郭鳳柳+熊蕊+劉曉慧+趙同欣+王娜+顏紅
摘要:建立了驢源性成分的快速分子檢測(cè)方法,確立了1對(duì)驢源性成分的特異性引物HorseF/HorseR,擴(kuò)增目的片段的長(zhǎng)度是294 bp,經(jīng)驗(yàn)證引物對(duì)驢源性成分的特異性良好,確立了PCR反應(yīng)的最佳反應(yīng)體系和最優(yōu)反應(yīng)條件。反應(yīng)體系的檢測(cè)靈敏度是13.7 pg/μL。擴(kuò)增片段經(jīng)AluⅠ酶切分析確認(rèn),所得181、113 bp片段與分析結(jié)果一致。利用該方法對(duì)市售樣品進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確。
關(guān)鍵詞:驢源性成分;檢測(cè);PCR反應(yīng);肉品貿(mào)易;造假檢測(cè)
中圖分類號(hào):S851.34 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1002-1302(2014)08-0035-04
隨著人們生活水平的提高,對(duì)肉的要求也越來越高,而目前國(guó)內(nèi)市場(chǎng)上在肉和肉制品的生產(chǎn)與銷售中,一些不法商家或個(gè)人利用摻雜摻假、以次充好等手段欺騙消費(fèi)者以牟取暴利的事件屢屢出現(xiàn)。我國(guó)食品工業(yè)飛速發(fā)展,食品摻假方式越來越多,范圍越來越廣,內(nèi)容越來越復(fù)雜。一些不法商家或個(gè)人為了追求自身利益以低價(jià)、劣質(zhì)肉冒充高價(jià)、優(yōu)質(zhì)肉[1],如用雞肉冒充豬肉,用豬肉、鴨肉冒充牛肉、羊肉等造假行為最為常見。這不僅涉及經(jīng)濟(jì)、營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和食品安全等問題,更直接影響消費(fèi)者健康。此外,在清真食品中摻雜豬肉等行為還涉及宗教信仰等問題。因此,對(duì)食品中原料肉進(jìn)行摻假、摻雜檢驗(yàn)十分必要,其重點(diǎn)就是快速、準(zhǔn)確鑒定肉制品品種。
保定驢肉火燒是著名小吃,和“保定三寶”并駕齊驅(qū)。驢肉中富含人體必需的氨基酸和脂肪酸,是一種高蛋白、低脂肪的營(yíng)養(yǎng)食物。此外,驢肉中礦物元素鐵含量高于其他畜禽肉,其食用價(jià)值高、營(yíng)養(yǎng)豐富、味道鮮美,值得大力開發(fā)研究和推廣[2]。也是由于上述原因,驢肉在人們?nèi)粘I钪械男枨罅吭絹碓酱?,價(jià)格越來越高,致使其摻假問題也越來越普遍,因此肉種類鑒定是食品分析的一個(gè)重要方面。PCR技術(shù)是食品中肉類成分鑒別的主流技術(shù),研究對(duì)象集中在市場(chǎng)上常見的羊肉、牛肉、豬肉、雞肉上,目前還沒有關(guān)于驢源性成分PCR檢測(cè)方法的報(bào)道。本研究合成了1對(duì)用于檢測(cè)驢源性成分的特異性引物,通過對(duì)反應(yīng)體系的摸索及反應(yīng)條件的優(yōu)化,驗(yàn)證了該方法的特異性與靈敏度,建立了鑒定驢源性成分的PCR技術(shù),旨在為杜絕食品貿(mào)易中的欺騙行為提供檢測(cè)方法。
1 材料與方法
1.1 主要試劑與儀器
蛋白酶K、RNA酶、dNTPs、10×PCR緩沖液、MgCl2、Taq DNA聚合酶、2 000 bp ladder DNA marker、DNA瓊脂糖凝膠回收試劑盒以及血液、細(xì)胞、組織基因組DNA提取試劑盒等均購(gòu)自北京天根生化科技有限公司;Sau3AⅠ、AluⅠ限制性內(nèi)切酶購(gòu)自寶生物工程有限公司。引物合成及序列測(cè)定均由生工生物工程(上海)股份有限公司完成;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
試驗(yàn)儀器:進(jìn)口ABI梯度PCR擴(kuò)增儀、凝膠成像儀及電泳系統(tǒng)、sigma臺(tái)式離心機(jī)。
1.2 PCR引物
合成1對(duì)特異性引物,用高壓滅菌后的超純水溶解,配制成100 mol/L的儲(chǔ)備液。引物序列:上游引物序列為5′-TGCCACAGTTGGATACATCAAC-3′;下游引物序列為5′-ATTGAGATTAGGCGATTGTT-3′;擴(kuò)增目的條帶長(zhǎng)294 bp。
1.3 樣本總DNA的提取
驢肉基因組DNA提取根據(jù)血液、細(xì)胞、組織基因組DNA提取試劑盒說明書進(jìn)行。取適量基因組DNA在紫外分光光度計(jì)下檢測(cè)其濃度和純度。當(dāng)D260 nm/D280 nm為1.7~1.9時(shí),DNA純度才適宜進(jìn)行PCR擴(kuò)增。
1.4 目的條帶擴(kuò)增
PCR反應(yīng)體系:10×PCR反應(yīng)緩沖液(Mg2+ free)5 μL,25 mmol/L MgCl2 3 μL,2.5 mmol/L 4×dNTPs 4 μL,引物HorseF和HorseR(10 μmol/L)各1 μL,DNA 模板10 μL,Taq DNA聚合酶(5 U/μL)0.3 μL,補(bǔ)足無菌超純水到25 μL。
PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性60 s,56 ℃退火45 s,72 ℃延伸45 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min。結(jié)束后4 ℃保存。
PCR結(jié)束后用2%瓊脂糖凝膠,TAE電泳緩沖系統(tǒng),9 V/cm 恒壓電泳,2 000 bp ladder作為分子量對(duì)照對(duì)目的條帶進(jìn)行檢測(cè)。
1.5 目的條帶Sau3AⅠ、AluⅠ的酶切鑒定及測(cè)序
由于目的條帶可能是馬源性成分,因此對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物要用馬源性成分的限制性內(nèi)切酶Sau3AⅠ進(jìn)行酶切,片段大小分別是226、68 bp。驢源性成分的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)限制性內(nèi)切酶AluⅠ進(jìn)行酶切,片段大小分別是113、181 bp。
用瓊脂糖凝膠回收試劑盒回收目的條帶,將其進(jìn)行酶切反應(yīng),體系為:Sau3AⅠ/AluⅠ1 μL,10×H Buffer 5 μL,PCR回收產(chǎn)物20 μL,用無菌ddH2O補(bǔ)足到50 μL。將反應(yīng)體系配制好后放入37 ℃溫浴1 h后65 ℃溫浴5 min終止反應(yīng),酶切產(chǎn)物用2.5%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè)。
將回收的目的條帶交由生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行序列測(cè)定,序列校對(duì)后,在GenBank中進(jìn)行Blastn比對(duì)分析,驗(yàn)證所得片段。
1.6 檢測(cè)體系的靈敏度、特異性檢測(cè)
1.6.1 靈敏性檢測(cè)
將熟驢肉的DNA模板依次進(jìn)行10倍梯度稀釋,直到10-6,每個(gè)稀釋度各取2 μL作為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,同時(shí)設(shè)立陰性對(duì)照、陽性對(duì)照,電泳檢測(cè)。
1.6.2 特異性檢測(cè)
取已制備的牛、羊、狗、兔、羊、鴨等15種動(dòng)物肉的DNA各0.1 μg作為模板,加入體系中進(jìn)行擴(kuò)增,同時(shí)設(shè)立陽性對(duì)照及空白對(duì)照,電泳檢測(cè)。
1.7 市售肉制品檢測(cè)
購(gòu)置市售驢肉火燒、驢肉大餅和真空袋包裝的驢肉樣品,提取其DNA,用已建立的檢測(cè)方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定。
2 結(jié)果與分析
2.1 基因組提取和引物擴(kuò)增結(jié)果
對(duì)熟驢肉提取的基因組DNA的D260 nm/D280 nm值均為 1.7~1.9,說明質(zhì)量較好,可以用于下游試驗(yàn)操作。引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶(圖1),目的條帶回收后的酶切效果也較好(圖2),得到了181、113 bp的條帶。擴(kuò)增的目的片段測(cè)序結(jié)果經(jīng)校對(duì)后,在NCBI中經(jīng) Blastn分析,結(jié)果表明該片段的核苷酸序列與GenBank中已登記的Equus asinus(家驢)的相似性是100%,與Equus hemionus(野驢)等基因序列的相似性大于95 %,證明所得片段為目的片段。
2.2 PCR反應(yīng)的靈敏度
驢肉提取的DNA濃度是68.5 ng/μL,將提取的DNA進(jìn)行10~106倍梯度稀釋后,如圖4所示,在模板稀釋104倍后再未出現(xiàn)反應(yīng)條帶,因此反應(yīng)體系的靈敏度是 13.7 pg/μL。
2.3 PCR反應(yīng)的特異性
引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶。如圖5所示,引物對(duì)其他動(dòng)物的DNA沒有擴(kuò)增出條帶,但是對(duì)羊、狗的基因組也擴(kuò)增出了相似條帶。如圖6所示,進(jìn)一步進(jìn)行酶切驗(yàn)證,結(jié)果沒有得到正確的酶切結(jié)果,表明引物的特異性較高。
3 結(jié)論與討論
肉類檢測(cè)方法有多種多樣,其中ELISA技術(shù)應(yīng)用較多,ELISA技術(shù)是將抗原、抗體反應(yīng)的高度特異性和酶的高效催化作用相結(jié)合發(fā)展建立的一種免疫分析方法[3],但是該方法有一定的局限性:首先要有足夠的抗體供檢測(cè)分析;其次肉類食品在加工過程中經(jīng)過加熱、高壓、輻射等處理,蛋白遭到破壞,不適合用ELISA方法檢測(cè)。DNA分子分布廣泛、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,作為遺傳信息的載體,分子結(jié)構(gòu)中攜帶了豐富的種源特異性信息[4],DNA檢測(cè)是目前物種鑒定的最有效手段[5-8]。DNA鑒定主要是通過PCR反應(yīng)來實(shí)現(xiàn)。目前還沒有驢肉檢測(cè)方法,一般是憑色澤、紋理等簡(jiǎn)單方法進(jìn)行辨認(rèn),因此需要找到具有說服力的檢測(cè)方法。本研究使用的PCR方法靈敏度高、特異性強(qiáng)、速度快。
肉類產(chǎn)品放置1、2、9、16 d后,DNA片段會(huì)由3萬bp降解到1.6萬bp。加熱到80 ℃,DNA片段長(zhǎng)度不受影響,而達(dá)到100 ℃則DNA長(zhǎng)度銳減至1 100 bp,加熱至120 ℃減至600 bp以下。市售驢肉多經(jīng)過高壓處理,因此本研究中選擇294 bp的短片段,這樣即使經(jīng)過高壓處理,肉中模板DNA也不被破壞而出現(xiàn)假陰性結(jié)果。
引物是根據(jù)驢肉線粒體DNA設(shè)計(jì)合成的,因此具有高度的特異性,本研究表明,引物對(duì)其他動(dòng)物的基因組DNA沒有擴(kuò)增到可以酶切到目的片段的PCR產(chǎn)物,因此該檢測(cè)技術(shù)具有高度的特異性。
參考文獻(xiàn):
[1]劉帥帥,李 宏,羅世芝,等. PCR技術(shù)在肉類摻假檢驗(yàn)中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2011,2(6):280-284.
[2]尤 娟,羅永康,張巖春,等. 驢肉主要營(yíng)養(yǎng)成分及與其它畜禽肉的分析比較[J]. 肉類研究,2008(7):20-22.
[3]張占軍,王富花. 酶聯(lián)免疫吸附技術(shù)及其在食品安全檢測(cè)中的應(yīng)用[J]. 食品研究與開發(fā),2011,32(1):157-160.
[4]Fajardo V,Gonzalez I,Rojas M,et al. A review of current PCR-based methodologies for the authentication of meats from game animal species[J]. Trends in Food Science & Technology,2010,21(8):408-421.
[5]王 薇,王利麗,熊莉麗,等. ITS序列作為DNA條形碼在蟲草鑒定及系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系中的研究與應(yīng)用[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2012,28(3):680-682.
[6]Aida A A,Man Y B,Wong C M,et al. Analysis of raw meats and fats of pigs using polymerase chain reaction for halal authentication[J]. Meat Science,2005,69(1):47-52.
[7]田慧敏,劉鐵志. DNA分子標(biāo)記技術(shù)在紅菇分子鑒定中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(4):28-31.
[8]Lockley A K,Bardsley R G. DNA-based methods for food authentication[J]. Trends in Food Science & Technology,2000,11(2):67-77.
1.7 市售肉制品檢測(cè)
購(gòu)置市售驢肉火燒、驢肉大餅和真空袋包裝的驢肉樣品,提取其DNA,用已建立的檢測(cè)方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定。
2 結(jié)果與分析
2.1 基因組提取和引物擴(kuò)增結(jié)果
對(duì)熟驢肉提取的基因組DNA的D260 nm/D280 nm值均為 1.7~1.9,說明質(zhì)量較好,可以用于下游試驗(yàn)操作。引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶(圖1),目的條帶回收后的酶切效果也較好(圖2),得到了181、113 bp的條帶。擴(kuò)增的目的片段測(cè)序結(jié)果經(jīng)校對(duì)后,在NCBI中經(jīng) Blastn分析,結(jié)果表明該片段的核苷酸序列與GenBank中已登記的Equus asinus(家驢)的相似性是100%,與Equus hemionus(野驢)等基因序列的相似性大于95 %,證明所得片段為目的片段。
2.2 PCR反應(yīng)的靈敏度
驢肉提取的DNA濃度是68.5 ng/μL,將提取的DNA進(jìn)行10~106倍梯度稀釋后,如圖4所示,在模板稀釋104倍后再未出現(xiàn)反應(yīng)條帶,因此反應(yīng)體系的靈敏度是 13.7 pg/μL。
2.3 PCR反應(yīng)的特異性
引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶。如圖5所示,引物對(duì)其他動(dòng)物的DNA沒有擴(kuò)增出條帶,但是對(duì)羊、狗的基因組也擴(kuò)增出了相似條帶。如圖6所示,進(jìn)一步進(jìn)行酶切驗(yàn)證,結(jié)果沒有得到正確的酶切結(jié)果,表明引物的特異性較高。
3 結(jié)論與討論
肉類檢測(cè)方法有多種多樣,其中ELISA技術(shù)應(yīng)用較多,ELISA技術(shù)是將抗原、抗體反應(yīng)的高度特異性和酶的高效催化作用相結(jié)合發(fā)展建立的一種免疫分析方法[3],但是該方法有一定的局限性:首先要有足夠的抗體供檢測(cè)分析;其次肉類食品在加工過程中經(jīng)過加熱、高壓、輻射等處理,蛋白遭到破壞,不適合用ELISA方法檢測(cè)。DNA分子分布廣泛、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,作為遺傳信息的載體,分子結(jié)構(gòu)中攜帶了豐富的種源特異性信息[4],DNA檢測(cè)是目前物種鑒定的最有效手段[5-8]。DNA鑒定主要是通過PCR反應(yīng)來實(shí)現(xiàn)。目前還沒有驢肉檢測(cè)方法,一般是憑色澤、紋理等簡(jiǎn)單方法進(jìn)行辨認(rèn),因此需要找到具有說服力的檢測(cè)方法。本研究使用的PCR方法靈敏度高、特異性強(qiáng)、速度快。
肉類產(chǎn)品放置1、2、9、16 d后,DNA片段會(huì)由3萬bp降解到1.6萬bp。加熱到80 ℃,DNA片段長(zhǎng)度不受影響,而達(dá)到100 ℃則DNA長(zhǎng)度銳減至1 100 bp,加熱至120 ℃減至600 bp以下。市售驢肉多經(jīng)過高壓處理,因此本研究中選擇294 bp的短片段,這樣即使經(jīng)過高壓處理,肉中模板DNA也不被破壞而出現(xiàn)假陰性結(jié)果。
引物是根據(jù)驢肉線粒體DNA設(shè)計(jì)合成的,因此具有高度的特異性,本研究表明,引物對(duì)其他動(dòng)物的基因組DNA沒有擴(kuò)增到可以酶切到目的片段的PCR產(chǎn)物,因此該檢測(cè)技術(shù)具有高度的特異性。
參考文獻(xiàn):
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[8]Lockley A K,Bardsley R G. DNA-based methods for food authentication[J]. Trends in Food Science & Technology,2000,11(2):67-77.
1.7 市售肉制品檢測(cè)
購(gòu)置市售驢肉火燒、驢肉大餅和真空袋包裝的驢肉樣品,提取其DNA,用已建立的檢測(cè)方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定。
2 結(jié)果與分析
2.1 基因組提取和引物擴(kuò)增結(jié)果
對(duì)熟驢肉提取的基因組DNA的D260 nm/D280 nm值均為 1.7~1.9,說明質(zhì)量較好,可以用于下游試驗(yàn)操作。引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶(圖1),目的條帶回收后的酶切效果也較好(圖2),得到了181、113 bp的條帶。擴(kuò)增的目的片段測(cè)序結(jié)果經(jīng)校對(duì)后,在NCBI中經(jīng) Blastn分析,結(jié)果表明該片段的核苷酸序列與GenBank中已登記的Equus asinus(家驢)的相似性是100%,與Equus hemionus(野驢)等基因序列的相似性大于95 %,證明所得片段為目的片段。
2.2 PCR反應(yīng)的靈敏度
驢肉提取的DNA濃度是68.5 ng/μL,將提取的DNA進(jìn)行10~106倍梯度稀釋后,如圖4所示,在模板稀釋104倍后再未出現(xiàn)反應(yīng)條帶,因此反應(yīng)體系的靈敏度是 13.7 pg/μL。
2.3 PCR反應(yīng)的特異性
引物對(duì)驢肉的基因組DNA擴(kuò)增出了目的條帶。如圖5所示,引物對(duì)其他動(dòng)物的DNA沒有擴(kuò)增出條帶,但是對(duì)羊、狗的基因組也擴(kuò)增出了相似條帶。如圖6所示,進(jìn)一步進(jìn)行酶切驗(yàn)證,結(jié)果沒有得到正確的酶切結(jié)果,表明引物的特異性較高。
3 結(jié)論與討論
肉類檢測(cè)方法有多種多樣,其中ELISA技術(shù)應(yīng)用較多,ELISA技術(shù)是將抗原、抗體反應(yīng)的高度特異性和酶的高效催化作用相結(jié)合發(fā)展建立的一種免疫分析方法[3],但是該方法有一定的局限性:首先要有足夠的抗體供檢測(cè)分析;其次肉類食品在加工過程中經(jīng)過加熱、高壓、輻射等處理,蛋白遭到破壞,不適合用ELISA方法檢測(cè)。DNA分子分布廣泛、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,作為遺傳信息的載體,分子結(jié)構(gòu)中攜帶了豐富的種源特異性信息[4],DNA檢測(cè)是目前物種鑒定的最有效手段[5-8]。DNA鑒定主要是通過PCR反應(yīng)來實(shí)現(xiàn)。目前還沒有驢肉檢測(cè)方法,一般是憑色澤、紋理等簡(jiǎn)單方法進(jìn)行辨認(rèn),因此需要找到具有說服力的檢測(cè)方法。本研究使用的PCR方法靈敏度高、特異性強(qiáng)、速度快。
肉類產(chǎn)品放置1、2、9、16 d后,DNA片段會(huì)由3萬bp降解到1.6萬bp。加熱到80 ℃,DNA片段長(zhǎng)度不受影響,而達(dá)到100 ℃則DNA長(zhǎng)度銳減至1 100 bp,加熱至120 ℃減至600 bp以下。市售驢肉多經(jīng)過高壓處理,因此本研究中選擇294 bp的短片段,這樣即使經(jīng)過高壓處理,肉中模板DNA也不被破壞而出現(xiàn)假陰性結(jié)果。
引物是根據(jù)驢肉線粒體DNA設(shè)計(jì)合成的,因此具有高度的特異性,本研究表明,引物對(duì)其他動(dòng)物的基因組DNA沒有擴(kuò)增到可以酶切到目的片段的PCR產(chǎn)物,因此該檢測(cè)技術(shù)具有高度的特異性。
參考文獻(xiàn):
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