張曜武,馮雪
(青島科技大學(xué) 化工學(xué)院,山東 青島 266042)
松科植物紅松(Pinus koraiensis Sieb.et Zucc)松塔中含有萜類及多糖等多種重要天然成分[1],藥理研究結(jié)果顯示松塔多糖具有調(diào)節(jié)免疫機(jī)能、抑制腫瘤以及抗氧化、抗菌等諸多功效[2],具有良好的應(yīng)用前景。
與水提醇沉法等多糖制備的傳統(tǒng)方法相比,膜分離制備技術(shù)具有許多明顯優(yōu)勢[3],本研究中嘗試將膜分離技術(shù)用于紅松松塔多糖制備,文獻(xiàn)中尚未見有同類工作報(bào)道。實(shí)驗(yàn)中重點(diǎn)考察了微濾過程中料液溫度、操作壓力和料液濃度等對膜通量的影響,并通過正交實(shí)驗(yàn)確定了最佳微濾條件;由于多糖的不同分子量組分常呈現(xiàn)不同活性[4],因此本實(shí)驗(yàn)中還采用了不同截留分子量的超濾膜對紅松松塔多糖進(jìn)行分級制備,獲得了不同分子量的紅松松塔多糖,及其分子量分布的大致規(guī)律,以期為后續(xù)活性研究和工業(yè)化開發(fā)提供參考。
紅松松塔(產(chǎn)地:東北地區(qū))、酚酞指示液、氫氧化鈉、硫酸、苯酚、亞硫酸鈉、酒石酸鉀鈉、3,5-二硝基水楊酸、鹽酸(以上試劑均為分析純)。
FA1004N型電子天平(上海精密科學(xué)儀器有限公司),SHZ-III式循環(huán)水真空泵(上海亞榮生化儀器廠),TGT-16C型臺式高速離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠),RE-52型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠),LD-800粉碎機(jī)(長沙市岳麓區(qū)常宏制藥機(jī)械設(shè)備廠),電熱鼓風(fēng)干燥箱(天津市泰斯特儀器有限公司),0.2μm中空纖維微濾膜(天津膜天膜科技股份有限公司),截留分子量分別為6kDa、10kDa、50 kDa、100kDa的中空纖維超濾膜(天津膜天膜科技股份有限公司)。
本實(shí)驗(yàn)采用DNS比色法進(jìn)行紅松松塔多糖含量測定。
2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
取105℃恒重過的葡萄糖50mg,加適量水溶解,轉(zhuǎn)移至100mL容量瓶中,稀釋,搖勻,定容,即得葡萄糖對照品溶液(0.5mg/mL)。精密量取0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0、1.1mL 的 葡 萄 糖對照品溶液放入10mL具塞試管中,加水使成2mL,分別精密加入DNS顯色液2.5mL混勻,在沸水浴中加熱7min,取出,立即用流冷卻至室溫,加水3mL搖勻,用相應(yīng)試劑做空白,在490nm測吸光度。以葡萄糖濃度(mg/mL)為橫坐標(biāo)(濃度0.0000~0.06667mg/mL),以吸光度為縱坐標(biāo)繪制490nm標(biāo)準(zhǔn)曲線、得出回歸方程標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。滴,用40%氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)至微紅色,轉(zhuǎn)移至50mL容量瓶中,定容即得。
圖1 DNS法標(biāo)準(zhǔn)曲線
(2)單糖溶液的制備。精密量取經(jīng)過超濾處理的截留液5mL,置于10mL容量瓶中,加酚酞指示液1滴,搖勻,用1%氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)至微紅色,稀釋、定容即得。
(3)含量測定。取總糖溶液、單糖溶液各2mL,分別精密加入DNS顯色液2.5mL混勻,在沸水浴中加熱7min后,立即用流水冷卻至室溫,加水3mL搖勻,用相應(yīng)的試劑做空白,在490nm測吸收度A。多糖含量計(jì)算公式如下:
式中:n1、n2分別為各自的稀釋倍數(shù)。
紅松松塔多糖制備工藝見圖2。首先經(jīng)過濾等預(yù)處理步驟除去提取液中塵埃、粗纖維等雜質(zhì),隨后微濾除去膠質(zhì)等大分子物質(zhì),得到含紅松松塔多糖的微濾滲出液,再經(jīng)超濾除去其中的小分子物質(zhì),所得截留液即為濃縮的多糖提取液。膜分離過程中,按照公式J=V/(S·t)計(jì)算膜通量,其中t為膜分離時間,h;J為膜通量,L/m2·h;V為t時間內(nèi)透過液的體積,L;S為有效膜面積,m2。
圖2 紅松松塔多糖制備工藝路線
2.2.1 影響微濾效果的主要因素考察
(1)料液濃度對膜通量的影響。在0.08MPa、常溫條件下,將不同濃度的紅松松塔提取液進(jìn)行微濾處理,料液濃度對膜通量的影響見圖3。
圖3 料液濃度對膜通量的影響
2.1.2 紅松松塔多糖樣品含量測定
(1)總糖溶液的制備。取經(jīng)過超濾處理的截留液2.5mL,加水2.5mL、6mol/L鹽酸溶液15mL,在沸水浴中加熱30min,用流水冷卻后加酚酞指示液1
由圖3可知,隨著初始料液濃度的增大,膜通量減小。這是因?yàn)殡S著初始料液濃度的增大,料液粘度增大,導(dǎo)致濃差極化嚴(yán)重;此外,初始料液濃度增大,溶質(zhì)吸附在膜表面,阻塞膜孔,造成通量下降。
(2)操作壓力對膜通量的影響。常溫下對20g/L的紅松松塔多糖提取液進(jìn)行微濾,壓力對膜通量的影響見圖4。
圖4 壓力對膜通量的影響
由圖4可知,隨著壓力的增大,膜通量顯著增大。這是因?yàn)閴毫υ龃笫沟萌芤和ㄟ^濾膜的推動力增大。壓力繼續(xù)增大,濃差極化嚴(yán)重,使有效的傳質(zhì)推動力下降導(dǎo)致膜通量增長變緩。
(3)料液溫度對膜通量的影響。在0.08MPa,對20g/L的紅松松塔提取液進(jìn)行微濾,料液溫度對膜通量的影響見圖5。
圖5 料液溫度對膜通量的影響
由圖5可知,在一定范圍內(nèi),膜通量隨溫度的升高而呈上升趨勢。這是因?yàn)樯邷囟瓤墒谷芤赫扯认陆?、擴(kuò)散系數(shù)增大,而濃差極化減小,故膜通量增大。當(dāng)溫度升高到一定程度后,膜通量增加趨勢趨于平緩,且溫度過高還會導(dǎo)致濾膜性能和溶液理化性質(zhì)的改變。
2.2.2 正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)選微濾工藝
采用正交實(shí)驗(yàn)考察料液溫度t、操作壓力MPa、料液濃度C 3個因素對膜通量的影響,每個因素取3個水平,因素水平見表1。本研究選擇L9(34)表,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
表1 微濾因素水平表
表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果
由表2可知,微濾最佳條件為A3B1C3,即料液溫度40℃、料液濃度25g/L、操作壓力0.10MPa。由極差可以得出結(jié)論:影響微濾膜通量的主要因素中,操作壓力對膜通量的影響最大,其次為料液濃度,料液溫度對膜通量影響最小。
2.2.3 工藝驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)
按工藝條件A3B1C3進(jìn)行3組重復(fù)實(shí)驗(yàn),結(jié)果見圖6。
圖6 微濾過程膜通量變化曲線
由圖6可知,該三組實(shí)驗(yàn)中膜通量理想,只有小幅度下降,說明該優(yōu)化方案合理、可行。
2.3.1 紅松松塔總多糖的制備
將微濾滲出液經(jīng)截留分子量為6kDa的超濾膜進(jìn)行分離,所得濃縮液經(jīng)減壓蒸發(fā)得到總多糖固形物,測定其中總多糖含量,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表3。
表3 超濾前后總多糖含量對比
由表3可知,超濾純化后的樣品中多糖含量提高了約4倍,純化效果明顯。
2.3.2 不同分子量紅松松塔多糖的制備
在0.10MPa、常溫條件下選用截留分子量分別為100kDa、50kDa、10kDa、6kDa的超濾膜對上述微濾透過液依次進(jìn)行超濾分離,得到分子量>10萬、5萬~10萬、1萬~5萬、6000~1萬等4段不同組分,測定各段的多糖含量,得出紅松松塔多糖分子量分布結(jié)果,見圖7。
圖7 紅松多糖分子量分布
由圖7可知,分子量>10萬的組分占紅松松塔總多糖的9.5%,5萬~10萬之間的占70.2%,1萬~5萬之間的占3.2%,6000~1萬的占17.1%。
以上實(shí)結(jié)果表明,微濾過程的適宜操作條件為:料液濃度25g/L、操作壓力0.10MPa、料液溫度40℃,其中影響膜通量的主要因素為操作壓力,其次是料液濃度和溫度。微濾滲出液再經(jīng)截留分子量為6kDa的超濾膜純化后,多糖含量可由7.20%,提高到35.16%,純化效果顯著。
本實(shí)驗(yàn)中還測得紅松松塔多糖分子量分布如下:分子量>10萬的占9.5%,5萬~10萬之間的占70.2%,1萬~5萬之間的占3.2%,6000~1萬的占17.1%,這些不同分子量的各組分樣品正在進(jìn)行后續(xù)活性研究。
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