的缺陷。以微生物作為材料研究微囊藻毒素毒理的手段有著廣闊的前景,同時(shí)微生物作為生物傳感器來(lái)評(píng)估微囊藻毒素的人體健康風(fēng)險(xiǎn)有快速、低成本、低風(fēng)險(xiǎn)的優(yōu)點(diǎn)。因此,建立以微生物為基礎(chǔ)的微囊藻毒素研究方案,可為現(xiàn)有研究體系的不足提供新的思路和新的成果。
[1] FRANCIS G. Poisonous Australialake[J]. Nature,1878,18: 11-12.
[2] SYKORA J L, KELETI G. Cyanobacteria and endotoxins in drinking water supplies[M]. CARMICHAEL W W. The Water environment:Algal Toxins and Health. New York: Plenum Press, 1981: 285-302.
[3] POURIA S, DE ANDRADE A, BARBOSA,et al. Fatal microcystin intoxication in haemodialysis unit in Caruaru, Brazil[J]. Lancet, 1998,352 (9121): 21-26.
[4] FALCONER I. Tumor promotion and liver-injury caused by oral consumption of cyanobacteria[J]. Environmental Toxicology and Water Quality, 1991, 6 (2):177-184.
[5] 俞順章, 趙寧, 資曉林, 等. 飲水中微囊藻毒素與我國(guó)原發(fā)性肝癌關(guān)系的研究[J]. 中華腫瘤雜志, 2001, 23(2): 96-99.
[6] WORLD HEALTH ORGANIZATION. Cyanobacterial toxins: microcystin-LR:Guidelines for drinking-water quality. Geneva: WHO, 1998: 95-110.
[7] MACIASSILVA M, GARCIASAINZ J A. Inhibition of hormone-stimulated inositol phosphate production and disruption of cytoskeletal structure: effects of okadaic acid, microcystin, chlorpromazine, w7 and nystatin[J]. Toxicon, 1994, 32(1):105-112.
[8] MIURA G A. Hepatotoxicity of microcystin-LR in fed fasted rates[J]. Toxicon, 1991, 29(3): 337-346.
[9] DING W X. Studies on oxidative damage induced by cyanobacteria extract in primary cultured rat hepatocytes[J]. Environmental research, 1998, 78(1): 12-18.
[10] PAULINA S, BOZENA B, JAROMIR M, et al. Damage of cell membrane and antioxidative system in human erythrocytes indubated with microcystin-LR[J]. Toxicon, 2006, 47(4): 387-397.
[11] TOIVOLA D M, GOLDMAN R D, GARROD D R, et al. Protein phosphatases maintain the organization and structural interactions of hepatic keratin intermediate filaments[J]. Cell Science, 1997, 110(Pt 1): 23-33.
[12] GACSI M, ANTAL O, VASAS G, et al. Comparative study of cyanotoxins affecting cytoskeletal and chromatin structures in CHO-K1 cells[J]. Toxicol in Vitro, 2009, 23(4): 710-718.
[13] ZHANG D W, XIE P, LIU Y Q, et al. Transfer, distribution and bioaccumulation of microcystins in the aquatic food web in LakeTaihu, China, with potential risks to human health[J]. Science of the Total Environment, 2009, 407: 2191-2199.
[14] LU H, CHOUDHURI S. Characterization of organic anion transporting polypeptide 1b2-null mice: essential role in hepatic Uptake/toxicity of phalloidin and microcystin-LR[J]. Toxicological Sciences, 2008, 103(1): 35-45 .
[15] FISCHER W J, ALTHEIMER S. Organic anion transporting poly-peptides expressed in liver and brain mediate uptake of microcystin[J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2005, 203: 257-263.
[16] 趙衛(wèi)紅, 壽好長(zhǎng), 閆福嶺, 等. 細(xì)胞凋亡[M]. 鄭州: 河南醫(yī)科大學(xué)出版社, 1997.
[17] MILUTINOVIC A, ZIVIN M. Nephrotoxic effects of chronic administration of microcystins-LR and-YR[J]. Toxicon, 2003, 42: 281-288.
[18] ZEGURA B, LAH T T, FILIPIC M.The role of reactive oxygen species in microcystin-LR-induced DNA damage[J]. Toxicology, 2004(1): 59-68.
[19] AON M A, CORTASSA S, MAACK C,et al. Sequential opening of mitochondrial ion channels as a function of glutathione redox thiol status[J]. Journal of Biological Chemistry, 2007, 282: 21889-21900.
[20] ALVERCA E, ANDRADE M, DIAS E. Morphological and ultra-structural effects of microcystin-LR from microcystis aeruginosa extract on a kidney cell line[J]. Toxicon, 2009, 54: 283-294.
[21] FU W Y, CHEN J P, WANG X M, et al. Altered expression of p53, Bcl-2 and bax induced by microcystin-LR in vivo and in vitro[J]. Toxicon,2005,46(2):171-177.
[22] BOSSY W, GREEN D R. Apoptosis: checkpoint at the mitochondrial frontier[J]. Mutation Research/DNA Repair, 1999,434(3): 243-251.
[23] SUEOKA E, SUEOKA N, OKABE S,et al. Expression of the tumor necrosis factor alpha gene and early response genes by nodularin,a liver tumor promoter,in primary cultured rat hepatocytes[J]. Journal of Cancer Research and Clinical Oncology, 1997, 123(8):413-419.
[24] LI H, XIE P, LI G, et al. In vivo study on the effects of microcystin extracts on the expression profiles of proto-oncogenes (c-fos, c-jun and c-myc) in liver, kidney and testis ofmaleWistar rats injected i.v.with toxins[J].Toxicon, 2009, 53:169-175.
[25] FUJIKI H, SUGANUMA M. Unique features of the okadaic acid activity class of tumor promoters[J]. Journal of Cancer Research and Clinical Oncology, 1999, 125:150-155.
[26] TOIVOLA D M, ERIKSSON J E. Toxins affecting cell signaling and alteration of cytoskeletal structure[J]. Toxicol in Vitro 1999, 13(4/5): 521-530.
[27] BOUAICHA N, MAATOUK I. Microcystin-LR and nodularin induce intracellular glutathione alteration, reactive oxygen species production and lipid peroxidation in primary cultured rat hepatocytes[J]. Toxicol Letters, 2004, 148(1/2):53-63.
[28] MAATOUK N, BOUAD I, PLESSIS M J,et al. Detection by 32P-postlabelling of 8-oxo-7 8-dihydro-20-deoxyguanosine in DNA as biomarker of microcystin-LR and nodularin-induced DNA damage in vitro in primary cultured rat hepatocytes and in vivo in rat liver[J]. Mutation Research, Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 2004, 564 (1):9-20.
[29] ZHAN L, SAKAMOTO H, SAKURABA M,et al. Genotoxicity of microcystin-LR in human lymphoblastoid TK6 cells[J]. Mutation Research, Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 2004, 557(1): 1-6.
[30] ZEGURA B, SEDMAK B, FILIPIC M. Microcystin-LR induces oxidative DNA damage in human hepatoma cell line HepG2[J]. Toxicon, 2003, 41(1): 41-48.
[31] REPAVICH W M, SONZOGNI W C, STANDRIDGE J H,et al. Cyanobacteria (blue-green algae) in Wisconsin waters:-acute and chronic toxicity[J]. Water Research, 1990, 24(2):225-231.
[32] LANKOFF A, KRZOWSKI L, GLABET L, et al. DNA damage and repair in human peripheral blood lymphocytes following treatment with microcystin-LR[J]. Mutation Research, Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 2004, 559(1/2):131-142.
[33] ISHIKAWA T, ZHANG S S, QIN X,et al. DNA repair and cancer: lessons from mutant mouse models[J]. Cancer Science, 2004, 95(2): 112-117.
[34] LANKOFF A, BIALCZYK J, DZIGA D,et al. Inhibition of nucleotide excision repair (NER) by microcystin-LR in CHO-K1 cells[J]. Toxicon, 2006, 48(8):957-965.
[35] LANKOFF A, BIALCZYK J, DZIGA D,et al. The repair of gamma-radiation-induced DNA damage is inhibited by microcystin-LR, the PP1 and PP2A phosphatase inhibitor[J]. Mutagenesis, 2006, 21(1): 83-90.
[36] ALVERCA E, ANDRADE M, DIAS E. Morphological and ultra-structural effects of microcystin-LR from microcystis aeruginosa extract on a kidney cell line[J]. Toxicon, 2009, 54(3):283-294.
[37] FEURSTEIN D. Oatp-associated uptake and toxicity if microcystins in primary murine whole brain cells[J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2009, 234(2):247-255.
[38] SOARES R M,CAGIDO V R,FERRARO R B. Effects of microcystin-LR on mouse lungs[J]. Toxicon, 2007,50(3):330-338.
[39] LANCE E, ALONZO F, TANGUY M,et al. Impact of microcystin-producing cyanobacteria on reproductive success of Lymnaea stagnalis (Gastropoda, Pulmonata) and predicted consequences at the population level[J]. Ecotoxicology, 2011, 20(4): 719-730.
[40] IARC Monographs on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans. Ingested Nitrate and Nitrite and Cyanobacterial Peptide Toxins[M]// IARC Monographs.[S.l.]:WHO Press,2010.
[41] QIU T, XIE P. The profound effects of microcystin on cardiac antioxidant enzymes, mitochondrial function and cardiac toxicity in rat[J]. Toxicology, 2009, 257:86-94.
[42] BRZUZAN P, WOZNY M, CIESIELSKI S,et al. Microcystin-LR induced apoptosis and mRNA expression of p53 and cdkn1a in liver of whitefish (Coregonus lavaretus L.)[J]. Toxicon, 2009, 54(2):170-183.
[43] ZEGURA B, VOLCIC M, LAH T,et al. Different sensitivities of human colon adenocarcinoma(Caco-2), astrocytoma(IPDDC-A2) and lymphoblastoid(NCNC) cell lines to Microcystin-LR induced reactive oxygen species and DNA damage[J]. Toxicon, 2009, 52(3):518-525.
[44] XIE L Q, XIE P, GUO L G,et al. Organ distribution and bioaccumulation of microcystins in freshwater fish at different trophic levels from the eutrophic Lake Chaohu, China[J]. Environmental Toxicology, 2005, 20(3):293-300.
[45] DIETRICH D R, ERNST B, DAY B W. Human consumer death and algal supplement consumption: a post mortem assessment of potential microcystin-intoxication via microcystin immunohistochemial (MC-ICTC) analisyes[C]. 7th International Conference on Toxic Cyanobacteria(ICTIC). Brazil:[s.n.],2007:132.
[46] TURNER P C, GAMMIE A J, HOLLINRAKE K,et al. Pneumonia associated with contact with cyanobacteria[J]. British Medical Journal, 1990, 300(6737):1440-1441.
[47] PAERL H W, PAUL V J. Climate change: Links to global expansion of harmful cyanobacteria[J]. Water Research, 2010, 46(5):1349-1363.
[48] ROMO S, FERNANDEZ F, OUAHID Y,et al. Assessment of microcystins in lake water and fish (Mugilidae, Liza sp.) in the largest Spanish coastal lake[J]. Environmental monitoring and assessment, 2012, 184(2): 939-949.
[49] MANGANELLI M,SCARDALA S,STEFANELLI M,et al. Health risk evaluation associated to Planktothrix rubescens: an integrated approach to design tailored monitoring programs for human exposure to cyanotoxins[J]. Water Research, 2010, 44(5):1297-1306.
[50] KOTAK B G, KENEFICK S L, FRITZ D L. Occurrence and toxicological evaluation of cyanobacterial toxins in Albetra lakes and farm dugouts[J]. Water Research, 1993, 27(3):495-506.
[51] U.S.EPA. Exposure Factor Handbood:office of health and environmental assessments, EPA No.600/8-8-89/043[R]. [S.l.]: EPA, 1989.
[52] DIETRICH D, HOEGER S. Guidance values for microcystins in water and cyanobacterial supplement products (blue-green algal supplements): a reasonable or misguided approach?[J]. Toxicology and applied pharmacology, 2005, 203(3):273-289.
[53] DUY T N, LAM P K, SHAW G R, et al. Toxicology and risk assessment of freshwater cyanobacterial (blue-green algal) toxins in water[J]. Reviews of environmental contamination and toxicology, 2000, 163:113-185.
[54] WOLF H U, FRANK C. Toxicity assessment of cyanobacterial toxin mixtures[J]. Environmental Toxicology, 2002, 17(4):395-399.
生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào)2013年2期