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兩種脂肪細胞內(nèi)脂滴染色方法的比較研究

2014-01-17 12:21秦紅霞王宇豪寧椿游
關(guān)鍵詞:脂滴內(nèi)脂染色法

秦紅霞 趙 玲 王宇豪 寧椿游 羅 毅

(四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院;1四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,雅安625014)

前脂肪細胞與體內(nèi)脂肪沉積以及人類代謝性疾病密切相關(guān)[1,2],前脂肪細胞的分化過程一直是生物和醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中的研究熱點。在前脂肪細胞分化為成熟脂肪細胞的過程中,細胞形態(tài)會發(fā)生一系列變化,前脂肪細胞首先由成纖維細胞樣形狀逐漸趨于類圓或圓形,胞體逐漸增大,胞質(zhì)中開始出現(xiàn)小脂滴,隨著分化的進展,胞質(zhì)內(nèi)的小脂滴逐漸增多,小脂滴逐漸地融合為較大的脂滴[3],細胞核被推向細胞的邊緣,最終為成熟脂肪細胞的形態(tài)特征。細胞內(nèi)脂滴的多少是判定脂肪細胞分化程度的重要指標。脂肪細胞內(nèi)脂滴的染色有兩種方法,即油紅O染色和尼羅紅熒光染色法。油紅O染色法是國內(nèi)外應(yīng)用最廣泛的一種方法,而國內(nèi)有關(guān)尼羅紅染色法用于鑒定脂肪細胞內(nèi)脂滴的研究還非常有限。迄今為止,有關(guān)上述兩種染色方法的比較研究仍未見報道。故本實驗采用尼羅紅染色和油紅O染色法分別對脂肪細胞內(nèi)脂滴進行染色,綜合比較兩種方法的優(yōu)劣,旨在探討科研工作中更優(yōu)的脂滴染色方法。

材料和方法

1.材料

1.1細胞

3T3-L1前脂肪細胞(購自中國科學(xué)院細胞庫)

1.2主要儀器

Varioskan全波長酶標儀(Thermo)、CO2培養(yǎng)箱、IX71倒置熒光顯微鏡(Olympus)、生物安全柜(Thermo)

1.3主要試劑

DMEM高糖培養(yǎng)基(Hyclone)、新生牛血清(Gibco)、油紅O(上海生物工程公司)、尼羅紅染液(Lonza)、胰島素(Sigma)、地塞米松(Sigma)、IBMX(Sigma)、羅格列酮(Sigma)

2.方法

2.1 3T3-L1前脂肪細胞的誘導(dǎo)分化

采用經(jīng)典的"雞尾酒"法誘導(dǎo)前脂肪細胞,具體操作如下:將3T3-L1前脂肪細胞以5×103個/孔的密度接種于96孔板,待細胞完全融合后2d(此時為誘導(dǎo)分化的0d),換為含有170nM 胰島素、0.5mM IBMX和1μM地塞米松的誘導(dǎo)分化培養(yǎng)液。2d后,吸棄培養(yǎng)液,加入含170nM胰島素的維持培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)2d;其后,換為完全培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),每2d換液一次,直至第8d。在細胞內(nèi)甘油三酯定量檢測過程中設(shè)立對照組與羅格列酮(RSG)處理組,每個處理組設(shè)六個重復(fù)。RSG處理組在細胞分化過程中全程加入RSG(終濃度1μM),對照組則加入同體積的PBS。

2.2油紅O染色

將誘導(dǎo)分化至第8d的細胞培養(yǎng)板取出,棄去培養(yǎng)液,用0.01mM pH7.4的PBS輕輕洗滌2~3次;用10%Baker's福爾馬林鈣液固定細胞60min;吸棄固定液,用PBS清洗3遍;加入油紅O染液于細胞表面,室溫下染色30min;棄染液,并用PBS輕洗3次;將培養(yǎng)板置于倒置顯微鏡下觀察結(jié)果,拍照。拍照結(jié)束后加入60μL/孔的異丙醇萃取脂滴中的油紅O,室溫放置20min,吸取萃取出的染液50μL/孔轉(zhuǎn)移至潔凈的96孔培養(yǎng)板中,于490nm處測定吸光度值,以相同的方法處理PBS對照組。

2.3尼羅紅熒光染色

將誘導(dǎo)分化后8d的3T3-L1細胞取出,棄去培養(yǎng)液,用PBS(pH 7.4)漂洗后,每孔加入200μL PBS;在96孔細胞培養(yǎng)板中每孔加入5μL尼羅紅染液,適當振蕩。靜置10min后,將96孔培養(yǎng)板放入全波長酶標儀中,于激發(fā)波長485nm,發(fā)射波長572nm下測定熒光強度。然后,將96孔培養(yǎng)板置于倒置顯微鏡下觀察結(jié)果并拍照。

3.統(tǒng)計學(xué)處理

實驗所得數(shù)據(jù)以mean±sd表示,用SAS 9.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行處理,采用t檢驗進行差異顯著性分析。

結(jié) 果

1.脂滴的鑒定

當細胞分化至第8d,取出細胞置于倒置顯微鏡下觀察,視野中富含大量類似液泡的圓形脂滴(圖1A)。經(jīng)油紅O染色后,脂滴被親脂的油紅O著色成橘紅色,從而證明視野中的圓形脂滴非液泡(圖1B)。而細胞經(jīng)尼羅紅熒光染色后,經(jīng)倒置熒光顯微鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)細胞內(nèi)脂滴發(fā)出桔黃色熒光(圖1C);而在明場下觀察尼羅紅染色后的脂滴則呈淺紅色(圖1D)。上述結(jié)果顯示,油紅O染色與尼羅紅熒光染色均可鑒定脂肪細胞內(nèi)脂滴的生成情況。

2.細胞內(nèi)甘油三酯蓄積程度的測定

油紅O萃取法和尼羅紅熒光檢測法均可定量檢測細胞內(nèi)甘油三酯的蓄積程度。為證明上述兩種方法對檢測結(jié)果是否一致,本實驗在細胞分化過程中,設(shè)立了羅格列酮組和PBS組。羅格列酮是一種PPARγ激動劑,能顯著促進細胞內(nèi)甘油三酯的合成[8]。細胞內(nèi)甘油三酯測定結(jié)果如圖2所示,兩種染色法檢測結(jié)果均顯示RSG組細胞內(nèi)甘油三酯的含量均顯著高于PBS組(P<0.05),檢測結(jié)果一致。

圖2 兩種染色方法細胞中甘油三酯含量測定比較Fig.2Comparison of two staining methods for detection of intracellular triglyceride content

3.兩種染色法區(qū)別

油紅O染色法和尼羅紅染色法的區(qū)別如表1所示。油紅O染色法耗時較長,操作步驟繁瑣,但對檢測儀器要求不高。相反,尼羅紅染色法耗時短,染色步驟簡便,但需要能檢測熒光信號的儀器設(shè)備。

表1 油紅O染色法和尼羅紅染色法區(qū)別Table 1 Difference between Oil Red O staining and Nile Red staining

討 論

細胞內(nèi)脂滴的生成情況可判定脂肪細胞的分化程度。傳統(tǒng)的脂滴鑒定和定量檢測是通過油紅O染色法進行的。油紅O是一種紅色的脂溶性染料,可與組織、細胞中的甘油三酯發(fā)生特異性結(jié)合,將脂滴染成橘紅色。通過萃取脂滴中的油紅O染料,再采用分光光度計檢測OD值,OD值越大表明甘油三酯含量越高[4],所以該方法還可定量檢測細胞內(nèi)甘油三酯蓄積程度。尼羅紅是一種親脂性的惡嗪類熒光染料,能與細胞內(nèi)中性甘油三酯結(jié)合發(fā)出熒光[5],其熒光強度與甘油三酯含量顯著相關(guān),故通過熒光顯微鏡以及熒光酶標儀能觀察和測定甘油三酯的多少,從而考察脂肪細胞脂滴的生成情況。本實驗結(jié)果與已有的文獻[6-8]均顯示兩種染色法都可鑒定或定量檢測脂肪細胞內(nèi)甘油三酯蓄積程度。但油紅O染色過程需要固定、洗滌、染色和再洗滌等過程,導(dǎo)致該方法操作過程較為繁瑣、耗時較長,染料不易清洗干凈,導(dǎo)致染料殘留,從而出現(xiàn)實驗誤差,影響測定結(jié)果。與油紅O染色法相比,尼羅紅染色只需吸棄培養(yǎng)液,加入PBS和染料即可,操作簡單、耗時短以及背景更潔凈,實驗的準確性更高。但尼羅紅染色法的應(yīng)用需要實驗室裝備熒光顯微鏡或能檢測熒光信號的酶標儀。綜合以上實驗和論述,油紅O染色法和尼羅紅染色法用于研究細胞內(nèi)脂滴的生成情況均能獲得較為理想的實驗結(jié)果,但為了提高實驗的準確性,減少實驗的誤差,并具備實驗條件的情況下,推薦采用尼羅紅熒光染色法應(yīng)用于脂肪細胞內(nèi)脂滴的鑒定和定量測定。

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