国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

不同基因型菜心游離小孢子培養(yǎng)和植株再生

2014-04-29 03:35曾小玲方淑桂朱朝輝鐘開勤
熱帶作物學(xué)報(bào) 2014年12期
關(guān)鍵詞:菜心基因型

曾小玲 方淑桂 朱朝輝 鐘開勤

福州市蔬菜科學(xué)研究所,福建福州 350111

摘 要 以11個(gè)不同基因型的菜心栽培品種為試材,研究不同培養(yǎng)條件對菜心游離小孢子胚誘導(dǎo)和植株再生的影響。結(jié)果有7個(gè)基因型材料獲得小孢子胚,從不同基因型誘導(dǎo)形成胚的頻率存在顯著差異,表明基因型是影響菜心小孢子胚發(fā)生的主要因素;第1天熱激培養(yǎng)時(shí)用170 g/L高濃度蔗糖培養(yǎng)之后轉(zhuǎn)換成含130 g/L蔗糖培養(yǎng)基能顯著提高小孢子胚誘導(dǎo)率;0.05 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA能促進(jìn)菜心小孢子誘導(dǎo)成胚;添加0.4 mg/L GA3可顯著提高菜心小孢子胚芽誘導(dǎo)率和平均每胚出芽數(shù)。7個(gè)基因型材料均誘導(dǎo)出再生植株,植株誘導(dǎo)率為100%。

關(guān)鍵詞 菜心;游離小孢子培養(yǎng);基因型;植株再生

中圖分類號(hào) S634 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼A

菜心(Brassica campestris L. ssp. chinensis var.utilis Tsen et Lee.)是十字花科蕓薹屬蕓薹種白菜亞種的1個(gè)變種。其適應(yīng)性強(qiáng),可周年栽培,在我國南方大面積種植。菜心雜交育種研究起步晚,常規(guī)育種方法需經(jīng)過雜交、回交和多代自交分離,選育出理想的純系需要5~6年的時(shí)間。通過游離小孢子培養(yǎng)能夠快速獲得大量雙單倍體植株(DH系),將顯隱性基因成為表現(xiàn)型,使優(yōu)良性狀得到保留,大大縮短育種的年限,豐富育種資源,是一種快速、高效的育種途徑。國內(nèi)外研究人員對蕓薹屬蔬菜小孢子胚胎發(fā)生機(jī)制和影響因素做了大量研究,相繼在蕓薹屬的多個(gè)種[1-8]上獲得成功。但是不同種間游離小孢子胚誘導(dǎo)各有其自身的規(guī)律,不能完全相互套用。有關(guān)菜心游離小孢子培養(yǎng)的文獻(xiàn)報(bào)道較少,朱允華等[9]僅從個(gè)別菜心基因型誘導(dǎo)出胚狀體,沒有形成再生植株。目前,菜心小孢子培養(yǎng)技術(shù)體系尚不完善,仍然有大量的具體問題需要探索。本試驗(yàn)通過對11個(gè)基因型菜心進(jìn)行游離小孢子培養(yǎng),對影響菜心胚誘導(dǎo)率和植株再生技術(shù)的幾個(gè)關(guān)鍵影響因素進(jìn)行探討,培育出小孢子再生植株,進(jìn)一步完善菜心小孢子培養(yǎng)技術(shù),為利用現(xiàn)有資源快速創(chuàng)造所需要的新育種材料奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

11個(gè)供試材料分別為‘翠綠(福州永榮種子有限公司)、‘東莞2號(hào)(福州臺(tái)農(nóng)種業(yè)有限公司)、‘優(yōu)選38號(hào)(武漢武昌神牛種苗商行)、‘華綠50天(廣州華綠種子有限公司)、‘翡翠(廣州市惠金農(nóng)業(yè)科技有限公司)、‘綠寶(廣州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院)、‘一枝花(廣州廣南農(nóng)業(yè)科技有限公司)、‘501(廣州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院)、‘翡翠尖葉(廣州市惠金農(nóng)業(yè)科技有限公司)、‘青翠(廣東省良種引進(jìn)服務(wù)公司)和‘碧綠(深圳市范記種子有限公司),均為常規(guī)種。2009年1月10日、2月28日、8月2日,2010年1月8日、2月23日、8月7日2年6批直播于福州市蔬菜科學(xué)研究所試驗(yàn)田,常規(guī)管理,2中旬至4月和9月選取適宜花蕾進(jìn)行游離小孢子培養(yǎng)。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 游離小孢子的分離、純化和培養(yǎng) 參照方淑桂等[10]的研究方法對菜心游離小孢子進(jìn)行分離、純化和培養(yǎng)。在菜心的始花期,于上午9 : 00前,選取無蟲眼的供試花蕾(蕾長2.0~3.0 mm,瓣藥比為1/3~4/5),先用75%酒精蕩洗20 s,再用有效氯含量≥8.0%的13%的次氯酸鈉溶液消毒15 min,最后用無菌水蕩洗3次;挑取花蕾于研缽中,加入含蔗糖130 g/L高溫滅菌過的B5培養(yǎng)基,用研杵擠壓游離出小孢子,經(jīng)孔徑50 μm的尼龍網(wǎng)布過濾收集在10 mL的玻璃離心管中;于1 000 r/min的離心機(jī)離心3 min,棄上清液,再加入10 mL的B5液體培養(yǎng)基懸浮小孢子,離心,棄上清液,重復(fù)3次;純化的游離小孢子懸浮培養(yǎng)于NLN13液體培養(yǎng)基中,以每皿3 mL分裝到60 mm×15 mm的無菌培養(yǎng)皿中,用Parafilm膜封口;將培養(yǎng)皿置于恒溫培養(yǎng)箱33 ℃熱激誘導(dǎo)24 h,之后轉(zhuǎn)入25 ℃靜止暗培養(yǎng),至胚狀體出現(xiàn)。培養(yǎng)23 d后統(tǒng)計(jì)小孢子出胚數(shù),計(jì)算出胚率。當(dāng)幼胚開始轉(zhuǎn)綠即轉(zhuǎn)至MS培養(yǎng)基中,置于(25±1)℃、光強(qiáng)3 000 lx、光照14 h/d條件下培養(yǎng)。

1.2.2 小孢子發(fā)育過程的形態(tài)學(xué)觀察 培養(yǎng)的游離小孢子每天置于OLYMPUS-CX41倒置顯微鏡下觀察。

1.2.3 不同氣候條件對小孢子胚誘導(dǎo)的影響 以易出胚的基因型‘翠綠、‘翡翠尖葉為材料,記錄取樣前一天的氣溫,將出胚結(jié)果與取樣前一天的溫度對應(yīng),分析溫度對菜心出胚的影響,氣象資料由福州市氣象局提供。

1.2.4 不同蔗糖濃度對小孢子胚發(fā)生的影響 分別以難出胚基因型‘青翠、中等出胚基因型‘碧綠和‘優(yōu)選38號(hào)、易出胚基因型‘翠綠和‘翡翠尖葉為材料,參照于文佳等[11]的方法,將游離的小孢子進(jìn)行3種方式處理:1)一直用含130 g/L蔗糖的NLN13培養(yǎng)基培養(yǎng);2)用含130 g/L蔗糖的NLN13培養(yǎng)基熱激1 d后,重新離心更換為新鮮的含130 g/L蔗糖的NLN13培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng);3)用含170 g/L蔗糖的NLN13培養(yǎng)基熱激1 d后,重新離心更換為含130 g/L蔗糖的NLN13培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。每個(gè)處理5皿,重復(fù)3次。23 d后統(tǒng)計(jì)小孢子的出胚數(shù)。

1.2.5 6-BA和NAA對小孢子胚誘導(dǎo)的影響 以中出胚基因型‘優(yōu)選38號(hào)和難出胚基因型‘青翠單核晚期的花蕾為材料,將純化的小孢子分別懸浮在含不同質(zhì)量濃度6-BA(6-芐氨基腺嘌呤)(0.05、0.10、0.15 mg/L)和NAA(萘乙酸)(0.2、0.5、1.0 mg/L)組合的NLN13液體培養(yǎng)基(含蔗糖130 g/L)中培養(yǎng)。23 d后統(tǒng)計(jì)小孢子的出胚數(shù)。

1.2.6 激素對小孢子胚芽繼代的影響 由于擴(kuò)繁需要,研究不同質(zhì)量濃度的激素對再生芽的影響。采用L9(34)拉丁方設(shè)計(jì),將‘碧綠獲得的小孢子胚狀體分別接種在含不同質(zhì)量濃度6-BA(0.8、0.4、0 mg/L)、NAA(0.04、0.02、0 mg/L)和GA(0.8、0.4、0 mg/L)組合的9組固體培養(yǎng)基中(基礎(chǔ)培養(yǎng)基:MS+30.0 g/L蔗糖+8 g/L瓊脂),23 d后統(tǒng)計(jì)菜心的胚芽誘導(dǎo)率。胚芽誘導(dǎo)率=出芽胚狀體數(shù)/接種胚狀體數(shù)×100%,平均每胚出芽數(shù)=再生芽總數(shù)/出芽胚狀體數(shù)。

1.2.7 小孢子胚芽的生根及馴化移栽 再生芽長至2 cm左右時(shí),切下芽,并轉(zhuǎn)入生根固體培養(yǎng)基(1/2MS+0.3 mg/L NAA+30.0 g/L蔗糖+8 g/L瓊脂)中生根,長成小苗,植株經(jīng)馴化后移栽到苗床。

1.3 數(shù)據(jù)分析

利用DPS6.5軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性分析,Graphpad5.0軟件繪圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 小孢子離體培養(yǎng)過程的形態(tài)學(xué)觀察

從OLYMPUS-CX41倒置顯微鏡觀察菜心游離小孢子發(fā)育過程的形態(tài)變化。剛游離的小孢子大部分呈近圓形,具有3條萌發(fā)溝,細(xì)胞核被大液泡擠到細(xì)胞一側(cè),處于單核靠邊期。經(jīng)熱激誘導(dǎo)處理1 d后,部分小孢子明顯膨大,細(xì)胞增大到原來的2倍左右,形狀為圓球形(圖1-a)。3 d后,部分膨大的小孢子開始第一次細(xì)胞分裂,再經(jīng)橫向和縱向多次分裂,培養(yǎng)7 d分裂形成細(xì)胞團(tuán)。10~16 d細(xì)胞團(tuán)進(jìn)一步發(fā)育形成球形胚、心形胚(圖1-b)、魚雷形胚、子葉胚,最后形成不同形狀的胚狀體(圖1-d)。部分膨大的小孢子為橫向均等分裂,繼續(xù)分裂形成多細(xì)胞團(tuán)(圖1-c),逐漸形成肉眼可見的愈傷組織,這些愈傷組織的細(xì)胞之間松散而無序的連接在一起??梢姴诵挠坞x小孢子發(fā)育過程存在胚狀體途徑和愈傷組織途徑的2種不同途徑。

2.2 不同基因型小孢子胚誘導(dǎo)的差異比較

由表1可見,供試的11份材料中有7個(gè)基因型誘導(dǎo)出胚,占63.6%。其中‘翠綠和‘翡翠尖葉每蕾出胚數(shù)較高,分別為8.06胚/蕾和6.28胚/蕾;‘東莞2號(hào)、‘青翠和‘華綠50天的出胚數(shù)相對低些,均在1.50胚/蕾以下;‘翡翠、‘501、‘綠寶和‘一枝花在NLN13培養(yǎng)基中未誘導(dǎo)出胚,不同基因型的菜心小孢子出胚數(shù)有極顯著差異。根據(jù)小孢子出胚數(shù)的不同,可以把11個(gè)材料劃分為4類:易出胚基因型‘翠綠和‘翡翠尖葉,平均出胚數(shù)大于5.0胚/蕾;中等出胚基因型‘碧綠和‘優(yōu)選38號(hào),平均出胚數(shù)為1.5~5.0胚/蕾;難出胚基因型‘東莞2號(hào)、‘青翠、‘華綠50天,平均出胚數(shù)為0~1.5胚/蕾;不能出胚基因型‘翡翠、‘501、‘綠寶和‘一枝花。在不能出胚的4個(gè)基因型中,觀察到‘一枝花的游離小孢子發(fā)生膨大和分裂,說明其具有產(chǎn)生胚狀體的潛力,可能是培養(yǎng)基中的某些外因抑制細(xì)胞團(tuán)的繼續(xù)發(fā)育;‘501只觀察到細(xì)胞的膨大,說明‘501基因型對培養(yǎng)條件有一定的反應(yīng),但是細(xì)胞不能進(jìn)一步分裂。在相同的處理?xiàng)l件下,游離小孢子胚的發(fā)生能力是受基因型調(diào)控的。

2.3 供體植株氣候條件對小孢子胚誘導(dǎo)的影響 由表2可見,供體植株的氣候條件對小孢子胚的誘導(dǎo)具有明顯影響。植株在夜間最低氣溫低于10 ℃和日間最高氣溫高于30 ℃條件下,小孢子誘導(dǎo)率大大降低。在夜間最低氣溫處于12 ℃左右,日間最高氣溫處于24 ℃左右胚誘導(dǎo)率較高,這段時(shí)間比較適合菜心游離小孢子培養(yǎng)。2月份和3月份的胚誘導(dǎo)強(qiáng)于9月份,9月份的出胚數(shù)量極少。

2.4 培養(yǎng)基的蔗糖濃度對菜心小孢子胚誘導(dǎo)的影響

圖2顯示,不同蔗糖濃度處理對難出胚基因型‘青翠、中出胚基因型‘碧綠和‘優(yōu)選38號(hào)的出胚數(shù)造成極顯著差異,但對易出胚基因型‘翠綠和‘翡翠尖葉則無顯著影響。其中對于難出胚基因型‘青翠,處理1和處理2不能誘導(dǎo)形成胚,處理3則能夠誘導(dǎo)形成胚,且出胚數(shù)達(dá)到每蕾0.97個(gè);對于中出胚基因型‘碧綠和‘優(yōu)選38號(hào),處理1和處理2能夠不同程度地提高小孢子出胚數(shù),以處理3效果最好,出胚數(shù)比處理1每蕾分別多2.72個(gè)和2.73個(gè);易出胚基因型‘翠綠和‘翡翠尖葉對高糖處理的影響不大,處理3分別比處理1每蕾僅多0.29個(gè)和0.16個(gè)。

2.5 6-BA和NAA對小孢子胚誘導(dǎo)的影響

表3表明,添加適宜質(zhì)量濃度配比的生長調(diào)節(jié)劑有利于提高菜心游離小孢子的產(chǎn)胚量,其中對不易出胚基因型的促進(jìn)作用更加明顯?!畠?yōu)選38號(hào)的產(chǎn)胚數(shù)從每花蕾1.06個(gè)增加到3.77個(gè),提高了2倍多。在誘導(dǎo)培養(yǎng)基中附加0.05 mg/L 6-BA和0.2 mg/L NAA促進(jìn)了難出胚基因型‘青翠誘導(dǎo)出胚。菜心誘導(dǎo)培養(yǎng)基中最適宜激素質(zhì)量濃度配比是0.05 mg/L 6-BA和0.2 mg/L NAA。說明生長調(diào)節(jié)劑是影響小孢子胚發(fā)生的重要因素之一,不同基因型要求的植物激素組合和濃度不盡相同。

2.6 激素對胚狀體繼代的影響

將‘翠綠培養(yǎng)得到的生長良好的轉(zhuǎn)綠胚狀體(圖3-a)轉(zhuǎn)接到MS固體培養(yǎng)基上擴(kuò)繁培養(yǎng),產(chǎn)生叢生芽。經(jīng)試驗(yàn)研究(表4),在MS固體培養(yǎng)基中添加6-BA、NAA和GA3都能誘導(dǎo)出不定芽,胚芽誘導(dǎo)率在2.41%~58.53%,平均每胚出芽數(shù)在0.69~6.61,不同質(zhì)量濃度激素組合處理間呈極顯著差異。其中添加0.4 mg/L GA3最有利于不定芽發(fā)生,胚芽誘導(dǎo)率最高,達(dá)到58.53%,平均出芽數(shù)為每胚6.61個(gè),比其他處理形成的植株較粗壯(圖3-b),再經(jīng)過2~3次繼代后進(jìn)行生根培養(yǎng)形成小孢子幼苗。只添加NAA的繼代培養(yǎng)基中,胚芽誘導(dǎo)率最低,有些胚狀體在培養(yǎng)過程形成愈傷,最終褐化死亡(圖3-c)。添加6-BA和NAA的繼代培養(yǎng)基中,菜心小孢子的胚芽發(fā)生速度較慢,植株較弱,胚芽誘導(dǎo)率偏低。逐漸提高GA3的濃度,菜心胚芽的分化受到明顯抑制,在添加0.8 mg/L GA3的MS培養(yǎng)基中,菜心葉子慢慢變大變厚,形成很多次生胚。將幼苗轉(zhuǎn)接到1/2MS+0.3 mg/L NAA+30.0 g/L蔗糖+8 g/L瓊脂的生根培養(yǎng)基上培養(yǎng)獲得健壯的植株(圖3-d)。由此可見,適宜的激素濃度對不定芽的再生具有明顯促進(jìn)作用,激素濃度過高或不適宜都會(huì)抑制胚芽的擴(kuò)繁。菜心小孢子胚芽繼代的最適培養(yǎng)基是MS+0.4 mg/L GA3。

3 討論與結(jié)論

菜心基因型是影響小孢子培養(yǎng)的關(guān)鍵因素之一。在相同處理?xiàng)l件下,供試的11個(gè)基因型材料中有7份形成了小孢子胚,誘導(dǎo)成功率為63.6%,表明菜心的基因型決定了出胚率,基因型的反應(yīng)范圍較高,這與前人[12-13]的研究結(jié)果相同。在實(shí)際工作中可以將容易培養(yǎng)的基因型與難培養(yǎng)的基因型雜交,通過遺傳改良的方法擴(kuò)大小孢子胚胎發(fā)生的基因型范圍,獲取有用的基因。這種設(shè)想陳文輝等[14]在甘藍(lán)上進(jìn)行了嘗試,并獲得了成功。在菜心上的應(yīng)用目前還沒有報(bào)道,有待于今后的摸索,實(shí)現(xiàn)對優(yōu)良性狀基因型的成功培養(yǎng)。

植株的生長環(huán)境也是影響小孢子培養(yǎng)成敗的因素之一,健康生活力強(qiáng)的供試植株是小孢子培養(yǎng)的基礎(chǔ),植株生長環(huán)境如氣溫、光周期和光照條件影響胚或胚狀體的產(chǎn)量[15]。多數(shù)蕓薹屬植物生長在較低溫(日/夜,10 ℃/5 ℃)有利于小孢子的培養(yǎng)[16-17]。張鳳蘭[18]發(fā)現(xiàn)生長在14~18 h長日照,15~20 ℃條件下的大白菜‘HoMei植株,胚狀體發(fā)生率和植株再生率高。方淑桂等[19]證實(shí)在10~25 ℃下生長的大白菜植株有利于小孢子培養(yǎng)。菜心多數(shù)品種對光周期要求不嚴(yán)格,花芽分化主要受溫度影響。本試驗(yàn)研究結(jié)果表明當(dāng)晝夜氣溫在12~24 ℃時(shí)菜心胚誘導(dǎo)率較高,在夜溫低于10 ℃或日溫高于30 ℃時(shí)均不利于菜心游離小孢子的出胚;春季的夜溫比秋季的夜溫低,導(dǎo)致小孢子培養(yǎng)時(shí)的脫分化能力的提高。推測氣溫變化會(huì)改變小孢子的內(nèi)源激素水平從而影響胚的發(fā)生,影響了小孢子發(fā)育的方向。菜心植株應(yīng)在適宜大田溫度條件或在人工氣候室中栽培有利小孢子培養(yǎng)工作開展。

培養(yǎng)基中蔗糖的供應(yīng)對小孢子的發(fā)生起著碳源、能源和調(diào)節(jié)滲透壓的重要作用,在小孢子培養(yǎng)研究中前人[20-21]多有討論。方淑桂等[21]研究花椰菜游離小孢子培養(yǎng)試驗(yàn)表明太高或太低蔗糖濃度都不利于小孢子存活,胚誘導(dǎo)頻率最高的培養(yǎng)基蔗糖為130 g/L。本試驗(yàn)游離小孢子熱激培養(yǎng)1 d時(shí)采用含170 g/L蔗糖的培養(yǎng)基,之后更換為含130 g/L蔗糖的誘導(dǎo)培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),青翠等不易出胚基因型的游離小孢子培養(yǎng)反應(yīng)比較積極,小孢子膨大快,小孢子的出胚數(shù)得到顯著的提高;可能是剛游離的小孢子需要高濃度蔗糖來保持滲透壓,之后轉(zhuǎn)入低濃度蔗糖是促進(jìn)細(xì)胞的進(jìn)一步分裂。

現(xiàn)在越來越多的試驗(yàn)證明添加適當(dāng)濃度的激素可以促進(jìn)細(xì)胞生長、分裂和不定芽的形成。馮輝等[22]研究了NAA和6-BA的不同質(zhì)量濃度配比對胚誘導(dǎo)、胚再生、植株生根的影響。本試驗(yàn)結(jié)果表明,不同激素組合和濃度對不同基因型小孢子出胚數(shù)的影響有顯著差異,在NLN13誘導(dǎo)培養(yǎng)基中附加0.05 mg/L 6-BA和0.2 mg/L NAA能夠極顯著的誘導(dǎo)小孢子出胚數(shù);繼代培養(yǎng)基中添加低質(zhì)量濃度GA3可以促進(jìn)菜心胚芽長成數(shù)量多的不定芽,但高質(zhì)量濃度的GA3對小孢子胚的繼代產(chǎn)生有抑制作用。

總之,影響小孢子培養(yǎng)和再生植株獲得的因素很多[23-26],菜心小孢子培養(yǎng)技術(shù)需要進(jìn)一步的研究與驗(yàn)證,以便加快應(yīng)用于生產(chǎn)。

參考文獻(xiàn)

[1] 袁素霞, 劉玉梅, 方智遠(yuǎn), 等. 結(jié)球甘藍(lán)和青花菜小孢子胚植株再生[J]. 植物學(xué)報(bào), 2010(2): 226-232.

[2] 宋立曉, 馮 翠, 曾愛松, 等. 影響青花菜游離小孢子培養(yǎng)胚胎發(fā)生的因子[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2010, 26(6): 1 319-1 322.

[3] 姚秋菊, 蔣武生, 原玉香, 等. 游離小孢子培養(yǎng)育成早熟大白菜新品種‘豫新58[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2008, 35(6): 929-929.

[4] 成 妍, 班青宇, 王 倩, 等. 不結(jié)球白菜游離小孢子培養(yǎng)及再生植株的倍性鑒定[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2009, 32(2): 25-29.

[5] Chanana N P, Dhawan V, Bhojwani S S, et al. Morphogenesis in isolated microspore cultures of Brassica juncea[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 2005, 83: 169-177

[6] Takahashi Y, Yokoi S, Takahata Y. Effects of genotypes and culture conditions on microspore embryogenesis and plant regeneration in several subspecies of Brassica rapa L.[J]. Plant Biotechnol Rep, 2012, 6: 297-304

[7] Lionneton E, Beuret W, Delaitre C, et al. Improved microspore culture and doubled-haploid plant regeneration in the brown condiment mustard(Brassica juncea)[J]. Plant Cell Reports, 2001, 20: 126-130

[8] Wang T T, Li H X, Zhang J H, et al. Initiation and development of microspore embryogenesis in recalcitrant purple flowering stalk(Brassica campestris ssp.chinensis var.purpurea Hort.)genotypes[J]. Scientia Horticulturae, 2009, 121: 419-424.

[9] 朱允華, 劉明月, 吳朝林. 影響菜心游離小孢子培養(yǎng)的因素[J]. 長江蔬菜, 2003(9): 46-47.

[10] 方淑桂, 陳文輝, 曾小玲, 等. 大白菜游離小孢子培養(yǎng)技術(shù)研究初報(bào)[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2003, 18(2): 123-126.

[11]于文佳, 侯喜林, 趙曉嫚, 等. 小菘菜游離小孢子培養(yǎng)和植株再生[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2013(2): 4.

[12] 顧宏輝, 唐桂香, 張國慶, 等. 冬性花椰菜的小孢子胚誘導(dǎo)和植株再生研究[J]. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版), 2004, 30(1): 34-38.

[13] Cheng Y, Ma R, Jiao Y, et al. Impact of genotype, plant growth regulators and activated charcoal on embryogenesis induction in microspore culture of pepper(Capsicum annuum L.)[J]. South African Journal of Botany, 2013, 88: 306-309.

[14] 陳文輝, 方淑桂, 曾小玲, 等. 甘藍(lán)和青花菜雜種小孢子培養(yǎng)[J]. 熱帶亞熱帶植物學(xué)報(bào), 2006, 14(4): 321-326.

[15] Ferrie A M R, Irmen K I, Beattie A D, et al. Isolated microspore culture of oat(Avena sativa L.)for the production of doubled haploids: effect of pre~culture and post~culture conditions[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture(PCTOC), 2014, 116(1): 89-96.

[16] Baillie A M R, Epp D J, Hutcheson D, et al. In vitro culture of isolated microspores and regeneration of plants in Brassica campestris[J]. Plant cell reports, 1992, 11(5~6): 234-237.

[17] Takahata Y, Brown D C W, Keller W A. Effect of donor plant age and inflorescence age on microspore culture of Brassica napus L[J]. Euphytica, 1991, 58(1): 51-55.

[18] 張鳳蘭. 環(huán)境條件對白菜小孢子培養(yǎng)的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào), 1994, 9(1): 95-100.

[19] 方淑桂, 陳文輝, 曾小玲, 等. 大白菜游離小孢子培養(yǎng)技術(shù)研究初報(bào)[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2003, 18(2): 123-126.

[20] 張曉芬, 王曉武, 張延國, 等. 花椰菜游離小孢子培養(yǎng)再生植株研究[J]. 中國蔬菜, 2005(1): 16-17.

[21] 方淑桂, 朱朝輝, 曾小玲, 等. 花椰菜游離小抱子培養(yǎng)及影響因子[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2006, 2(1): 138-142

[22] 馮 輝, 郭 姝, 馮建云, 等. 菜用羽衣甘藍(lán)的小孢子胚誘導(dǎo)和植株再生[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2009, 36(4): 587-592.

[23]張 慧, 汪承剛, 宋江華, 等. 蕓薹屬蔬菜游離小孢子成胚影響因素研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào), 2013, 29(10): 92-96.

[24]董彥琪, 肖 艷, 段風(fēng)華, 等. 大白菜游離小孢子培養(yǎng)和植株再生技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 中國瓜菜, 2012, 25(1): 44-48.

[25] Ferrie A M R, Caswell K L. Isolated microspore culture techniques and recent progress for haploid and doubled haploid plant production[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture(PCTOC), 2011, 104(3): 301-309.

[26] Takahata Y, Takahashi Y, Tsuwamoto R. Microspore Culture and Doubled Haploid Technology[M]//Biotechnology of Crucifers. Springer New York, 2013: 45-62.

猜你喜歡
菜心基因型
連州菜心秋種忙
山西晉中地區(qū)塑料大棚菜心品種篩選
梅州地區(qū)不同早熟菜心品種比較試驗(yàn)
上海郊區(qū)牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)基因型分析
DNA微陣列芯片法與直接測序法檢測CYP2C19基因型的比較研究
最好的老年人食譜——牛肝菌扒菜心
一些菜心,一些故事
西安地區(qū)育齡婦女MTHFRC677T基因型分布研究
BAMBI基因敲除小鼠的繁育、基因型鑒定
甘蔗黃葉病毒基因型研究進(jìn)展