国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

小鼠腦脊液鎂離子濃度及血清鎂離子濃度變化對它的影響

2015-12-02 10:46:40沈艷玲王嬌孫立元
中國醫(yī)藥科學 2015年17期
關鍵詞:腦脊液小鼠血清

沈艷玲?王嬌??孫立元

[摘要] 目的 探討小鼠正常腦脊液鎂離子的濃度及血清鎂離子濃度改變后對它的影響。 方法 使用戊巴比妥鈉(50mg/kg)麻醉動物。在鼠尾尖端1~1.5cm處剪斷鼠尾,收集血液;剝離小鼠后頸部皮膚肌肉,暴露硬腦膜,使用蝶形針在枕大池內吸取腦脊液;用感應耦合等離子體質譜儀(ICP-MS)檢測C57BL/6型(B6型)和ICR型小鼠正常腦脊液和血清鎂離子濃度,并檢測B6型小鼠腹腔注射硫酸鎂(1.23g/kg) 20min、40min、2h、4h后腦脊液和血清鎂離子濃度的改變。 結果 正常B6型小鼠腦脊液和血清鎂離子濃度分別是(0.89±0.11)mM和(1.38±0.12)mM。正常ICR型小鼠腦脊液和血清鎂離子濃度分別是(1.00±0.12)mM和(1.10±0.09)mM。B6型小鼠腹膜內注射硫酸鎂后血清鎂離子濃度從(1.38±0.12)mM(正常水平)增加到(8.68 ± 1.85)mM(注射20min后,P<0.01)、(7.58±0.67)mM(40min后,P<0.01)、(3.56 ± 0.96)mM(2h后,P<0.01)并在4h后減少到正常水平(F=1.514),而腦脊液鎂離子濃度未發(fā)生明顯改變(F =126.884,P>0.05)。 結論 小鼠腦脊液鎂離子濃度不隨血清鎂離子濃度升高而改變。

[關鍵詞] 血-腦屏障;腦脊液;鎂離子;小鼠;血清

[中圖分類號] R651 [文獻標識碼] A [文章編號] 2095-0616(2015)17-23-04

Influence of changes of cerebrospinal fluid magnesium concentration and serum magnesium concentration in mice

SHEN Yanling1 WANG Jiao1 SUN Liyuan1,2

1.Department of Pathology, Affiliated Hospital of Guilin Medical University, Guangxi, Guilin 541004, China; 2.Staff Room of Pathophysiology, Guilin Medical University, Guangxi, Guilin 541004, China

[Abstract] Objective To study the influence of changes of cerebrospinal fluid magnesium concentration and serum magnesium concentration in mice. Methods To anaesthetize animal using by pentobarbital sodium (50mg/kg). To shear off the mice tail at 1-1.5cm rattail tip to collect blood, to peel the skin and muscle on mice posterior neck to expose endocranium, to absorb cerebrospinal fluid at cisterna magna used by butterfly needle. To detect the cerebrospinal fluid and serum magnesium concentration of C57BL/6 (B6) and ICR mice by inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS), to detect the changes of cerebrospinal fluid and serum magnesium concentration in B6 mice which were treated with intraperitoneal injection magnesium sulphuricum(1.23g/kg) after 20min, 40min, 2h, 4h. Results The cerebrospinal fluid and serum magnesium concentration in B6 mice was (0.89±0.11) mM and (1.38±0.12) mM, while which was (1.00±0.12) mM and (1.10±0.09) mM in ICR mice. The serum magnesium concentration in B6 mice has increased from (1.38±0.12) mM to (8.68±1.85) mM after 20min intraperitoneal injection magnesium sulphuricum(P<0.01), to (7.58±0.67) mM after 40min intraperitoneal injection magnesium sulphuricum(P<0.01), to (3.56±0.96) mM after 2h intraperitoneal injection magnesium sulphuricum(P<0.01), then reduced to normal level after 4h intraperitoneal injection magnesium sulphuricum(F=1.514), while cerebrospinal fluid magnesium concentration hadnt occurrence obviously significant change(F=126.884,P>0.05). Conclusion Cerebrospinal fluid magnesium concentration in mice dosnt has change along with serum magnesium concentration.

[Key words] Blood-brain barrier; Cerebrospinal fluid; Magnesium; Mice; Serum

鎂影響細胞的多種生物學功能,如:鉀離子和鈣離子的轉運;調控信號的傳遞;酶原的激活;參

與能量代謝、核酸及蛋白質的合成;調控細胞周期和保護細胞生物膜的完整。研究表明,一些疾病與鎂離子的缺乏有關,如:骨骼發(fā)育不良、腦卒中、繼發(fā)性腦損傷、缺血性心臟病、心律失常、動脈粥樣硬化、高血壓、糖尿病以及視網(wǎng)膜功能異常[1-3]。鎂離子缺乏是誘發(fā)關島帕金森病、PDC和ALS的主要的環(huán)境因素,并且有研究證明鎂離子缺乏可引起大鼠黑質多巴胺神經(jīng)元的選擇性缺失[4-6]。

一些臨床和實驗研究表明,靜脈注射鎂離子能起到神經(jīng)元的保護作用:可以預防人類和動物的創(chuàng)傷性腦損傷、癲癇發(fā)作、蛛網(wǎng)膜下腔出血和腦缺血的發(fā)生;也可預防由利多卡因而誘導的癲癇發(fā)作[1,7]。這些研究顯示鎂離子缺乏可誘導某些特定神經(jīng)元的變性,而在一定的病理條件下提高血清鎂離子濃度對神經(jīng)元有保護作用。

研究顯示人類和動物的血清離子成分發(fā)生改變時,腦脊液的鎂離子濃度不會發(fā)生改變[7-12]。但腦部損傷的患者和狗(血清鎂離子濃度是正常血清鎂離子濃度的2~4倍)的腦脊液鎂離子濃度會有輕微的升高,子癇前期的患者和海馬區(qū)癲癇發(fā)作的大鼠腦脊液鎂離子濃度會有明顯的增加,并且長期鎂離子缺乏會誘導腦脊液鎂離子濃度的降低[13-14]。

小鼠常被用于各種神經(jīng)疾病模型制作和鎂離子神經(jīng)保護性治療的研究。已有研究通過口服鎂離子研究其對帕金森模型小鼠以及SOD-1轉基因小鼠的干預效果[12-17],但這些研究并沒有檢測血清和腦脊液以及腦組織中鎂離子濃度是否發(fā)生改變。另外,正常小鼠腦脊液鎂離子濃度以及改變血清鎂離子濃度對它是否產(chǎn)生影響目前也未見報道。本研究詳細闡明了B6型和ICR型小鼠正常腦脊液鎂離子濃度及B6型小鼠腹腔注射鎂離子后腦脊液鎂離子濃度的改變。

1 資料與方法

1.1 一般資料

健康雄性B6型(n=27)和ICR型(n=11)小鼠,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,8周齡,體重分別為21~24g、32~37g。

1.2 方法

1.2.1 實驗組 檢測B6型小鼠腹腔注射硫酸鎂(濃縮鎂離子,MgSO4·7H2O,1.23g/kg)20min、40min、2h、4h(各組均n=5)后腦脊液和血清鎂離子濃度的改變。

1.2.2 對照組 B6型(n=7)和ICR型(n=11)小鼠,取腦脊液、血清。

1.2.3 血清和腦脊液樣本采集 戊巴比妥鈉(50mg/kg)麻醉動物。在鼠尾尖端1~1.5cm處剪斷鼠尾,收集血液在含有聚丙烯的試管內,并以1500rpm轉速離心分離。

經(jīng)枕大池收集腦脊液:剝離小鼠后頸部皮膚肌肉,暴露硬腦膜,使用蝶形針(27Gx×1/2,0.4×13 mm,TOP公司,東京,日本)在枕大池內吸取腦脊液。對照組和B6型小鼠腹腔注射硫酸鎂20min、40min、2h、4h后收集樣本,并用超純水稀釋1000倍。

1.2.4 鎂離子濃度測定 用感應耦合等離子體質譜儀(ICP-MS,7500級,安捷倫科技,東京,日本)進行鎂離子濃度的測定(為使標準化,樣本中加入1%的氮酸使標本濃度為10μg/L)。每次檢測前儀器均使用超純水沖洗。操作條件如下:ICP rf 功率1500 W,冷卻室溫度為2℃;氬氣流量,血漿為0.7升/分鐘,載體為0.35升/分鐘;氫氣流量為0.4;質譜掃描,Mg m/z = 25,Y m/z = 89。每個樣品和標準溶液進行三次測量。

1.3 統(tǒng)計學處理

采用SPSS 11.0 統(tǒng)計軟件進行相關統(tǒng)計學分析。處理組間獨立樣本采用ANOVA方差分析,組間多重比較采用Bonferroni post hoc分析。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義,各組數(shù)據(jù)用()表示。

2 結果

超純水中鎂離子濃度范圍是(0.14 ± 0.12)mM(n=11),在可接受的誤差范圍內,因此未對腦脊液和血清鎂離子濃度進行修正。正常B6型小鼠腦脊液和血清鎂離子濃度分別是(0.89±0.11)mM(n=7)、(1.38±0.12)mM(n=7)。正常ICR型小鼠腦脊液和血清鎂離子濃度分別是(1.00±0.12)mM(n=7)、(1.10±0.09)mM(n=11)。B6型小鼠腹膜內注射硫酸鎂后血清鎂離子濃度從(1.38±0.12)mM(正常水平;n= 5)增加到(8.68±1.85)mM(注射20分鐘后;n=5)、(7.58±0.67)mM(40分鐘后;n=5)、(3.56±0.96)mM(2小時后; n=5),并在4小時(n=5)后減少到正常水平,腦脊液鎂離子濃度未發(fā)生明顯改變(圖1)。見表1。

圖1 腹腔注射鎂離子后腦脊液和血清鎂離子濃度。*與對照組比校,P<0.01

3 討論

本實驗闡明了正常腦脊液鎂離子濃度及改變血清鎂離子濃度對它的影響。B6型和ICR型小鼠腦脊液鎂離子濃度分別是(0.89±0.11)mM、(1.00±0.12)mM。B6型小鼠血清鎂離子濃度增加時腦脊液鎂離子濃度不發(fā)生明顯改變。B6型小鼠血清和腦脊液鎂離子濃度分別是1.38 mM、0.89 mM,ICR型小鼠血清和腦脊液鎂離子濃度分別是

表1 不同物種的腦脊液和血清正常鎂離子濃度及補充鎂后腦脊液鎂離子濃度的變化

物種 品系 年齡 性別 正常鎂離子濃度血漿 腦脊液CSF 補充鎂后CSF/血清中鎂離子濃度的改變 鎂離子濃度的檢測方法 引用

小鼠 C57BK/6J 8周 雌性 (1.38±0.12) mM/L (0.89±0.11) mM/L CSF中鎂離子無明顯改變 ICP-MS Present study

C57BK/6J 雌性 (2.8±0.1)mg/dL AAS Marie et al. 1983

ICR 8周 雌性 (1.10±0.09) mM/L (1.00±0.12) mM/L ICP-MS Present study

SOD-1 Tg 腦組織中鎂離子無明顯改變 ICP-MS Pamphlett et al. 2003

A/J 成年 雌性 17000 ?g/mL ICP-MS Funseth et al. 2000

Balb/c 雄性 24284ng/gwet weight ICP-MS Ilb?ck et al. 2003

大鼠 Wistar 雄性 (1.96±0.24) mg/dL (2.06±0.16) mg/dL AAS Hoffman et al. 1990

Sprague-Dawley (2.0±0.1) mg/dL 腦組織中鎂離子無明顯改變 calmagite dye Choi et al. 1991

Long-Evans 雄性 (2.4±0.25) mg/dL (2.41±0.14) mg/dL CSF中鎂離子無明顯改變 Colorimetry Hallak et al. 1992

豚鼠 0.97 mM/L 0.81 mM/L AAS Scheibe et al. 1999

貓 1.35 mEq/kg H2O 1.33 mEq/kg H2O Ames III et al. 1964

兔子 白兔 成年 (2.09±0.36) mEq/L 腦組織中鎂離子無明顯改變 AAS Hilmy et al. 1968

(0.72±0.13) mM/L (0.90±0.20) mM/L HPLC Frosini et al. 1993

狗 混血 1.61 (1.33~2.0) mEq/L 2.16(1.93~2.9)mEq/L CSF中鎂離子改變明顯 FS Oppelt et al. 1963

豬 幼崽 2~40d 腦組織中鎂離子無明顯改變 PMRS Gee et al. 2001

山羊 2.2 mEq/kg H2O 1.9 mEq/kg H2O Pappenheimer et al. 1962

人 健康 成人 雄性 (1.44±0.16) mg/dL (2.56±0.19) mg/dL CSF中鎂離子輕微但改變明顯 modified MBCP Thurnau et al. 1987

對照組 成人 (1.69±0.14) mEq/L (2.29±0.1) mEp/L AAS Heipertz et al. 1979

術后患者 成人 (1.91±0.26) mg/dL (2.67±0.44) mg/dL CSF中鎂離子無明顯改變 CPN Ko et al.2001

患者 18~89歲 男/女 Mg2+:(0.92±0.18) mM/L Mg2+:(1.25±0.14) mM/L CSF中鎂離子輕微但改變明顯 ACCA McKee et al.2005

高血壓患者 成人 (0.58±0.05) mM/L (0.82±0.06) mM/L CSF中鎂離子無明顯改變 EA Brewer et al. 2001

注:AAS:原子吸收光譜法; ACCA:臨床自動化學分析儀;CPN:偶氮氯膦三;EA:電解質分析儀;ES: 發(fā)射分光光度測定法;FS:火焰光譜測定法;HPLC:高效液相測普法;ICP-MS:電感耦合等質譜儀;MBCP: 甲基百里酚藍絡合過程;PMRS:磷-31核磁共振光譜法,數(shù)字代表平均值±SD

1.10 mM、1.00 mM。B6型和ICR型小鼠鎂離子濃度差異以及B6型小鼠血清和腦脊液鎂離子濃度差異的原因以及生理作用目前尚不清楚。

小鼠血清鎂離子濃度稍高于其他種屬的血清鎂離子濃度(表1) [16-18]。一些動物如小鼠、豚鼠、貓、山羊的血清鎂離子濃度高于腦脊液鎂離子濃度,但大鼠、兔、狗和人類血清鎂離子濃度相對稍低(表1)[8-9,13-14,19-22]。種屬間血清鎂離子濃度差異的原因尚不明確。

已有研究表明,正常人和動物血清鎂離子濃度即使升高200%,而腦脊液鎂離子濃度卻不會發(fā)生明顯增加[8]。另有研究證實,給新出生豬靜脈注射硫酸鎂或SOD-1轉基因小鼠口服補充鎂后腦組織中的鎂離子濃度也未增加(表1)[8,12]。

也有部分研究表明血清鎂離子濃度升高后腦脊液鎂離子濃度會隨之提高。大鼠腹腔注射硫酸鎂后血清鎂離子濃度明顯增高,而腦脊液鎂離子濃度有輕微提高,2h后腦脊液和血清鎂離子濃度均有所下降。Oppelt等發(fā)現(xiàn)如果血清鎂離子濃度持續(xù)升高3~4h,腦脊液鎂離子濃度將會升高到121%的水平[14]。Thurnau等報道子癇患者靜脈注射硫酸鎂后腦脊液鎂離子水平增加到119%的水平,而健康成人則達到400~500%的水平。McKee等 [13]觀察到對各類患者系統(tǒng)性給于鎂離子后腦脊液鎂離子濃度有輕微的增高。另一方面,長期嚴重的低鎂血癥會引起腦脊液鎂離子濃度發(fā)生改變。本實驗結果表明,正常小鼠血清鎂離子濃度增高時腦脊液鎂離子濃度未發(fā)生改變(圖1,表1)。

根據(jù)腦脊液鎂平衡機制,Oppelt等認為:狗完整的血-腦脊液屏障對鎂離子不滲透[14]。Hilmy等也認為正常兔子的大腦受血-腦屏障的保護來確保腦脊液鎂離子濃度的平衡[11]。然而,在大腦損傷的情況下,如外傷、蛛網(wǎng)膜下腔出血或中風,這種保持腦脊液鎂離子濃度體內平衡的機制就會遭到破壞[23-25]。

一些研究嘗試對神經(jīng)變性疾病小鼠模型使用鎂離子進行治療:對ALS模型(SOD-1轉基因小鼠)口服補充鎂離子后未觀察到干預效果,且腦組織鎂離子濃度也未增加;給帕金森病模型小鼠口服鎂離子后,雖然能改善其行為學表現(xiàn),但紋狀體多巴胺含量未增加[12,15]。綜上所述,本實驗結果和以前的研究表明在使用鎂離子用于治療神經(jīng)系統(tǒng)疾病的小鼠動物模型時有必要直接對腦組織或者蛛網(wǎng)膜下腔/側腦室給藥。

[參考文獻]

[1] Lampl Y, Geva D, Gilad R, et al. Cerebrospinal fluid magnesium level as a prognostic factor in ischaemic stroke[J]. J Neurol ,1998,245(9):584-588.

[2] Ohita T, Peacock JM, Iso H, et al. Serum and dietary magnesium and risk of ischemic stroke: the Atherosclerosis Risk in Communities Study[J]. Am J Epidemiol ,2009,169(12): 1437-1444.

[3] Goto Y, Furuta A, Tobimatsu S. Magnesium deficiency differentially affects the retina and visual cortex of intact rats[J]. J Nutr,2001,131(9): 2378-2381.

[4] Bocca B, Alimonti A, Senofonte O, Pino A, Violante N,Petrucci F, et al. Metal changes in CSF and peripheral compartments of parkinsonian patients[J]. J Neurol Sci,2006,248(1-2): 23-30.

[5] Hermosura MC, Nayakani H, Dorovkov MV, et al.TRPM7 variant shows altered sensitivity to magnesium that may contribute to the pathogenesis of two Guamanian neurodegenerative disorders[J]. Proc Natl Acad SciUSA ,2005, 102(32): 11510-11515.

[6] Oyanagi K, Kawakami E, Kikuchi-Horie K,, et al. Magnesium deficiencyover generations in rats with special references to thepathogenesis of the Parkinsonism-dementia complexand amyotrophic lateral sclerosis of Guam[J]. Neuropathol,2006, 26(2): 115-28.

[7] Kim YJ, McFarlane C. warner DS, et al. The effects of plasma and brain magnesium concentrations on lidocaine-induced seizures in the rat[J]. Obstetr Anesthes ,1996, 83(6): 1223-1228.

[8] Ko SH, Lim HR, Kim DC, et al. Magnesium sulfate does not reduce postoperative analgesic requirements[J]. Anesthesiol, 2001,95(3): 640-646.

[9] Choi WW, Warner DS, Monahan DJ, et al. Effects of acute hypermagnesemia on the threshold for lidocaine-induced seizures in the rat[J]. Am J Obstet Gynecol ,1991, 164(2): 693-697.

[10] Gee 2nd JB, Corbett RJ, Perlman JM, et al. Hypermagnesemia does not increase brain intracellular magnesium in newborn swine[J]. Pediatr Neurol, 2001, 25(4): 304-308.

[11] Hilmy MI, Somjen GG. Distribution and tissue uptake of magnesium related to its pharmacological effects[J]. Am J Physiol, 1968,214(2): 406-413.

[12] Pamphlett R, Todd E, Vink R, McQuilty R, et al. Magnesium supplementation does not delay disease onset or increase survival in a mouse model of familial ALS[J]. J Neurol Sci, 2003,216(1): 95-98.

[13] McKee JA, Brewer RP, Macy GE, et al. Magnesium neuroprotection is limited in humans with acute brain injury[J]. Neurocrit Care, 2005, 2(3): 342-351.

[14] Oppelt WW, MacIntyre I, Rall DP. Magnesium exchange between blood and cerebrospinal fluid[J]. Am J Physiol, 1963,205(5): 959-962.

[15] Tariq M, Khan HA, al Moutaery K, et al. Effect of chronic administration of magnesium sulfate on 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-induced neurotoxicity in mice[J]. Pharmacol Toxicol, 1998,82(5):218-222.

[16] Marie PJ, Travers R, Delvin EE. Influence of magnesium supplementation on bone turnover in the normal young mouse[J]. Calcif Tissue Int ,1983,35(6): 755-761.

[17] Funseth E, Lindh U, Friman G, et al. Relation between trace element levels in plasma and myocardium during coxsackievirus B3 myocarditis in the mouse[J]. BioMetals,2000,13(4): 361-367.

[18] Ilb?ck NG, Benyamin G, Lindh U, et al. Trace element changes in the pancreas during viral infection in mice[J]. Pancreas, 2003,26(2): 190-196.

[19] Scheibe F, Haupt H, Ising H. Total magnesium concentrations of perilymph, cerebrospinal fluid, and blood in guinea pigs fed different-magnesium containing diets[J]. Eur Arch Otorhinolaryngol ,1999,256(5): 215-219.

[20] Ames III A, Sakanoue M, Endo S. Na, K, Ca, Mg and Cl concentrations in choroid plexus fluid and cisternal fluid compared with plasma ultrafiltrate[J]. J Neurophysiol ,1964,27(8): 672-681.

[21] Pappenheimer JR, Heisey SR, Jordan EF, et al. Perfusion of the cerebral ventricular system in unanesthetized goats[J]. Am J Physiol, 1962, 203(7): 763-774.

[22] Hoffman A, Levy G. Kinetics of drug action in diseasestates. XXXVI: Effect of cyclosporine on the pharmacodynamics and pharmacokinetics of a barbiturate (heptabarbital) in rats[J]. J Pharm Sci, 1990,79(1): 19-22.

[23] Van den Bergh WM, Algra A, van der Sprenkel JW, et al. Hypomagnesemia after aneurismal subarachnoid hemorrhage[J]. Neurosurgery, 2003,52(2): 276-281.

[24] Kahraman S, Ozgurtas T, Kayali H, et al. Monitoring of serum ionized magnesium in neurosurgical intensive care unit: preliminary results[J]. Clin Chim Acta, 2003,334(1-2): 211-215.

[25] Neuwelt EA, Abbott NJ, Drewes L, et al. Cerebrovascular Biology and the various neural barriers: challenges and future directions[J]. Neurosurgery, 1999,44(3): 604-608.

(收稿日期:2015-06-02)

猜你喜歡
腦脊液小鼠血清
血清免疫球蛋白測定的臨床意義
中老年保健(2021年3期)2021-08-22 06:50:04
Meigs綜合征伴血清CA-125水平升高1例
慢性鼻-鼻竇炎患者血清IgE、IL-5及HMGB1的表達及其臨床意義
小鼠大腦中的“冬眠開關”
米小鼠和它的伙伴們
腰椎術后腦脊液漏的治療
Avp-iCre轉基因小鼠的鑒定
腦脊液引流在早期顱內破裂動脈瘤治療中的應用
PC-MRI對腦脊液循環(huán)的研究價值
加味四逆湯對Con A肝損傷小鼠細胞凋亡的保護作用
吉林市| 银川市| 白山市| 长治县| 四川省| 临汾市| 新田县| 南皮县| 荥经县| 陈巴尔虎旗| 普兰店市| 利川市| 延川县| 安达市| 惠东县| 大荔县| 潞西市| 伊宁县| 望都县| 阿拉善盟| 松江区| 郯城县| 嘉鱼县| 水富县| 青川县| 会昌县| 苏州市| 宁国市| 青龙| 明水县| 崇左市| 漠河县| 遵义县| 达拉特旗| 新丰县| 尼玛县| 辽宁省| 浙江省| 肇源县| 旬阳县| 深圳市|