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γ-分泌酶抑制劑DAPT通過下調(diào)NOTCH1信號通路抑制結(jié)腸癌HCT116細胞增殖的實驗研究*

2015-02-09 07:50尹鵬胡君儲著凌霍中華侯樂偉呂盛欒榮剛胡國強
西部醫(yī)學(xué) 2015年11期
關(guān)鍵詞:結(jié)腸癌抑制劑分化

尹鵬 胡君 儲著凌 霍中華 侯樂偉 呂盛 欒榮剛 胡國強

(解放軍第四五四醫(yī)院普外燒傷整形外科,南京 江蘇 210002)

由于我國人口飲食結(jié)構(gòu)以及生活方式的改變,結(jié)腸癌(colon cancer)的發(fā)病率呈明顯上升趨勢,以每年4%到5%的速度遞增[1-5]。臨床研究和流行病學(xué)調(diào)查數(shù)據(jù)顯示目前結(jié)腸癌已成為發(fā)病率第三位的惡性腫瘤性疾?。?-5]。研究表明在正常生理狀態(tài)下NOTCH1信號通路對于調(diào)節(jié)細胞分化(cell differentiation)和組織器官生成發(fā)育(development)有重要的價值[6-9]。進一步的研究顯示NOTCH1信號通路還在腫瘤的增殖分化、浸潤、轉(zhuǎn)移及凋亡過程中均扮演著重要的角色[10-12]。研究證實抑制和下調(diào)NOTCH1信號通路的活性可以有效抑制肺腺癌A549細胞、鼻咽癌5-8F細胞和CNE-1細胞以及卵巢癌A2780細胞等多種腫瘤的增殖和分化[13-15]。同時大量研究顯示γ-分泌酶抑制劑(γ-secretase inhibitor)DAPT 對NOTCH1信號通路有顯著抑制作用[13,14,16]。本研究旨在探討γ-分泌酶抑制劑DAPT 能否通過下調(diào)NOTCH1信號通路抑制結(jié)腸癌HCT116細胞增殖,以及對NOTCH1信號通路下游分子Hes1表達的影響。

1 材料和方法

1.1 主要試劑和材料 結(jié)腸癌HCT116細胞購買于從中國科學(xué)院上海細胞庫;PCR 試劑盒購自寶生物工程有限公司;鼠抗人NOTCH1抗體、鼠抗人Hes1抗體和鼠抗人β-actin 抗體購于美國Cell Signaling 公司;γ-分泌酶抑制劑DAPT 購買于德國Merck公司;DMEM 培養(yǎng)基購買于美國Gibco公司;小牛血清購買于杭州四季清公司;MTT 試劑盒購買于美國Promega公司;超純水,其余試劑均為分析純。

1.2 細胞培養(yǎng) 結(jié)腸癌HCT116細胞常規(guī)接種在含10%FBS、100g/L 青霉素、100g/L 鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)液中,置于37°C、95%空氣、5% CO2孵箱內(nèi)培養(yǎng)。每48h換液、傳代1次,取對數(shù)生長期細胞用于實驗。

1.3 細胞活性檢測 取對數(shù)生長期細胞消化制成單細胞懸液,接種于96孔培養(yǎng)板中,每孔接種100μL約含5×103個細胞。貼壁后無血清培養(yǎng)細胞16h 至24h,使細胞同步化。加入不同終濃度(0μM、1μM 和10μM)的DAPT,在37℃,5% CO2條件下培養(yǎng)細胞,0μM DAPT 干預(yù)組細胞作為對照組(Control組)。使用MTT 比色試驗對不同時間點(0h、24h和48h)的細胞生長狀態(tài)進行測定,實驗重復(fù)4次。對應(yīng)時間點的細胞活性(%)=(OD 干預(yù)組/OD 對照組)×100(%)[2]。

1.4 細胞NOTCH1和Hes1 mRNA 表達檢測 按照RT-PCR 試劑盒說明書提取細胞總RNA。以2μg總RNA 為模板,用Oligo(dT)18作為引物,按照試劑盒說明書介紹要求合成cDNA 第1鏈。NOTCH1正 義5′-GCAAGAAGAAGCGGAGAG-3′,反 義5′-AGCTGGCACCCTGATAGATG-3′;Hes1 正 義5′-GCAGCAGCAGTTGCAAGCTC-3′,反 義5′-TCTTGTCATCTTTTATTGCC-3′;β-actin 正 義:5′-CTCCATCCTGGCCTCGCTGT-3′,反 義:5′-GCTGTCACCTTCACCGTTCC-3′,PCR 反應(yīng)體系如下:2μL逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物模板、PCR Master Mix(2×)25μL、正反引物各2μL,以超純水補充至50μL。PCR 反應(yīng)條件為:95℃5min;91℃30s,55℃60s,73℃60s,循環(huán)35輪,最后74℃延伸10min。PCR 產(chǎn)物8μL 與5×loading buffer 2 μl 混勻后,1.2% 瓊脂糖凝 膠20V/cm電壓進行電泳約30min。應(yīng)用凝膠成像系統(tǒng)(Bio-rad)攝影,Quantity One軟件對目的條帶進行掃描分析。用與β-actin PCR 產(chǎn)物條帶灰度比值作為TIMP-1和PPAR-γmRNA 的相對表達量。

1.5 Western blot法檢測細胞中NOTCH1和Hes1蛋白表達 按照試劑盒操作要求,首先提取細胞總蛋白,并進行聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),然后轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素濾膜上,用脫脂奶粉封閉1h,分別加入鼠抗人單克隆抗體NOTCH1(1∶1000)、Hes1(1∶1000)和β-actin(1∶1500),4℃孵育過夜,洗膜后加入相應(yīng)的辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶2000),用ECL進行顯色,用凝膠成像分析系統(tǒng)進行掃描。

1.6 統(tǒng)計學(xué)方法 計量資料以均數(shù)±標準差表示。采用SPSS17.0進行單因素方差分析,兩樣本均數(shù)多重比較采用LSD 法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 MTT 法結(jié)果分析 在不同濃度(0μM、1μM 和10μM)的DAPT 干預(yù)后,使用MTT 法對不同時間點(0h、24h 和48h)結(jié)腸癌HCT116 細胞活性進行測定。發(fā)現(xiàn)給予DAPT 干預(yù)后HCT116細胞活性呈濃度依賴性和時間依賴性下降,差異均存在顯著統(tǒng)計學(xué)意義(P 均<0.05),見表1。

表1 MTT比色法測定HCT116細胞活性[n(×10-2)]Table 1 Cell viabilities of HCT116cells in different time points(0h,24h,and 48h)

2.2 NOTCH1 mRNA 和蛋白的表達 在給予HCT116細胞不同濃度(0μM、1μM 和10μM)DAPT干預(yù)48h后,使用RT-PCR 和western blot法對細胞NOTCH1mRNA 和蛋白的表達進行分析。發(fā)現(xiàn)給予DAPT 干預(yù)后NOTCH1 mRNA 和蛋白表達水平呈濃度依賴性降低,差異均存在顯著統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05),見表2,圖1。

表2 HCT116細胞NOTCH1和Hes1 mRNA 和蛋白表達水平(n=4,)Table 2 The mRNA and protein expression levels of NOTCH1and Hes1 in HCT116cells

表2 HCT116細胞NOTCH1和Hes1 mRNA 和蛋白表達水平(n=4,)Table 2 The mRNA and protein expression levels of NOTCH1and Hes1 in HCT116cells

注:與0μM 相比較①P<0.05,與1μM 相比較②P<0.05。

2.3 Hes1mRNA 和蛋白的表達 在給予HCT116細胞不同濃度(0μM、1μM 和10μM)DAPT 干預(yù)48h后,使 用RT-PCR 和western blot 法對細胞Hes1 mRNA 和蛋白的表達進行分析。發(fā)現(xiàn)給予DAPT 干預(yù)后Hes1mRNA 和蛋白表達水平呈濃度依賴性降低,差異均存在顯著統(tǒng)計學(xué)意義(P 均<0.05),見圖2,表2。

圖1 HCT116細胞NOTCH1mRNA和蛋白的表達(n=4)Figure 1 The mRNA and protein expression of NOTCH1in HCT116cells(n=4).

圖2 HCT116細胞Hes1mRNA和蛋白的表達(n=4)Figure 2 The mRNA and protein expression of Hes1in HCT116cells

3 討論

結(jié)腸癌(colon cancer)是人類最常見的消化道惡性腫瘤之一,目前臨床研究和流行病學(xué)調(diào)查發(fā)現(xiàn)由于人口老齡化的加劇、飲食結(jié)構(gòu)和生活習(xí)慣的的改變導(dǎo)致結(jié)腸癌的發(fā)病率呈逐年上升趨勢,據(jù)統(tǒng)計結(jié)腸癌的發(fā)病率呈每年4%~5%的速度遞增[1-5]。數(shù)據(jù)顯示目前在我國結(jié)腸癌已成為發(fā)病率第三位的惡性腫瘤性疾?。?-5]。尋求新的治療藥物和方法刻不容緩。

NOTCH 基因及其信號通路首先在果蠅體內(nèi)發(fā)現(xiàn),進一步研究表明NOTCH 信號通路廣泛存在于低等及高等動 物,在進化上 高度保守[6-10]。完整的NOTCH 信號通路主要是由NOTCH 受體(NOTCH receptors)、NOTCH 配 體(NOTCH ligands)、CSLDNA 結(jié)合蛋白(CSL-DNA binding proteins)及NOTCH 調(diào)節(jié)分子(NOTCH regulators)等構(gòu)成,其中NOTCH 受體包括NOTCH1到NOCTH4共4個亞型,目前對NOTCH1的研究較為深入[6-10]。生理狀態(tài)下NOTCH1信號通路對胚胎的生長發(fā)育、組織器官的生成、細胞的增殖和分化等均具有關(guān)鍵的調(diào)節(jié)作用[6-9]。張樹君等 研究發(fā)現(xiàn) 在主動脈-性 腺-中 腎(aorta-gonad-mesonephros,AGM)區(qū)NOTCH1信號通路在造血祖細胞的增殖和分化過程中扮演著重要的角色[17]。肖迎等的研究發(fā)現(xiàn)NOTCH1 信號通路順序開放和激活是調(diào)節(jié)胚胎干細胞向神經(jīng)細胞的特異性分化的重要因素[18]。朱英等人的研究證實在牙根的發(fā)育過程中NOTCH1信號通路對于牙髓牙本質(zhì)復(fù)合體的發(fā)育和成熟具有關(guān)鍵的調(diào)節(jié)作用[19]。同時進一步的研究表明NOTCH1信號通路對腫瘤的增殖和分化、腫瘤血管生成、腫瘤的浸潤和轉(zhuǎn)移以及炎癥反應(yīng)等多種病理生理過程也有重要的調(diào)節(jié)作用[10-15]。吳利英等的研究發(fā)現(xiàn)γ-分泌酶抑制劑DAPT 可以通過抑制NOTCH1及下游分子Hes1的表達使人卵巢癌A2780細胞的細胞周期停滯在G1期,從而抑制腫瘤細胞的增殖和分化[14]。陳始明等的研究證實抑制NOTCH1信號通路可以有效地抑制人鼻咽癌5-8F細胞和CNE-1細胞的增殖和分化[15]。大量的研究證實γ-分泌酶抑制劑DAPT 可以特異性的有效抑制NOTCH1 的表達,從而抑制 NOTCH1 信號通路[13,14,16]。在本實驗中我們發(fā)現(xiàn)在使用不同濃度的(0μM、1μM 和10μM)DAPT 干預(yù)后結(jié)腸癌HCT116細胞活性呈濃度依賴性和時間依賴性下降,差異均存在顯著統(tǒng)計學(xué)意義(P 均<0.05)。該結(jié)果表明γ-分泌酶抑制劑DAPT 對結(jié)腸癌HCT116細胞的增殖和分化有顯著的抑制作用。

Hes1是NOTCH1信號通路的重要靶蛋白,是參與NOTCH1信號通路生物活性的關(guān)鍵分子[18-20]。本實驗中我們使用RT-PCR 和western blot法對結(jié)腸癌HCT116細胞NOTCH1和Hes1mRNA 和蛋白的表達水平進行檢測。結(jié)果表明在給予不同濃度(0μM、1μM 和10μM)γ-分泌酶抑制劑DAPT 干預(yù)后HCT116細胞NOTCH1和Hes1mRNA 和蛋白的表達水平呈濃度依賴性降低。該結(jié)果表明γ-分泌酶抑制劑DAPT 對結(jié)腸癌HCT116 細胞NOTCH1 和Hes1基因的表達有明顯的抑制作用。

4 結(jié)論

γ-分泌酶抑制劑DAPT 可以通過下調(diào)NOTCH1信號通路,抑制結(jié)腸癌HCT116細胞增殖。γ-分泌酶抑制劑具有成為治療結(jié)腸癌等惡性腫瘤藥物的潛在可能。

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