王艷綜述,石蓓審校
微小核糖核酸與干細(xì)胞移植治療心肌梗死的研究進(jìn)展
王艷綜述,石蓓審校
微小核糖核酸(miRNAs)是一種內(nèi)源性非編碼調(diào)控單鏈小分子核糖核酸,可通過與目標(biāo)信使核糖核酸(mRNA)結(jié)合,調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄后翻譯過程。有研究顯示miRNAs參與修復(fù)受損心肌。此外,越來越多的研究發(fā)現(xiàn)不同的miRNAs可參與干細(xì)胞功能調(diào)控,調(diào)節(jié)干細(xì)胞存活、遷移、分化等過程,進(jìn)而通過改善移植干細(xì)胞命運(yùn),提高心肌梗死后心功能。本文旨在對(duì)miRNAs與干細(xì)胞移植治療心肌梗死的研究現(xiàn)狀及所面臨的問題進(jìn)行綜述。
心肌梗死;微小核糖核酸;干細(xì)胞移植;再生治療
冠狀動(dòng)脈疾病在我國乃至全球發(fā)病率及死亡率都高居首位,其中心肌梗死是臨床常見急危重癥,目前的治療方法雖然能顯著改善心肌梗死患者的臨床預(yù)后,但是因壞死的心肌細(xì)胞難以再生,存活的心肌經(jīng)歷了缺氧及心臟重構(gòu),致使心臟功能嚴(yán)重受損。目前干細(xì)胞移植治療心肌梗死,被認(rèn)為是再生壞死心肌細(xì)胞,修復(fù)梗死心肌最具前景的治療方法,各種類型干細(xì)胞已用于實(shí)驗(yàn)及臨床研究,然而不管何種類型干細(xì)胞均存在自身優(yōu)勢(shì)與局限性[1]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療心肌梗死可顯著改善其心功能,然而也有研究顯示了骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化為心肌細(xì)胞的不確定性,近期的幾個(gè)大型臨床實(shí)驗(yàn)中對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療心肌梗死的確切療效亦無突破性進(jìn)展[2,3]。 胚胎干細(xì)胞及多能誘導(dǎo)干細(xì)胞是到目前為止是最具潛力替代壞死心肌的種子細(xì)胞源,但首先得解決其臨床應(yīng)用的安全性及倫理問題。心臟干細(xì)胞不僅可定向分化為心肌細(xì)胞、血管平滑肌細(xì)胞及內(nèi)皮細(xì)胞,并具有組織特異性與低免疫原性等特點(diǎn)。心肌損傷后,大部分心臟干細(xì)胞即進(jìn)入細(xì)胞周期、復(fù)制并定向分化為心肌細(xì)胞譜系,顯著改善心肌梗死后心功能[4]。且心臟干細(xì)胞在I/II期臨床試驗(yàn)中均獲得可喜的成果[5,6]。然而van Berlo等[7]近期的一項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn),成年及慢性疾病的小鼠心臟受損后,心臟固有干細(xì)胞確實(shí)能產(chǎn)生出新的心肌細(xì)胞,但所占百分率僅為3%或更低。可能在改善心功能方面并不具有顯著性。由于心肌梗死后,心臟微環(huán)境變化極易導(dǎo)致移植干細(xì)胞發(fā)生凋亡,干細(xì)胞生物學(xué)利用率受限,減弱了其對(duì)心肌梗死的治療療效。因此,提高干細(xì)胞移植后的存活率及功能發(fā)揮將為轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)發(fā)展與心臟疾病的防治開拓新的方向與策略。
miRNAs作為新一代調(diào)控細(xì)胞命運(yùn)的決定因素,首次由Lee等[8]在秀麗線蟲體內(nèi)發(fā)現(xiàn),隨著對(duì)其結(jié)構(gòu)及生理活性的研究發(fā)現(xiàn):miRNAs是由長鏈初級(jí)核糖核酸(pri-miRNA)在細(xì)胞核內(nèi)被核糖核酸酶Drosha剪切成具有莖環(huán)結(jié)構(gòu)的miRNA前體(pre-miRNA)[9]。隨后pre-miRNA在轉(zhuǎn)運(yùn)因子Exponin-5的作用下進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)被剪切成20~24 nt的雙鏈miRNAs,雙鏈miRNAs在特異性解旋酶作用下形成單鏈,從而成為成熟的miRNAs并在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)表達(dá)其生理活性。 miRNAs的作用機(jī)制是通過結(jié)合到目標(biāo)mRNA的 3'非編碼區(qū)(3'UTR),抑制靶標(biāo)mRNA的翻譯從而起到重要的負(fù)性調(diào)控作用[10]。目前為止,在人類組織細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)大約有2 000個(gè)miRNAs 參與調(diào)控人類總基因的30%~50%的表達(dá)[11]。研究還發(fā)現(xiàn),在不同組織不同細(xì)胞miRNAs的表達(dá)譜及序列特征均有所不同,甚至細(xì)胞不同發(fā)育分化階段均會(huì)出現(xiàn)miRNAs的差異表達(dá),起到調(diào)控細(xì)胞“定時(shí)、定向”分化的作用。且每個(gè)miRNAs可同時(shí)有多個(gè)靶基因位點(diǎn),而每個(gè)靶基因位點(diǎn)可能同時(shí)受多個(gè)miRNAs調(diào)控,可見miRNAs種類繁多,其靶基因位點(diǎn)及功能作用復(fù)雜多樣。
雖然目前各種成體多能干細(xì)胞,胚胎干細(xì)胞,及誘導(dǎo)重組干細(xì)胞已成功用于治療缺血性心肌病并改善心梗后心功能[12]。然而干細(xì)胞移植治療心肌梗死仍處于初級(jí)階段,在臨床試驗(yàn)及動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn)的長期觀察中發(fā)現(xiàn): (1)各種類型干細(xì)胞均存在移植存活率低的問題,尤其是從衰老機(jī)體或疾病狀態(tài)下獲取的干細(xì)胞,其存活及功能障礙更為明顯; (2)心肌梗死后移植干細(xì)胞募集到梗死區(qū)及與原位細(xì)胞長期整合作用在目前的大多數(shù)研究均未見成效[13]; (3)移植干細(xì)胞分化而來的功能心肌細(xì)胞十分有限,是否能夠在體內(nèi)長期維持,疾病及衰老狀態(tài)是否影響其心源性分化潛能目前均尚未得知。因此,現(xiàn)已采取多種措施改善移植干細(xì)胞命運(yùn)及功能,提高其修復(fù)梗死心肌的有效性。由于miRNAs參與調(diào)控基因表達(dá)網(wǎng)絡(luò)并具有容易被小分子干擾等特性,因此可用于干細(xì)的胞移植前處理。近年來,隨著對(duì)miRNAs與干細(xì)胞的研究發(fā)現(xiàn), 在多種干細(xì)胞中均存在各自特異的miRNAs表達(dá),對(duì)干細(xì)胞的生物學(xué)活動(dòng)具有重要的調(diào)控作用。以往研究顯示幾種miRNAs家族成員可維持胚胎干細(xì)胞的多能性,并且將不同的miRNAs聯(lián)合過表達(dá)就足以誘導(dǎo)多能干細(xì)胞的產(chǎn)生;而一些miRNAs
可部分抑制維持干細(xì)胞未分化狀態(tài)基因的表達(dá),并激活干細(xì)胞譜系特異性基因,發(fā)揮促進(jìn)干細(xì)胞分化作用[14,15],此外,干細(xì)胞所釋放的外泌體含有促進(jìn)受損心肌組織修復(fù)的miRNAs。因此,干細(xì)胞的功能與miRNAs調(diào)控存在相關(guān)性。事實(shí)上,在心血管疾病的發(fā)生發(fā)展過程中,不同的miRNAs產(chǎn)生差異性表達(dá),逆轉(zhuǎn)差異表達(dá)的miRNAs可能使冠脈疾病患者的細(xì)胞功能發(fā)生改變[16,17]
2.1 miRNAs促進(jìn)移植干細(xì)胞存活
心肌損傷后釋放一系列炎癥因子及細(xì)胞因子,致使心臟微環(huán)境發(fā)生變化,極大影響了干細(xì)胞的存活,限制了移植細(xì)胞的功能發(fā)揮。近來的多項(xiàng)研究表明多種miRNAs家族成員可促進(jìn)心肌梗死后移植細(xì)胞存活。 Huang等[18]報(bào)道在小鼠心肌梗死模型中,將過表達(dá)miRNA-126的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植到心肌梗死區(qū)域,可促進(jìn)新生血管形成,修復(fù)梗死心肌。另有報(bào)道稱,過表達(dá)miRNA-21的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,可通過改善線粒體膜電位損傷從而促進(jìn)缺血缺氧條件下骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的存活[19]。隨后Hu等[20]的研究顯示,將分別攜帶miRNA-21、miRNA-24、miRNA-221的大鼠心臟干細(xì)胞在體外模擬的氧化應(yīng)激環(huán)境下凋亡減少,更有趣的是,同時(shí)過表達(dá)這三種miRNAs比單獨(dú)作用的抗凋亡能力強(qiáng),其作用機(jī)制可能是與凋亡相關(guān)蛋白Bim結(jié)合,抑制其表達(dá),從而發(fā)揮促細(xì)胞存活作用。此外,過表達(dá)miRNA-155可通過抑制受體相互作用蛋白1(RIP1),進(jìn)而激活蘇氨酸激酶(AKT)信號(hào)通路,促進(jìn)氧化應(yīng)激環(huán)境中心臟干細(xì)胞存活[21]。由此可見,miRNAs可增強(qiáng)移植干細(xì)胞抵御心梗局部缺血缺氧微環(huán)境的能力,為干細(xì)胞發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)奠定基礎(chǔ)。
2.2 miRNAs與干細(xì)胞遷移
miRNAs不但能夠促進(jìn)移植干細(xì)胞存活,一些miRNAs還參與調(diào)控移植干細(xì)胞的遷移作用?;|(zhì)衍生因子-1(SDF-1)是CXC族趨化因子成員,可與其受體CXCR4相互作用,對(duì)干細(xì)胞遷移起關(guān)鍵作用。近年來研究顯示:miRNA-150與miRNA-146其中一個(gè)靶mRNA即為CXCR4,兩者均可阻斷干細(xì)胞膜表面受體CXCR4翻譯過程,使SDF-1不能有效激活CXCR4及其下游信號(hào)通路,削弱移植細(xì)胞遷移作用[22,23]。因此抑制這兩種miRNAs的表達(dá)可促進(jìn)移植干細(xì)胞遷移至心梗區(qū)域,發(fā)揮修復(fù)梗死心肌作用。然而有報(bào)道稱miRNA-150和miNA-146可與多種凋亡相關(guān)蛋白結(jié)合,其高表達(dá)可對(duì)細(xì)胞存活作用產(chǎn)生積極的影響。MiRNAs對(duì)于生物體的調(diào)控作用是復(fù)雜多樣的,利用miRNAs治療疾病的過程中,需要權(quán)衡利弊。
2.3 miRNAs促進(jìn)干細(xì)胞分化
心肌缺血后再生壞死心肌細(xì)胞,建立有效的血運(yùn)系統(tǒng)對(duì)保護(hù)心臟功能、改善遠(yuǎn)期預(yù)后起關(guān)鍵作用。若只有新生心肌,則會(huì)由于持續(xù)缺血而不能改善心功能;若只有新生血管而無新生心肌,則不能產(chǎn)生收縮壓力。干細(xì)胞向心肌分化的過程是由一系列轉(zhuǎn)錄因子構(gòu)成的信號(hào)網(wǎng)絡(luò)通路調(diào)控,參與該過程的miRNAs可對(duì)干細(xì)胞分化的各個(gè)環(huán)節(jié)進(jìn)行微調(diào)??纱龠M(jìn)移植干細(xì)胞分化為心肌細(xì)胞及促進(jìn)血管新生,修復(fù)壞死心肌組織。
miRNA-1是高度保守的miRNAs家族,也是迄今為止研究最為廣泛的miRNAs之一。miRNA-1是肌特異性miRNA,在胚胎干細(xì)胞體外擬分化為胚體的過程中,miRNA-1可加強(qiáng)其中胚層基因的表達(dá),使其向心肌方向分化。Fu等[24]發(fā)現(xiàn)過表達(dá)miRNA-1不僅能夠促進(jìn)胚胎干細(xì)胞分化為心肌細(xì)胞,還能促進(jìn)分化而來的心肌細(xì)胞的電生理成熟。隨后也繼之報(bào)道過骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞轉(zhuǎn)染miRNA-1后,可通過抑制Notch信號(hào)通路的下游轉(zhuǎn)錄因子Hes-1而發(fā)揮促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化為心肌細(xì)胞的作用[25]。Sluijter等[26]研究認(rèn)為miRNA-1可通過下調(diào)組蛋白去乙?;?(HDAC4)表達(dá)而促進(jìn)人心臟前體細(xì)胞向心肌細(xì)胞分化。此外,Richart 等[27]將胚胎源性心臟干細(xì)胞(SSEA1+/MESP1+)移植到小鼠心肌梗死區(qū)域,可顯著促進(jìn)新生血管形成,而在該類型心臟干細(xì)胞中miRNA-21高表達(dá),可以認(rèn)為miRNA-21可促進(jìn)心臟干細(xì)胞的血管新生作用。
2.4 miRNAs與干細(xì)胞旁分泌效應(yīng)
大量研究證實(shí)心肌受損后移植干細(xì)胞可通過直接分化作用改善心功能,但是由于干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞數(shù)量有限,不足以替補(bǔ)心臟受損丟失的細(xì)胞數(shù)量,因此,不能單純用直接分化機(jī)制解釋干細(xì)胞再生修復(fù)受損心肌的作用。有學(xué)者認(rèn)為干細(xì)胞不但可以直接再生心肌組織,而且還能通過旁分泌效應(yīng)。增加細(xì)胞因子的表達(dá),促進(jìn)血管再生[28]。并有報(bào)道稱干細(xì)胞的旁分泌效應(yīng)大于干細(xì)胞的直接分化作用[29]。
對(duì)干細(xì)胞旁分泌作用的最新研究發(fā)現(xiàn),多種干細(xì)胞可釋放一種納米級(jí)膜性小囊泡,稱為外泌體,對(duì)細(xì)胞之間的相互作用至關(guān)重要?,F(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的外泌體中包含了相關(guān)miRNAs達(dá)764種。這些源于外泌體的 miRNAs在調(diào)控干細(xì)胞分化(let-7,即miRNAs成員之一)、胚胎發(fā)育和器官發(fā)生(miRNA-1)、腫瘤發(fā)生(miRNA-17-18/-19/19b)等生理和病理生理過程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用[30,31]。Chen等[32]發(fā)現(xiàn),心肌祖細(xì)胞的外泌體中富含miRNA-451,將心肌細(xì)胞與含該外泌體的培養(yǎng)基中共培養(yǎng)時(shí)發(fā)現(xiàn),心肌細(xì)胞內(nèi)的miRNA-451含量增加,且細(xì)胞對(duì)缺氧的耐受增強(qiáng),由此證明心肌細(xì)胞可以內(nèi)化心臟祖細(xì)胞釋放的外泌體,并利用miRNA-451啟動(dòng)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)通路而減少缺血再灌注心肌細(xì)胞的凋亡,促進(jìn)損傷細(xì)胞的修復(fù)。
目前干細(xì)胞介導(dǎo)治療心肌梗死面臨著移植存活率低[33],作用機(jī)制不確定性等問題 ,但干細(xì)胞的臨床應(yīng)用前景仍然擁有非常巨大的研究價(jià)值。miRNAs作為轉(zhuǎn)錄調(diào)控的關(guān)鍵分子,對(duì)干細(xì)胞的生物學(xué)功能起著至關(guān)重要的調(diào)節(jié)作用。近年來大量關(guān)于miRNAs改善干細(xì)胞療效的試驗(yàn)研究取得可喜成果,但仍存在許多問題。首先,盡管miRNAs的抑制靶基因表達(dá)的作用非常強(qiáng),但若需要過表達(dá)或抑制相關(guān)miRNAs需要實(shí)施轉(zhuǎn)基因?qū)嶒?yàn),即建立有效的小分子或病毒作為載體。雖然近年來利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)治療疾病已受到很大關(guān)注,歐洲國家亦批準(zhǔn)了第一個(gè)基因療法,并且以病毒作為載體治療心臟病的基因療法被證實(shí)是安全有效的[34,35]。然而大規(guī)模的臨床應(yīng)用還需要經(jīng)過一個(gè)漫長的階段。其次, miRNAs的生物學(xué)功能還遠(yuǎn)遠(yuǎn)未能被人類所了解,作為一種普遍存在的調(diào)控分子,后續(xù)研究將會(huì)發(fā)現(xiàn)更多的miRNAs,進(jìn)一步闡明其靶基因位點(diǎn)和功能,以便確定對(duì)整個(gè)基因網(wǎng)絡(luò)的全面影響是亟待解決的問題。最后,目前對(duì)miRNAs靶基因的預(yù)測(cè)多是通過生物信息軟件來完成,因此仍需進(jìn)行充分的生物學(xué)實(shí)驗(yàn)來證實(shí)。
盡管應(yīng)用miRNAs調(diào)控干細(xì)胞生物學(xué)功能面臨諸多挑戰(zhàn),但它對(duì)改善干細(xì)胞治療缺血性心肌病的作用是有目共睹的,相信隨著研究的進(jìn)一步深入,上訴問題均會(huì)得以解決,
對(duì)miRNAs的了解也必將越來越全面和準(zhǔn)確,這將為生命科學(xué)研究和臨床應(yīng)用miRNAs介導(dǎo)干細(xì)胞治心肌梗死開啟新的時(shí)代。
[1] van der Bogt KE, Sheikh AY, Schrepfer S. et al. Comparison of different adult stem cell types for treatment of myocardial ischemia. Circulation, 2008, 118: S121-S129.
[2] Janssens S, Dubois C, Bogaert J, et al. Autologous bone marrowderived stem-cell transfer in patients with ST-segment elevation myocardial infarction: double-blind, randomized controlled trial. Lancet, 2006, 367: 113-121.
[3] Hare JM, Traverse JH, Henry TD, et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled, dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells( prochymal )after acute myocardial infarction. J Am Coil Cardiol, 2009, 54: 2277-2286.
[4] Ellison GM, Vicinanza C, Smith AJ, et al. Adult c-kitpos cardiac stem cells are necessary and sufficient for functional cardiac regeneration and Repair. Cell, 2013, 8: 827-842.
[5] Chugh AR, Beache GM, Loughran JH, et al. Administration of cardiac stem cells in patients with ischemic cardiomyopathy: the SCIPIO trial: surgical aspects and interim analysis of myocardial function and viability by magnetic resonance. Circulation, 2012, 126: S54-S64.
[6] Bolli R, Chugh AR, D’Amario D, et al. Cardiac stem cells in patients withischaemic cardiomyopathy (SCIPIO): initial results of a randomised phasetrial. Lancet, 2011, 378: 1847-1857.
[7] van Berlo JH, Kanisicak O, Maillet M, et al. c-kit+cells minimally contrib cardiomyocytes to the heart. Nature, 2014, 509: 337-345.
[8] Lee RC, Feinbaum RL, Ambros V, et al . The C. elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14. Cell, 1993, 75: 843-854.
[9] Huntzinger E, Izaurralde E. Gene silencing by microRNAs: contributions of translational repression and mRNA decay. Nat Rev Genet, 2011, 12: 99-110.
[10] Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell, 2004, 116: 281-297.
[11] Iorio MV, Croce CM. MicroRNA dysregulation in cancer: diagnostics, monitoring and therapeutics. A comprehensive review. EMBO Mol Med, 2012, 4: 143-159.
[12] Segers VF, Lee RT. Stem-cell therapy for cardiac disease. Nature, 2008, 451: 937-942.
[13] Chavakis E, Dimmeler S. Homing of progenitor cells to ischemic tissues. Antioxid Redox Sign, 2011, 15: 967-980.
[14] Heinrich EM, Dimmeler S. MicroRNAs and stem cells: control of pluripotency, reprogramming, and lineage commitment. Circ Res, 2012, 110: 1014-1022.
[15] Leonardo TR, Schultheisz HL, Loring JF, et al. The functions of microRNAs in pluripotency and reprogramming. Nat Cell Biol, 2012, 14: 1114-1121.
[16] Jakob P, Doerries C, Briand S, et al. Loss of angiomiR-126 and 130a in angiogenic early outgrowth cells from patients with chronic heart failure: role for impaired in vivo neovascularization and cardiac repair capacity. Circulation, 2012, 126: 2962-2975.
[17] 陸永光, 李浪.微小核糖核酸與冠心病關(guān)系的研究進(jìn)展.中國循環(huán)雜志, 2010, 25: 484-486.
[18] Huang F, Zhu X, Hu XQ, et al. Mesenchymal stem cells modified with miR-126 release angiogenic factors and activate Notch ligand Deltalike-4, enhancing ischemic angiogenesis and cell survival. Int J Mol Med, 2013, 31: 484-492.
[19] Nie Y, Han BM, Liu XB. et al. Identification of microRNAs involved in hypoxia- and serum deprivationInduced apoptosis in mesenchymal stem cells . Int J Biol Sci, 2011, 7: 762-768.
[20] Hu S, Huang M, Nguyen PK, et al. Novel microRNA prosurvival cocktail for improving engraftment and function of cardiac progenitor cell transplantation. Circulation, 2011, 124: S27-S34.
[21] Liu J, van Mil A, Vrijsen K, et al. MicroRNA-155 prevents necrotic cell death in human cardiomyocyte progenitor cells via targeting RIP1. J Cell Mol Med, 2011, 15: 1474-1482.
[22] Tano N, Kim HW, Ashraf M. et al. microRNA-150 regulates mobilization and migration of bone marrow-derived mononuclear cells by targeting Cxcr4. PLoS One, 2011, 6: 2311-2314.
[23] Labbaye C, Spinello I, Quaranta MT, et al. A three-step pathway comprising PLZF/miR-146a/CXCR4controls megakaryopoiesis. Nat Cell Biol, 2008, 10: 788-801.
[24] Fu JD, Rushing SN, Lieu DK. et al. Distinct roles of microRNA-1 and -499 in ventricular specification and functional maturation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. PLoS One, 2011, 6: 2741-2747.
[25] Huang F, Tang L, Fang ZF, et a1.MiR-1 medited induction of eardiogenesis in mesenehymal stem cells via downregulation of hes-1. Biomed Res Int, 2013, 10: 216-286.
[26] Sluijter JP, van Mil A, van Vliet P, et a1.MicroRNA-1 and MicroRNA -499 regulate differentiation and proliferation in human_ derived eardiomyocyte pmgenitor cells.Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2010, 30: 859-868.
[27] Richart A, Loyer X, Howangyin K, et al. MicroRNA-21coordinates human multipotent cardiovascular progenitors therapeutic potential. Stem Cells, 2014, 32: 2908-2922.
[28] Chimenti I, Smith RR, Li TS, et al. Relative roles of direct regeneration versus paracrine effects of human cardiosphere-derived cells transplanted into infarcted mice. Circ Res, 2010, 106: 971-980.
[29] Chimenti I, Smith RR, Leppo MK, et al. Human cardiac progenitor cells secrete paracrine factors in vitro and in vivo. J Mol Cell Cardiol, 2008, 44: 802-803.
[30] Mathivanan S, Fahner CJ, Reid GE, et al. ExoCarta 2012: database of exosomal proteins, RAN and lipids . Nucleic Acids Res, 2012, 40: 1241-1244.
[31] Waldenstrom A, Genneback N, Hellman U, et al. Cardiomyocyte microvesicles contain DNA/RNA and convey biological messages to target cells. PLoS One, 2012, 7: 1024-1032.
[32] Chen L, Wang Y, Pan Y, et al. Cardiac progenitor-derived exosomes protect ischemiac myocardium from acute ischemia/reperfusion injury. BBRC, 2013, 431: 566-571.
[33] 李玲, 石蓓. 心臟干細(xì)胞移植治療缺血性心臟病的研究進(jìn)展. 中國循環(huán)雜志, 2015, 30: 291-292.
[34] Büning H. Gene therapy enters the pharma market: the short story of a long journey. EMBO Mol Med, 2013, 5: 1-3.
[35] Shah SJ, Wasserstrom JA. SERCA2 a gene therapy for the prevention of sudden cardiac death: a future theranostic for heart failure? Circulation, 2012, 126: 2047-2050.
2015-04-16)
(編輯:王寶茹)
563003 貴州省遵義市,遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 心內(nèi)科
王艷 碩士研究生 主要從事干細(xì)胞移植治療心肌梗死研究 Email:1321246876@qq.com 通訊作者:石蓓 Email:shibei2147@163.com
R54
A
1000-3614(2015)09-0916-03
10.3969/j.issn.1000-3614.2015.09.022