葛平華, 馬桂珍, 付泓潤(rùn), 暴增海, 王淑芳, 劉兆普
(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,江蘇海洋生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210095;2.淮海工學(xué)院海洋學(xué)院,連云港 222005)
油菜菌核?。╮ape sclertiniose)是由子囊菌亞門(mén)真菌核盤(pán)菌[Sclerotinia sclerotiorum (Lib.)de Ba-ry]引起的世界性病害,是油菜生產(chǎn)中的重要病害之一,一般年份發(fā)病率高達(dá)10%~30%,嚴(yán)重的年份達(dá)80%以上[1-3],因此油菜菌核病的防治一直受到重視。目前油菜菌核病的防治主要依靠化學(xué)防治,但化學(xué)防治導(dǎo)致環(huán)境污染以及菌株抗藥性形成等問(wèn)題,限制了化學(xué)農(nóng)藥的使用。而生物防治可彌補(bǔ)化學(xué)防治的不足,日益受到人們的重視,多種有益微生物用于油菜菌核病的防治,取得了顯著的防治效果[4-6]。郭春燕等篩選得到一株海洋細(xì)菌Bacillus velezensis DM09,在離體試驗(yàn)中該菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病的防效達(dá)92.51%[7]。李國(guó)慶、姜道宏等深入研究了盾殼霉對(duì)油菜菌核病的防治作用,研究表明盾殼霉分生孢子能夠在油菜花瓣上定殖[8],并且盾殼霉可直接與復(fù)合肥混合使用,對(duì)油菜菌核病有明顯的抑制作用[9]。本試驗(yàn)從連云港海域海水中篩選得到1株對(duì)油菜菌核病菌拮抗作用較強(qiáng)的海洋細(xì)菌GM-1菌株,對(duì)該菌株進(jìn)行了種類(lèi)鑒定和抗菌作用研究,現(xiàn)將結(jié)果報(bào)道如下。
油菜菌核病菌(S.sclerotiorum)由本研究室保存并提供;GM-1菌株由本實(shí)驗(yàn)室從連云港海域海水中分離獲得。
取油菜田土,滅菌備用。供試油菜種子由種子公司購(gòu)買(mǎi)。
油菜菌核病菌培養(yǎng)和抑菌試驗(yàn)用PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200g,葡萄糖20g,瓊脂17g,蒸餾水1000mL;海洋細(xì)菌GM-1菌株培養(yǎng)用2216E培養(yǎng)基:蛋白胨5g、酵母粉1g、瓊脂15~20g、陳海水1000mL。油菜菌核病菌固體菌種培養(yǎng)基:麥麩與等量的PD培養(yǎng)液(馬鈴薯200g,葡萄糖20g,蒸餾水1000mL)混勻。
1.4.1 GM-1菌株形態(tài)特征觀察
將菌株GM-1接種于LB培養(yǎng)基平板上,28℃恒溫培養(yǎng)24h,觀察記錄菌落形態(tài),并進(jìn)行革蘭氏染色、芽胞染色、鞭毛染色。
1.4.2 生理生化試驗(yàn)
生理生化試驗(yàn)參考文獻(xiàn)[10]的方法,主要測(cè)定吲哚試驗(yàn)、M.R.試驗(yàn)、V.P.試驗(yàn)、硫化氫試驗(yàn)、石蕊牛奶試驗(yàn)、接觸酶試驗(yàn)、糖醇發(fā)酵試驗(yàn)、半固體瓊脂穿刺試驗(yàn)、好氧性和明膠液化等生理生化指標(biāo)。
1.4.3 16SrDNA序列的擴(kuò)增分析
GM-1菌株基因組DNA的提取參考Kingston等[11]的方法。
采用細(xì)菌16SrDNA基因通用引物27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和 1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)[12]。PCR 擴(kuò) 增條件為94℃預(yù)變性4min;94℃變性50s,53℃退火50s,72℃延伸1min30s,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10min。采用1.0%瓊脂糖對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測(cè)。將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)公司測(cè)序。經(jīng)測(cè)序獲得GM-1菌株16SrDNA序列提交NCBI數(shù)據(jù)庫(kù),應(yīng)用BLAST程序與數(shù)據(jù)庫(kù)中已有的細(xì)菌16SrDNA序列進(jìn)行相似性比較,采用MEGA5軟件包 Neighbour-joining(bootstrap1000)法進(jìn)行序列同源性分析,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
1.4.4 gyrB基因序列的擴(kuò)增分析
采 用 通 用 引 物 UP-1(5′-GAAGTCATCATGACCGTTCTGCAYGGNGGNAARTTYGA-3′)和 UP-2 (5′-AGCAGGCTACGGATGTGCGAGCCRTCNACRTCNGCKTCNGTCAT -3′)[13]進(jìn)行g(shù)yrB基因序列擴(kuò)增,擴(kuò)增條件為95℃預(yù)變性5min,94℃1min,60℃退火1min,72℃延伸2min,35個(gè)循環(huán),72℃10min[14]。擴(kuò)增產(chǎn)物送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)公司測(cè)序。應(yīng)用BLAST程序與數(shù)據(jù)庫(kù)中已有的細(xì)菌gyrB序列進(jìn)行相似性比較,采用MEGA5軟件包 Neighbour-joining(bootstrap1000)法進(jìn)行序列同源性分析,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
1.5.1 GM-1菌株對(duì)油菜菌核病菌菌核萌發(fā)的影響
選取大小基本一致的菌核,用0.1%升汞溶液(W/V)浸泡菌核1min、75%乙醇溶液(V/V)浸泡菌核3~4min進(jìn)行表面消毒,無(wú)菌水浸洗3~4次,用無(wú)菌濾紙吸干表面水分。將表面消毒的菌核在GM-1菌株菌液和無(wú)菌發(fā)酵液中浸泡24h,擺放在PDA平板上,每平板5粒菌核,共20個(gè)平板。28℃恒溫培養(yǎng),定期觀察菌核萌發(fā)情況,計(jì)算菌核萌發(fā)的抑制率。以無(wú)菌水處理為對(duì)照。
1.5.2 GM-1菌株及無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用
GM-1菌株對(duì)油菜菌核病菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用采用平板對(duì)峙法[15]。在PDA培養(yǎng)基平板中央接種直徑為8mm油菜菌核病菌菌苔,在菌苔周?chē)嚯x培養(yǎng)皿邊緣1.5cm處劃線接種GM-1菌株,于28℃倒置恒溫培養(yǎng),重復(fù)3次。5d后觀察油菜菌核病菌菌落生長(zhǎng)狀態(tài),測(cè)量菌落直徑,計(jì)算抑菌帶寬度;挑取抑菌圈交界處的菌絲,于顯微鏡下觀察菌絲細(xì)胞形態(tài),以正常菌絲為對(duì)照。
菌株GM-1無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用采用牛津杯法[16]。將油菜菌核病菌菌苔(8mm)接種在PDA平板中央,菌苔周?chē)鷮?duì)稱(chēng)放置牛津杯,牛津杯中加入無(wú)菌發(fā)酵液200μL,重復(fù)3次。28℃恒溫培養(yǎng)5d,觀察菌落生長(zhǎng)狀態(tài),測(cè)定抑菌帶寬度,并挑取抑菌圈交界處菌絲,于顯微鏡下觀察菌絲細(xì)胞形態(tài),以正常菌絲為對(duì)照。
1.6.1 種子催芽試驗(yàn)
將飽滿(mǎn)的油菜種子在GM-1菌株發(fā)酵液中浸泡4h,取出后擺放于鋪有濕潤(rùn)濾紙的培養(yǎng)皿內(nèi),每皿30粒,重復(fù)3次,以無(wú)菌水和培養(yǎng)液分別為對(duì)照CK1和CK2,28℃恒溫培養(yǎng)72h,檢查油菜種子的發(fā)芽數(shù),計(jì)算發(fā)芽率,測(cè)量發(fā)芽種子的根長(zhǎng)。
1.6.2 盆栽防病試驗(yàn)
采用灌根法[17]。將油菜菌核病菌的固體培養(yǎng)物按照每盆15g接入到裝有無(wú)菌土的花盆中,室溫放置4d。用GM-1菌株發(fā)酵液(100mL/盆)浸濕土壤后每盆播種10粒油菜種子,以無(wú)菌水浸濕土壤為對(duì)照CK1、培養(yǎng)液浸濕土壤為對(duì)照CK2,每處理10盆。播種15d后記錄各處理發(fā)病株數(shù)、測(cè)量株高及苗株干重。并按以下公式計(jì)算發(fā)病率和防治效果:
2.1.1 海洋細(xì)菌GM-1菌株的形態(tài)特征
GM-1菌株在LB固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)24h,菌落呈圓形、隆起、乳黃色、不透明、邊緣不整齊、表面濕潤(rùn)不光滑、生長(zhǎng)后期菌落顏色變深。細(xì)胞呈桿狀,G+,單個(gè)排列也有鏈狀排列(圖1a),有芽胞、中生(圖1b),極生單鞭毛(圖1c),無(wú)莢膜(圖1d)。
圖1 細(xì)菌GM-1細(xì)胞形態(tài)(10×100)Fig.1 Cell morphology of the strain GM-1(10×100)
2.1.2 海洋細(xì)菌GM-1菌株的生理生化試驗(yàn)結(jié)果
菌株GM-1可利用蔗糖、葡萄糖、半乳糖、木糖醇等糖醇進(jìn)行發(fā)酵,不能利用木糖、阿拉伯糖、肌醇;并且吲哚試驗(yàn)、M.R.試驗(yàn)、V.P.試驗(yàn)、接觸酶試驗(yàn)、丙二酸鹽呈陽(yáng)性,42℃可生長(zhǎng),好氧且具有運(yùn)動(dòng)性;在大分子試驗(yàn)中,菌株GM-1的石蕊牛奶試驗(yàn)、明膠液化試驗(yàn)和淀粉水解試驗(yàn)均顯陽(yáng)性,結(jié)果見(jiàn)表1。
表1 細(xì)菌GM-1菌株的生理生化試驗(yàn)結(jié)果Table 1 Physiological and biochemical test results of the antagonistic strain GM-1
通過(guò)細(xì)菌形態(tài)學(xué)觀察和一系列的生理生化試驗(yàn),參照《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[18]發(fā)現(xiàn) GM-1菌株符合芽胞桿菌的特性,屬于芽胞桿菌屬(Bacillus)。
2.1.3 GM-1菌株16SrDNA序列分析
GM-1菌株16SrDNA序列PCR擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序得到大小為1455bp的片段。將該序列在GenBank中進(jìn)行比對(duì),結(jié)果顯示,GM-1菌株與枯草芽胞桿菌(Bacillus subtilis)和解淀粉芽胞桿菌(B.amyloliquefaciens)的相似性均達(dá)98%以上。選取GenBank中相似性較高的模式菌株序列,采用MEGA5軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),GM-1菌株與芽胞桿菌屬中B.amyloliquefaciens在同一分支,菌株GM-1可能屬于芽胞桿菌屬的B.amyloliquefaciens,結(jié)果見(jiàn)圖2。在現(xiàn)代微生物分類(lèi)學(xué)上,16SrDNA序列已廣泛地應(yīng)用于研究細(xì)菌的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系。然而,在芽胞桿菌屬枯草芽胞桿菌組中,不同菌株的16SrDNA序列相似性都超過(guò)了97%。因此,單純依據(jù)16SrDNA序列并不能將菌株GM-1準(zhǔn)確鑒定到種的水平。
2.1.4 GM-1菌株gyrB基因序列分析
gyrB基因是編碼DNA促旋酶B亞基的基因。作為一種新的分子標(biāo)記,該基因序列有比16SrDNA高得多的堿基替換頻率,并且在細(xì)菌中普遍存在其近乎呈單拷貝形式,目前在細(xì)菌種級(jí)水平的鑒定方面具有較強(qiáng)的可行性[19-20]。
GM-1菌株gyrB基因序列PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)測(cè)序得到大小為1213bp的片段。BLAST結(jié)果表明,GM-1菌株與B.amyloliquefacien的相似度最高,為99%。采用MEGA5軟件構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),GM-1菌株和B.amyloliquefaciens位于同一分支上,這一結(jié)果與基于16SrDNA序列分析的結(jié)果一致,結(jié)果見(jiàn)圖3。結(jié)合形態(tài)學(xué)、生理學(xué)和分子證據(jù),菌株GM-1應(yīng)該屬于B.amyloliquefaciens。
圖2 GM-1菌株16SrDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.2 Phylogenetic tree based on 16SrDNA sequence of GM-1
圖3 GM-1菌株gyrB序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.3 Phylogenetic tree based on gyrBsequence of GM-1
2.2.1 GM-1菌株和發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌核萌發(fā)的抑制作用
表2、圖4顯示,原發(fā)酵液和無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌核的萌發(fā)有明顯的抑制作用,培養(yǎng)1d抑制率都達(dá)到100%,3d抑制率分別為100%和90%,5d抑制率分別為100%和4%。結(jié)果表明,菌液對(duì)菌核的萌發(fā)具有很強(qiáng)的抑制作用,而無(wú)菌發(fā)酵液隨著時(shí)間的延長(zhǎng)抑制作用逐漸減弱。
2.2.2 GM-1菌株對(duì)油菜菌核病菌菌絲的抑制作用
GM-1菌株和無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌絲的生長(zhǎng)具有明顯的抑制作用,培養(yǎng)7d的抑菌帶寬度分別達(dá)到30mm和16mm,見(jiàn)圖5。
表2 GM-1菌株和發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌核萌發(fā)的抑制作用Table 2 Inhibitory effects of the strain GM-1and sterile fermentation broth on sclerotia germination of S.sclerotiorum
圖4 GM-1菌株對(duì)油菜菌核病菌菌核萌發(fā)的抑制作用Fig.4 Inhibitory effect of the strain GM-1on sclerotia germination of S.sclerotiorum
圖5 GM-1菌株和無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用Fig.5 Inhibitory effects of the strain GM-1and sterile fermentation broth on mycelium growth of S.sclerotiorum
圖6顯示GM-1菌株和無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)菌絲結(jié)構(gòu)有明顯的破壞作用,導(dǎo)致菌絲細(xì)胞壁變厚、膨大,細(xì)胞空洞、原生質(zhì)分布不均勻。
2.3.1 種子催芽試驗(yàn)
經(jīng)GM-1菌株發(fā)酵液處理后油菜種子發(fā)芽率為98.9%,高于無(wú)菌水和培養(yǎng)液對(duì)照處理的93.3%和91.1%,且差異均達(dá)到顯著水平(表3)。
圖6 菌株GM-1對(duì)油菜菌核病菌菌絲細(xì)胞的抑制作用顯微觀察結(jié)果(10×20)Fig.6 Inhibitory effects of the strain GM-1on mycelium growth of S.sclerotiorum (10×20)
表3 GM-1菌株發(fā)酵液對(duì)油菜種子萌發(fā)的影響1)Table 3 Effects of the sterile fermentation broth of the strain GM-1on germination of rape seeds
處理后的油菜種子發(fā)芽后的平均根長(zhǎng)為14.01mm,顯著高于對(duì)照。試驗(yàn)中觀察到,處理的種子根部比對(duì)照明顯粗壯,且根尖無(wú)黃化現(xiàn)象,說(shuō)明GM-1菌株對(duì)油菜種子的萌發(fā)生長(zhǎng)有一定的促生作用。
2.3.2 盆栽防病試驗(yàn)
采用灌根法進(jìn)行盆栽試驗(yàn)結(jié)果表明,GM-1菌株對(duì)油菜植株生長(zhǎng)表現(xiàn)出明顯的促生作用。經(jīng)該菌發(fā)酵液處理后油菜幼苗株高為6.44cm,顯著高于無(wú)菌水和培養(yǎng)液處理的對(duì)照;處理的發(fā)病率明顯低于對(duì)照,發(fā)酵液的防病效果達(dá)到68.0%(表4)。
表4 盆栽防病試驗(yàn)結(jié)果Table 4 The control effects of the strain GM-1 on S.sclerotiorumby pot tests
試驗(yàn)中無(wú)菌水處理的CK1的發(fā)病率為52.6%,明顯低于用培養(yǎng)液處理的CK2,導(dǎo)致這一結(jié)果的原因可能是由于培養(yǎng)液利于油菜菌核病菌的生長(zhǎng)和侵染,因而CK2的發(fā)病率較高。
通過(guò)形態(tài)特征觀察、生理生化試驗(yàn)及16SrDNA序列、gyrB基因序列分析,將GM-1菌株鑒定為芽胞桿菌屬的解淀粉芽胞桿菌(B.amyloliquefaciens)。
近年來(lái)Biolog、16SrDNA的序列分析等方法已廣泛應(yīng)用于細(xì)菌的鑒定[21],對(duì)多數(shù)細(xì)菌的鑒定發(fā)揮著重要作用,但對(duì)于相近種類(lèi)難以進(jìn)行準(zhǔn)確鑒定,如解淀粉芽胞桿菌與死谷芽胞桿菌[22]以及枯草芽胞桿菌[23-24]等。
gyrB基因的分子進(jìn)化速率大于16SrDNA基因,因而更適合細(xì)菌近緣種的準(zhǔn)確區(qū)分和鑒定,Wang[25]等對(duì)8個(gè)枯草芽胞桿菌組的個(gè)體進(jìn)行聚類(lèi)分析時(shí)發(fā)現(xiàn),當(dāng)使用16SrDNA作為靶標(biāo)分子時(shí),只能將其分為兩個(gè)亞群,亞群內(nèi)16SrDNA的相似度多在98%以上,而gyrB基因序列在亞群中的相似度為75.2%~99.2%,表明gyrB基因可應(yīng)用于細(xì)菌近緣種之間的鑒別[26]。La等在比較4種不同種屬的芽胞桿菌時(shí),同樣發(fā)現(xiàn)基于gyrB基因的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)比基于16SrDNA的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)更能有效地將他們分開(kāi)[27]。
抑菌作用測(cè)定結(jié)果表明:GM-1菌株和無(wú)菌發(fā)酵液對(duì)油菜菌核病菌菌絲細(xì)胞結(jié)構(gòu)有明顯的破壞作用,細(xì)胞壁變厚、膨大,細(xì)胞內(nèi)原生質(zhì)分布不均勻,明顯抑制菌絲生長(zhǎng),培養(yǎng)7d的抑菌帶寬度分別達(dá)到30mm和16mm,并對(duì)菌核的萌發(fā)具有明顯的抑制作用,菌液的抑制明顯高于無(wú)菌發(fā)酵液,其5d的抑制率達(dá)100%,無(wú)菌發(fā)酵液3d的抑制率為90%,但到5d時(shí)抑制率僅為4%。這可能是由于GM-1菌株的代謝產(chǎn)物可以推遲菌核的萌發(fā)時(shí)間,而不能導(dǎo)致菌核的死亡。
室內(nèi)盆栽試驗(yàn)表明,GM-1菌株發(fā)酵液對(duì)油菜種子萌發(fā)和生長(zhǎng)具有一定的促進(jìn)作用,對(duì)油菜菌核病具有較好的防治效果,表現(xiàn)出良好的生防前景。
有關(guān)海洋解淀粉芽胞桿菌對(duì)油菜菌核病的抑制作用研究尚未見(jiàn)報(bào)道,本研究結(jié)果為解淀粉芽胞桿菌用于油菜菌核病的生物防治提供了理論依據(jù),今后將開(kāi)展GM-1菌株抗菌作用機(jī)制、發(fā)酵條件優(yōu)化以及抗菌作用的田間試驗(yàn)研究。
[1] 高雪,唐凱健,王利華,等.我國(guó)油菜菌核病綜合治理研究進(jìn)展[J].中國(guó)植保導(dǎo)刊,2009,29(6):15-18.
[2] 周樂(lè)聰.油菜菌核病流行與防治的研究概況[J].中國(guó)油料,1994(4):101-108.
[3] 馬桂珍,李世東,張擁華,等.核盤(pán)菌重寄生菌鏈孢粘帚霉HL-1-1菌株的生物學(xué)特性研究[J].植物病理學(xué)報(bào),2004,34(4):307-313.
[4] 鄭露,丁顏敏,姜道宏,等.生防菌盾殼霉ZS-1菌株對(duì)油菜菌核病的田間防治效果[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2012,39(2):191-192.
[5] Khachatourians G G.Agricultural use of antibiotics and the evolution and transfer of antibiotic-resistant bacteria[J].Canadian Medical Association Journal,1998,159(9):1129-1136.
[6] 李國(guó)慶,楊龍,姜道宏,等.重寄生菌盾殼霉及其防治核盤(pán)菌菌核病的研究進(jìn)展[J].湖北植保,2009(S1):54-58.
[7] 郭春艷.海洋細(xì)菌Bacillus velezensis DM09在油菜中的定殖及對(duì)油菜菌核病的防治研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[8] Li G Q,Huang H C,MiaoH J,et al.Biological control of selerotinia disease of rapeseed by aerial applications of the mycoparasite Coniothyrium minitans[J].European Journal of Plant Pathology,2006,114:345-355.
[9] 楊龍,李國(guó)慶,姜道宏.盾殼霉與復(fù)合肥的相容性及其菌肥混用防治核盤(pán)菌的研究[C]∥中國(guó)植物病理學(xué)會(huì)2008年學(xué)術(shù)年會(huì)論文集.廣州,2008.
[10]東秀珠,蔡妙英.常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社,2001:353-390.
[11]Kinston R E,Chen C A,Okayama H.Transfection of DNA into eukaryotic cells in Current Protocols in Molecular Biology[M].New York:John Wiley and Sons,Inc,1993:911-913.
[12]Gauthier E,Deziel E,Villemur R,et al.Initial characterization of new bacteria degrading high-molecular weight polycyclic aromatic hydrocarbons isolated from a 2-year enrichment in a two liquid-phase culture system[J].Journal of Applied Microbiology,2003,94(2):301-311.
[13]Yamamoto S,Harayama S.PCR amplification and direct sequencing of gyrB genes with universal primers and their application to the detection and taxonomic analysis of Pseudomonas putide strains[J].Applied and Environmental Microbiology,1995,61(3):1104-1109.
[14]劉學(xué)明.枯草芽孢桿菌TR21的發(fā)酵和海洋細(xì)菌DM09抗真菌活性物質(zhì)研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[15]暴增海,馬桂珍,楊文蘭,等.生防細(xì)菌BMY-1對(duì)幾種植物病原真菌的抑制作用[J].中國(guó)植保導(dǎo)刊,2005,25(11):5-7.
[16]趙德立,曾林子,李暉,等.多粘芽孢桿菌JW-725抗菌活性物質(zhì)及其發(fā)酵條件的初步研究[J].植物保護(hù),2006,32(1):47-50.
[17]潘金菊.黃瓜菌核病拮抗細(xì)菌的分離、鑒定及抑菌活性初步研究[D].泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.
[18]布坎南R E,吉本斯N E.伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)[M].第8版.北京:科學(xué)出版社,1984.
[19]喻國(guó)輝,牛春艷,陳元鳳,等.利用16SrDNA結(jié)合gyrA和gyrB基因?qū)ι姥堪麠U菌R31的快速鑒定[J].中國(guó)生物防治,2010,26(2):160-166.
[20]Hou X L,Chen Z.gyrBgene,a new target identifying and classifying bacteria[J].Foreign Medical Sciences Epidemiology Lemology,2005,32(1):38-41.
[21]Lane D J.16S/23SrRNA sequencing[M]∥Stackebrandt E,Goodfellow M,eds.Nucleic acid techniques in bacteria systematics.UK:John Wiley &Sons,1991:115-175.
[22]Roberts M S,Nakamura L K,Cohan F M.Bacillus vallismortis sp.nov.,a close relative of Bacillus subtilis,isolated from soil in Death Valley,California[J].International Journal of Systematic Bacteriology,1996,46:470-475.
[23]Goto K,Omura T,Hara Y,et al.Application of the partial 16SrDNA sequence as an index for rapid identification of species in the genus Bacillus[J].The Journal of General Applied Microbiology,2000,46:1-8.
[24]Oleg N R,Christina D,Johan M,et al.Taxonomic characterization and plant colonizing abilities of some bacteria related to Bacillus amyloliquefaciens and Bacillus subtilis[J].FEMS Microbiology Ecology,2004,48:249-259.
[25]Wang L T,Lee F L,Tai C J,et al.Comparison of gyrB gene sequences,16SrRNA gene sequences and DNA-DNA hybridization in the Bacillus subtilis group[J].International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology,2007,57:1846-1850.
[26]李獻(xiàn)梅,王小芬,楊洪巖,等.促旋酶(gyrase)B亞單位基因gyrB在鑒別細(xì)菌近緣種中的應(yīng)用[J].微生物學(xué)報(bào),2008,48(5):701-706.
[27]La Duc M T,Satom I M,Agata N,et al.gyrB As a Phylogenetic Discriminator for Members of the Bacillus anthracis-cereus-thuringiensis Group[J].Journal Microbiological Methods,2004,56(3):383-394.