張躍，翟珂，姜明靜，李蕊，管杰1，

（1山東省腫瘤醫(yī)院，濟南 250117;2濟南大學山東省醫(yī)學科學院醫(yī)學與生命科學學院;3濟寧市兗州區(qū)人民醫(yī)院）

胃癌是常見的惡性腫瘤之一［1］，預后較差，進展期胃癌患者術(shù)后5年生存率為20% ～50%［2］。胃癌的發(fā)病與多種因素有關(guān)。目前已明確與胃癌發(fā)生、發(fā)展關(guān)系密切的基因有癌基因e-MET、HER-2、ras及抑癌基因 p53、APC、結(jié)直腸癌缺失基因（DCC）、p16等。DCC是目前發(fā)現(xiàn)的最長的抑癌基因，其編碼一種分子量為190 kD的跨膜磷酸化蛋白，是一種信號傳遞受體［3］。研究表明，DCC基因在結(jié)直腸癌、肝癌、子宮內(nèi)膜癌、卵巢癌及骨肉瘤組織中表達明顯減少或缺失［4～8］，關(guān)于其在胃癌組織中的表達報道較少。2014年9月～2015年1月，我們觀察了胃癌組織中DCC mRNA的表達變化，并分析其與胃癌臨床病理參數(shù)的關(guān)系。

1 資料與方法

1.1 臨床資料 胃癌患者52例，男34例、女18例;年齡為32～79歲，≥60歲、＜60歲各26例。TNM分期Ⅰ期12例、Ⅱ期6例、Ⅲ期22例、Ⅳ期12例。術(shù)中留取胃癌組織與癌旁5 cm以上的正常胃組織標本，將標本置液氮中速凍后，迅速移入-80℃冰箱保存。

1.2 DCC mRNA檢測 ①引物設(shè)計與合成:采用Primer BLAST（NCBI）軟件設(shè)計 PCR引物，DCC mRNA上游引物序列為 5＇-CACTGCGCTTCCTCTCAGAA-3＇，下游引物序列為 5＇-CTGGCTTGTGGTGTCTGGAA-3＇，擴增產(chǎn)物215 bp;內(nèi)參GAPDH引物設(shè)計參考文獻［9］，擴增產(chǎn)物 589 bp。②teal-time PCR反應:提取標本總RNA，合成cDNA;PCR反應體系為10 ×Buffer 2.5 μL，dNTP 2.0 μL，上游引物0.5 μL，下游引物0.5 μL，ExTaq 酶0.125 μL，cDNA模板 3 μL，Nuclease-Free Water定容至 25 μL;PCR反應條件為95℃預變性5 min，（94℃ 30 s，54℃30 s，72℃ 90 s）×32個循環(huán)，72℃終延伸10 min。③結(jié)果判定:將PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳，通過紫外透射反射儀觀察目的條帶，凝膠圖像分析儀拍照分析;采用凝膠圖像分析軟件AlphaView-SA對圖像進行分析處理，分別得到DCC和GAPDH的積分密度值，扣除背景，得到凈光密度值，DCC mRNA表達量=DCC mRNA凈光密度值/GAPDH凈光密度值。

1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS20.0統(tǒng)計軟件。率的比較采用Fisher確切概率法;不同臨床病理參數(shù)胃癌組織中DCC mRNA相對表達量比較采用t檢驗及方差分析。P＜0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結(jié)果

2.1 胃癌組織與正常胃組織中DCC mRNA表達比較 正常胃組織中均檢測到DCC mRNA，陽性表達率100%（52/52）;胃癌組織中DCC mRNA陽性表達率為84.6%;胃癌組織與正常胃組織中DCC mRNA陽性表達率相比，P＜0.05。

2.2 DCC mRNA表達與胃癌臨床病理參數(shù)的關(guān)系有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者胃癌組織中DCC mRNA表達量與無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者相比，Ⅲ、Ⅳ期患者胃癌組織中DCC mRNA表達量與Ⅰ、Ⅱ期患者相比，高、中分化患者胃癌組織中DCC mRNA表達量與低分化患者相比，P均＜0.05。不同性別、年齡、腫瘤部位胃癌組織中DCC mRNA表達量相比，P均＞0.05。詳見表1。

表1 DCC mRNA表達量與胃癌臨床病理參數(shù)的關(guān)系（±s）

表1 DCC mRNA表達量與胃癌臨床病理參數(shù)的關(guān)系（±s）

臨床病理參數(shù) n DCC mRNA性別男30 0.59 ±0.08 34 0.79 ±0.12女18 0.81 ±0.10年齡＜60 歲 26 0.75 ±0.15≥60 歲 26 0.84 ±0.09腫瘤部位賁門 10 0.85 ±0.13胃體 22 0.78 ±0.10胃竇 20 0.78 ±0.12 TNM分期Ⅰ、Ⅱ期 18 1.21 ±0.11Ⅲ、Ⅳ期 34 0.57 ±0.08淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移無22 1.07 ±0.10有30 0.59 ±0.08分化程度高分化+中分化 24 1.05±0.10低分化+未分化 28 0.58±0.05淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移無22 1.07 ±0.10有

3 討論

DCC基因是 Fearon等［10］于1990年首先發(fā)現(xiàn)的一種腫瘤抑制基因。DCC基因在腦組織中表達豐富，在結(jié)直腸癌、卵巢癌、乳腺癌等惡性腫瘤組織中表達缺失或下調(diào)。Castets等［11］最新研究發(fā)現(xiàn)DCC蛋白可通過誘導腫瘤細胞凋亡來抑制結(jié)腸癌和直腸癌發(fā)展。Mehlen等［12］研究表明，DCC蛋白在配體缺乏的環(huán)境中具有誘導細胞凋亡的作用，但在配體Netorin-1存在時，DCC蛋白則具有抗細胞凋亡作用。如果DCC基因缺失，無法編碼DCC蛋白，將導致細胞生長和分化發(fā)生障礙，細胞有可能發(fā)生惡變［13］。研究［14］表明，DCC 基因在結(jié)直腸癌細胞中表達下調(diào)，其失活的主要機制是啟動子甲基化和等位基因缺失。有報道顯示，結(jié)直腸癌組織中DCC基因某區(qū)域檢測缺失率為 29%［15］。Zhai等［16］發(fā)現(xiàn)DCC基因在乳腺癌組織中的陽性表達率為38.2%，而在有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的乳腺癌組織中陽性表達率為23.3%，認為DCC基因表達下調(diào)與乳腺癌的發(fā)生和侵襲有關(guān)。DCC mRNA的轉(zhuǎn)錄是DCC基因表達的關(guān)鍵。本研究發(fā)現(xiàn)，DCC mRNA在胃癌組織中的陽性表達率低于正常胃組織，與上述報道結(jié)果基本一致。說明胃癌的形成過程中存在DCC基因表達缺失。

本研究結(jié)果還顯示，DCC mRNA在有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的胃癌組織中的表達量低于無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者，在TNM分期Ⅲ+Ⅳ期胃癌組織中的表達量低于Ⅰ+Ⅱ期者，在低分化（未分化）胃癌組織中的表達量低于高、中分化者，提示隨著腫瘤分化程度降低、分期增高、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的發(fā)生，DCC mRNA表達逐漸下調(diào)。我們推測，DCC mRNA表達下調(diào)可能是胃癌預后不良的標志;同時，上調(diào)DCC基因表達有可能成為胃癌基因治療的措施之一。

［1］Zhang X，Xue YW.Expression of Her-2 in gastric cancer and targeted therapy［J］.Pract Oncol J，2014，28（2）:177-181.

［2］季加孚，季鑫.胃癌新輔助化療的現(xiàn)狀與展望［J］.中國腫瘤臨床，2012，39（20）:1458-1461.

［3］田小英，孫雷，王波，等.DCC和C-erbB-2在子宮頸癌中的表達及臨床意義［J］.中國婦幼保健，2009，24（32）:4592-4596.

［4］Fujita M，Enomoto T，Murata Y.Genetic alterations in ovarian carcinoma:with specific reference to histological subtypes［J］.Mol Cell Endocrinol，2003，202（1-2）:97-99.

［5］Derks S，Bosch LJ，Niessen HE，et al.Promoter CpG island hypermethylation-and H3K9me3 and H3K27me3-mediated epigenetic silencing targets the deleted in colon cancer（DCC）gene in colorectal carcinogenesis without affecting neighboring genes on chromosomal region 18q21［J］.Carcinogenesis，2009，30（6）:1041-1048.

［6］Kato H，Zhou Y，Asanoma K，et al.Suppressed tumorigenicity of human endometrial cancer cells by the restored expression of the DCC gene［J］.Br J Cancer，2000，82（2）:459-466.

［7］Chen Y，Lin MC，Yao H，et al.Lentivirus-mediated RNA interference targeting enhancer of zeste homolog 2 inhibits hepatocellular carcinoma growth through down-regulation of stathmin［J］.Hepatology，2007，46（1）:200-208.

［8］Horstmann MA，Posl M，Scholz RB，et al.Frequent reduction or loss of DCC gene expression in human osteosarcoma［J］.Br J Cancer，1997，75（9）:1309-1317.

［9］Wang DX，F(xiàn)ang DC，Luo YH，et al.The study on expression of DCC gene in gastric carcinoma［J］.Immunol J，1996，12（3）:40-42.

［10］Fearon ER，Cho KR，Nigro JM，et al.Identification of a chromosome 18q gene that is altered in colorectal cancers［J］.Science，1990，247（4938）:49-56.

［11］Castets M，Broutier L，Molin Y，et al.DCC constrains tumour progression via its dependence receptor activity［J］.Nature，2011，482（7386）:534-537.

［12］Mehlen P，F(xiàn)earon ER.Role of the dependence receptor DCC in colorectal cancer pathogenesis［J］.J Clin Oncol，2004，22（16）:3420-3428.

［13］熊慧，張阿偉，范貴民，等.K-RAS和DCC在直結(jié)腸癌中的表達及意義［J］.黑龍江醫(yī)藥科學，2014，37（2）:53-54.

［14］Wang XJ，Lu RZ，Zhang XJ，et al.Significance of multiple gene methylation detection in early diagnosis of colorectal cancer［J］.Chin J Gastroenterol Hepatol，2013，22（12）:1228-1230.

［15］ Cawkwell L，Lewis FA，Quirke P.Frequency of allele loss of DCC，p53，RBI，WT1，NF1，NM23 and APC/MCC in colorectal cancer assayed by fluorescent multiplex polymerase chain reaction［J］.Br J Cancer，1994，70（5）:813-818.

［16］Zhai BP，Zhang B，Li WT.Clinical significance for expression of DCC in human breast carcinomas［J］.Chin J Exp Surg，2010，27（11）:1669-1670.