鄧 勛,宋小雙,尹大川,崔文峰,宋瑞清
(1.黑龍江省森林保護(hù)研究所,哈爾濱150040;2.沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院,沈陽110000;3.黑龍江省林業(yè)科學(xué)院,哈爾濱150040;4.東北林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,哈爾濱150040)
樟子松(Pinus sylvestris var.mongolica)是我國北方主要造林樹種,在生態(tài)建設(shè)、環(huán)境修復(fù)方面發(fā)揮重要作用[1],我國鹽漬土主要分布在華北、東北和濱海地區(qū),造成森林和草原退化。培育耐鹽樹種或者通過人為引進(jìn)植物根際有益微生物(包括內(nèi)生真菌、菌根菌、促生細(xì)菌等)與宿主植物的互作實(shí)現(xiàn)促進(jìn)苗木生長、增強(qiáng)苗木抗逆性,并以“菌化苗”形式在后續(xù)逆境造林中提高苗木成活率,是實(shí)現(xiàn)鹽堿地改造、恢復(fù)植被和改善生態(tài)的有效途徑。
深色有隔內(nèi)生真菌(Dark Septate Endophytes,DSE)是植物內(nèi)生真菌的主要類群,是植物根部的內(nèi)生菌[2],從沿海灘涂到內(nèi)陸高原山地;從熱帶、溫帶到凍原地區(qū)及南北極地區(qū)均有DSE的分布[3]。在針葉樹中深色有隔內(nèi)生真菌種類以子囊菌(Ascomycetes)中 的 Phialocephala fortinii s.l.—Acephala applanata species complex(PAC)類群集合為主[4],在針葉樹的根系中占據(jù)主導(dǎo)地位[5]。研究表明,DSE真菌可提高植物抗逆性,包括可提高植物對(duì)干旱[6]以及重金屬污染[7-9]等逆境脅迫的抗性、誘導(dǎo)植物產(chǎn)生系統(tǒng)抗性,抵御病原菌生物脅迫[10-12]等。
D575是分離自樟子松根部的深色有隔內(nèi)生真菌,在離體試驗(yàn)中[13-14],表現(xiàn)出較強(qiáng)的耐鹽性,在 CNaCl≤0.4 mol/Lm 和 C Na2SO4≤0.2 mol/Lm的低中濃度鹽脅迫條件下,D575菌絲生長和對(duì)碳、磷相對(duì)利用率受抑制程度均較低,生長速率同對(duì)照相比相差不大,本文在離體研究基礎(chǔ)上,測定內(nèi)生真菌-樟子松共生體在鹽脅迫條件下的生長及生理相應(yīng),探討鹽脅迫條件下,D575對(duì)樟子松生長及耐鹽性的影響。
實(shí)驗(yàn)菌株:深色有隔內(nèi)生真菌D575分離自樟子松根部,經(jīng)菌落形態(tài)和16S rDNA序列測定初步鑒定為Phialocephala fortinii,屬于Phialocephala fortinii s.l.—Acephala applanata species complex(PAC),為典型的針葉樹種根部深色有隔內(nèi)生真菌,保存于黑龍江省林業(yè)科學(xué)院森林保護(hù)研究所。
樟子松種子來源:2014年購自遼寧彰武章古臺(tái)樟子松苗木繁育基地,由遼寧省防風(fēng)固沙研究所提供,保存于-20℃冰箱備用。
(1)無菌制備方法。將草炭土、蛭石和河沙按體積比2∶1∶1的比例配制混合土,置高溫高壓滅菌器中121℃下滅菌2 h,放置7 d后裝入營養(yǎng)缽(直徑15 cm×高13 cm)中備用。
(2)種植處理及播種方法。種子處理及播種參考尹大川[15]方法進(jìn)行,將經(jīng)催芽的樟子松種子播入營養(yǎng)缽中,每缽30顆種子,上覆2 cm厚無菌土,澆透水后放入大棚中培養(yǎng),待幼苗出土后,定苗至每缽20株。進(jìn)行常規(guī)的日常管護(hù),每2 d澆一次水(100 ml/缽)。
(3)菌劑制備方法。用直徑5 mm的無菌打孔器,切取在PDA平板培養(yǎng)基上培養(yǎng)好的內(nèi)生真菌D575接種于盛有250 mL PD液體培養(yǎng)基的三角瓶(500 mL)中,每瓶接種3片。置于搖床上(25℃、150 r/min)振蕩培養(yǎng)10 d,得到液體菌劑,使用前用攪碎機(jī)將菌絲體攪碎做勻漿處理。
(1)接種處理。在播種出苗1個(gè)月后,進(jìn)行深色有隔內(nèi)生真菌的接種處理,設(shè)置2種處理方式:處理1:接種深色有隔內(nèi)生真菌D575(D575);處理2:PD培養(yǎng)基空白對(duì)照(CK)。采用液體菌劑,在苗木根際打孔,接種液體菌劑,每缽接種100 ml菌劑,每組處理25盆,共50盆。
(2)鹽脅迫處理設(shè)計(jì)。參考張峰峰[16]的方法,接種 D575菌劑 1個(gè)月后,在 0.1、0.2 mol/Lm NaCl,0.1、0.2 mol/Lm Na2SO4,4 種不同的鹽溶度水平下進(jìn)行鹽脅迫實(shí)驗(yàn),以不施鹽為對(duì)照。每個(gè)處理5個(gè)重復(fù),共50盆(2個(gè)接種處理×5個(gè)鹽脅迫處理×5個(gè)重復(fù))盆苗木。結(jié)合澆Hoagland營養(yǎng)液,每次每盆澆溶液200 ml,每天澆一次,共澆5次,使達(dá)到預(yù)計(jì)濃度,置于大棚中培養(yǎng)。
在接種3個(gè)月后,每處理隨機(jī)挖取30株樟子松苗木,進(jìn)行苗木生長指標(biāo)測定、菌根合成率調(diào)查,生理指標(biāo)測定、抗氧化酶活性測定、抗病害保護(hù)酶活性測定。每個(gè)處理3次重復(fù)。
(1)生長指標(biāo)。對(duì)于苗高和地徑測定,采用直尺和游標(biāo)卡尺分別測量,苗木取樣后,用刷子小心清理掉根際泥土,用電子天平測定苗木鮮重后,在鼓風(fēng)干燥箱中85℃烘干后稱量苗木的干重。
(2)內(nèi)生菌侵染率。將根尖剪成1 cm長根段,用Phillips&Hayman的染色方法[17]對(duì)根段染色,計(jì)算菌根侵染率。菌根菌侵染率(%)=外生菌根菌侵染的根段數(shù)/檢查的總根段數(shù)×100%,所得結(jié)果取平均值。
(3)抗逆生理指標(biāo)。
可溶性蛋白含量測定采用考馬斯亮藍(lán)G250法測定[18]。
葉綠素與類胡蘿卜素含量測定采用丙酮-乙醇混合液法測定[19]。
抗氧化酶(SOD酶、POD酶、CAT酶)活性采用南京建成生物工程公司的抗氧化檢測試劑盒利用光度計(jì)法進(jìn)行酶活測定[20]。
丙二醛含量采用硫代巴比妥酸法[21]測定。
游離脯氨酸采用酸性茚三酮比色法[22]測定。
所得數(shù)據(jù)用SPSS 13.0進(jìn)行單因素差異顯著性分析(ANOVA),α=0.05,并以平均值 ±標(biāo)準(zhǔn)差的形式表示。
(1)對(duì)苗高的影響。鹽脅迫和接種內(nèi)生真菌處理對(duì)樟子松苗高均有顯著影響(見表1),同對(duì)照相比,在 NaCl(0.1 ~0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)脅迫下,未接種D575樟子松苗高降低6.57% ~17.31%,其中對(duì)照與 NaCl(0.12 mol/Lm)相比,苗高差異不顯著(P >0.05),NaCl(0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)處理,未接種D575樟子松苗高之間差異不顯著(P>0.05),說明樟子松對(duì)低濃度NaCl脅迫有一定的耐受性,而高濃度NaCl和Na2SO4脅迫對(duì)樟子松苗木高成長有顯著影響。非鹽脅迫條件下,同對(duì)照相比,接種D575苗高增加7.49%,二者存在顯著性差異(P<0.05),同時(shí)接種D575可緩解鹽脅迫對(duì)樟子松苗木生長的抑制作用,在NaCl(0.1~0.2 mol/Lm)和Na2SO4(0.1~0.2 mol/Lm)脅迫下,同對(duì)照相比,苗高增加9.32% ~13.26%,鹽脅迫濃度越大,苗高增加越多,說明內(nèi)生真菌對(duì)樟子松促生作用越明顯。在接種D575條件下,低濃度鹽分脅迫(NaCl 0.1 mol/Lm、Na2SO40.1 mol/Lm)對(duì)樟子松苗高影響不顯著(P >0.05)。
(2)對(duì)地徑的影響:同苗高表現(xiàn)相同,不同鹽分脅迫和接種內(nèi)生真菌均對(duì)對(duì)樟子松苗木地徑均有顯著影響(見表1),不同處理?xiàng)l件存在顯著性差異(P<0.05)。非鹽脅迫條件下,接種D575同對(duì)照相比,樟子松苗木地徑提高7.61%,二者存在顯著性差異(P<0.05)。在接種內(nèi)生真菌D575條件下,不同鹽分脅迫處理后,對(duì)照相比地徑增加6.09% ~10.34%。在接種 D575條件下,低濃度NaCl(0.1 mol/Lm)對(duì)樟子松地徑影響不顯著(P>0.05)。
(3)對(duì)生物量的影響:不同鹽分脅迫和接種內(nèi)生真菌對(duì)樟子松苗木鮮重和干重均有顯著影響(見表1),不同處理之間生物量存在顯著性差異(P<0.05)。非鹽脅迫條件下,在接種內(nèi)生真菌D575后,同對(duì)照相比,對(duì)樟子松苗木鮮重和干重分別提高20.00%和19.81%,可明顯促進(jìn)生物量積累,增加抗逆性。鹽脅迫處理后,接種內(nèi)生真菌D575可促進(jìn)樟子松苗木鮮重增加7.40% ~14.28%,干重增加5.19% ~16.86%,結(jié)果表明,內(nèi)生真菌的存在可消除部分鹽脅迫的影響,增加宿主植物生物量的積累。
表1 鹽脅迫下深色有隔內(nèi)生真菌D575對(duì)樟子松生物量的影響Tab.1 The effect of endophyte fungi D575 on P.sylvestris var.Mongolica biomass under salt tolerance
鹽脅迫的存下降低內(nèi)生菌的侵染率(如圖1所示),其中低濃度NaCl(0.1 mol/Lm)同對(duì)照相比,內(nèi)生菌侵染率不存在顯著性差異(P>0.05),而NaCl(0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)脅迫下,同對(duì)照相比,內(nèi)生菌侵染率存在顯著性差異(P<0.05),結(jié)果表明,不同濃度鹽分脅迫對(duì)內(nèi)生菌侵染效果的影響不同。
圖1 不同鹽脅迫對(duì)內(nèi)生菌侵染率的影響Fig.1 The infection rate of endophyte fungi D575 under different salt tolerance
(1)對(duì)苗木葉綠素和可溶性蛋白的影響。研究結(jié)果表明,無論是否接種內(nèi)生真菌,鹽脅迫后宿主植物的葉綠素含量均有所降低(見表2),接種內(nèi)生真菌后,同對(duì)照相比,可提高宿主植物葉綠素含量,從而提高植物的光和效率,生物量增加。非鹽脅迫條件下,接種內(nèi)生真菌對(duì)葉綠素a和b分別提高25.59%和36.12%。不同處理之間差異顯著(P<0.05)。在 NaCl(0.1 ~ 0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1~0.2 mol/Lm)脅迫下,接種內(nèi)生真菌后,同對(duì)照相比,葉綠素a增加28.13% ~32.66%,葉綠素b增加28.36% ~37.19%,鹽分脅迫濃度越大,葉綠素增加越多,表明內(nèi)生真菌對(duì)宿主植物的促進(jìn)作用越高,提高植物耐鹽效應(yīng)越顯著。可溶性蛋白含量也是衡量益生菌對(duì)植物促生作用的指標(biāo),非鹽脅迫條件下,同對(duì)照相比,宿主植物可溶性蛋白含量提高 21.01%,在 NaCl(0.1 ~0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)脅迫下,同對(duì)照相比,可溶性蛋白含量增加14.55% ~25.43%,接種內(nèi)生真菌后,NaCl(0.1~0.2 mol/Lm)和Na2SO4(0.1 mol/Lm)脅迫處理,可溶性蛋白含量變化同對(duì)照相比,差異不顯著(P>0.05),而未接種內(nèi)生真菌5種處理之間差異均不顯著(P>0.05),說明鹽脅迫對(duì)植物可溶性蛋白含量影響不明顯。
表2 鹽脅迫下深色有隔內(nèi)生真菌D575對(duì)樟子松苗木生理指標(biāo)的影響Tab.2 The effect of endophyte fungi D575 on P.sylvestris var.Mongolica physiological index under salt tolerance
(2)對(duì)保護(hù)酶活性的影響。植物在非生物脅迫條件下會(huì)直接或間接形成過量的活性氧自由基(ROS),對(duì)植物細(xì)胞膜系統(tǒng)具有破壞作用,逆境條件下,植物體內(nèi)的保護(hù)酶系統(tǒng)能夠清除多余的自由基,從而提高植物抗逆性,不受逆境脅迫傷害[23]。超氧化物岐化酶(SOD酶)、過氧化物酶(POD酶)和過氧化氫酶(CAT酶)是植物重要的保護(hù)酶,非鹽脅迫條件下,接種內(nèi)生真菌D575后,樟子松苗木SOD酶、POD酶和CAT酶通對(duì)照相比分別增加30.08%、54.49%和42.85%,可顯著提高植物的抗逆性(見表3)。在鹽脅迫條件下,同對(duì)照相比,SOD酶活增加29.65% ~35.11%,POD酶活增加50.55%-55.83%,CAT 酶 活 增 加 41.37% ~47.05%。均有大幅度的提高,進(jìn)一步證明,內(nèi)生真菌D575的存在,可顯著提高植物的抗逆性,有效抵御鹽脅迫對(duì)植物的傷害。
(3)對(duì)丙二醛含量的影響。活性氧代謝是植物對(duì)逆境脅迫的初始反應(yīng),鹽脅迫條件下,植物體內(nèi)活性氧的積累加劇,導(dǎo)致膜質(zhì)過氧化產(chǎn)物丙二醛含量迅速增加,而內(nèi)生真菌可提高宿主植物保護(hù)酶系活性,從而清除鹽脅迫所產(chǎn)生的超氧自由基和活性氧,減輕逆境對(duì)宿主植物的傷害[24]。未接種內(nèi)生真菌D575條件下,鹽脅迫處理后,樟子松丙二醛含量顯著增加(見表3),而無論是否有鹽脅迫,D575的存在均降低了植物體內(nèi)的丙二醛含量,在NaCl(0.1 ~0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)脅迫下,同對(duì)照相比,丙二醛含量分別降低13.33% ~17.91%,鹽脅迫濃度越高,降低效果越明顯,證明內(nèi)生真菌可降低宿主植物丙二醛含量,降低鹽分對(duì)植物的傷害。
(4)對(duì)脯氨酸含量的影響。植物在逆境下積累脯氨酸具有一定普遍性,脯氨酸可作為滲透調(diào)節(jié)物、膜和酶的保護(hù)物質(zhì)及自由基清除劑等,而對(duì)植物起保護(hù)作用[25]。在未接種條件下,非鹽脅迫的樟子松脯氨酸含量低于鹽脅迫下樟子松的脯氨酸含量,差異顯著(P<0.05)(見表3),說明鹽分脅迫提高了樟子松脯氨酸含量。無論是否有鹽脅迫,接種D575均可降低樟子松體內(nèi)脯氨酸含量。在NaCl(0.1 ~0.2 mol/Lm)和 Na2SO4(0.1 ~0.2 mol/Lm)脅迫下,同對(duì)照相比,丙二醛含量分別降低25.04% ~38.01%。
表3 鹽脅迫下深色有隔內(nèi)生真菌D575對(duì)樟子松抗逆指標(biāo)的影響Tab.3 The effect of endophyte fungi D575 on P.sylvestris var.Mongolica stress resistance physiological index under salt tolerance
(1)深色有隔內(nèi)生真菌D575可侵染樟子松,在與宿主植物互作過程中,通過提高宿主植物葉綠素含量,增強(qiáng)光合作用效率,進(jìn)而增加苗高、地徑和干物質(zhì)積累。
(2)深色有隔內(nèi)生真菌D575可提高樟子松苗木耐鹽性,與宿主植物互作后提高保護(hù)酶(SOD酶、POD酶和CAT酶)活性、同時(shí)降低丙二醛和游離脯氨酸含量緩解鹽脅迫對(duì)宿主植物的傷害。
植物根際益生菌與宿主植物的互作機(jī)制是近年研究的熱點(diǎn)問題,通過人為引入植物根際益生菌可促進(jìn)植物生長和養(yǎng)分吸收,提高宿主植物抗逆性,并在生態(tài)修復(fù)中發(fā)揮重要作用。益生菌提高植物耐鹽性機(jī)制包括:緩解植物細(xì)胞中過量活性氧自由基的積累,誘導(dǎo)植物細(xì)胞產(chǎn)生糖類和氨基酸等能夠調(diào)節(jié)滲透壓的物質(zhì)緩解植物的滲透壓壓力,減少由逆境環(huán)境所誘導(dǎo)產(chǎn)生的丙二醛等應(yīng)激化合物產(chǎn)生[26]。如玉米接種丁香假單胞菌(Pseudomonas syringae)、熒光假單胞菌(P.fluorescens)、產(chǎn)腸桿菌(Enter-obacter aerogenes)后,對(duì)鹽堿環(huán)境的耐受性顯著提高[27]。菌根菌可顯著提高植物耐鹽性[28-31],外生菌根菌如 Suillus bovinus、S.luteus[16]、Laccaria bicolor對(duì)一定濃度的鹽脅迫有較強(qiáng)的耐受性,并且可以顯著提高針葉樹種的耐鹽堿能力,Picea glauca和Pinus banksiana的實(shí)生苗在接種L.bicolor后,明顯提高了兩種針葉樹在鹽脅迫土壤上的存活率和生長量[32],與對(duì)照相比,針葉受到脅迫的傷害明顯減少[33]。
深色有隔內(nèi)生真菌是針葉樹重要的根際微生物,針葉樹根部深色有隔內(nèi)生真菌以Phialoceph ala fortinii s.l.—Acephala applanata species complex(PAC)類群集合為主,同菌根菌相比,其對(duì)宿主植物的益生作用研究較少,如通過代謝抑菌成分抑制病原菌、篩選低毒菌株控制土壤病原菌等方面證明了其生物防治能力[34-37],但目前還沒有其與宿主植物互作提高耐鹽性的報(bào)道。離體實(shí)驗(yàn)證明,深色有隔內(nèi)生真菌對(duì)鹽脅迫具有較強(qiáng)的耐受性[13-14],在 CNaCl≤0.4 mol/Lm 和 C Na2SO4≤0.2 mol/Lm的低中濃度鹽脅迫條件下,D575菌絲生長和對(duì)碳、磷相對(duì)利用率受抑制程度均較低,生長速率同對(duì)照相比相差不大。通過人工接種實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證明內(nèi)生真菌D575可提高宿主植物對(duì)鹽脅迫的耐受性,增加植物生物量積累,如在NaCl和Na2SO4脅迫下,同對(duì)照相比,苗高增加9.32% ~13.26%,鹽脅迫濃度越大,苗高增加越多,說明內(nèi)生真菌對(duì)樟子松促生作用越明顯。此外,接種內(nèi)生真菌D575后,顯著增加植物體內(nèi)保護(hù)酶活性,并降低丙二醛和游離脯氨酸的含量,最大程度降低鹽脅迫對(duì)植物的傷害。上述實(shí)驗(yàn)為進(jìn)一步田間實(shí)驗(yàn)打下基礎(chǔ)。
[1]施漢鈺,張楠.樟子松根系菌根菌與宿主共生關(guān)系的研究[J].森林工程,2014,30(4):39-41.
[2] Jumpponen A,Trappe J M.Dark septate endophytes:A review of facultative biotrophic root-colonizing fungi[J].New Phytologist,1998,140(2):295-310.
[3]劉茂軍,張興濤,趙之偉.深色有隔內(nèi)生真菌(DSE)研究進(jìn)展[J].菌物學(xué)報(bào),2009,28(06):888-894.
[4] Grunig C,Queloz V,Sieber T,et al.Dark septate endophytes(DSE)of the Phialocephala fortinii s.l.- Acephala applanata species complex in tree roots:classification,population biology,and ecology[J].Botany,2008,86(12):1355-1369.
[5] Zhang C,Yin L,Dai S.Diversity of root-associated fungal endophytes in Rhododendron fortunei in subtropical forests of China[J].Mycorrhiza,2009,19(6):417-423.
[6] Barrow J R.Atypical morphology of dark septate fungal root endophytes of Bouteloua in arid southwestern USA rangelands[J].Mycorrhiza,2003,13(5):239-247.
[7] Ban Y,Tang M,Chen H,et al.The response of dark septate endophytes(DSE)to heavy metals in pure culture[J].PLoS ONE,2012,7(10):e47968.
[8] Zhan F,He Y,Li T,et al.Tolerance and antioxidant response of a dark septate endophyte(DSE),exophiala pisciphila,to cadmium stress[J].Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology,2015,94(1):96-102.
[9] Zhao D,Li T,Shen M,et al.Diverse strategies conferring extreme cadmium(Cd)tolerance in the dark septate endophyte(DSE),Exophiala pisciphila:Evidence from RNA-seq data[J].Microbiological Research,2015,170(2):27-35.
[10] Narisawa K,Hambleton S,Currah R S.Heteroconium chaetospira,a dark septate root endophyte allied to the Herpotrichiellaceae(Chaetothyriales)obtained from some forest soil samples in Canada using bait plants[J].Mycoscience,2007,48(5):274-281.
[11] Narisawa K,Usuki F,Hashiba T.Control of verticillium yellows in Chinese cabbage by the dark septate endophytic fungus LtVB3[J].Phytopathology,2004,94(5):412-418.
[12] Narisawa K,Ohki K T,Hashiba T.Suppression of clubroot and verticillium yellows in Chinese cabbage in the field by the root endophytic fungus,Heteroconium chaetospira [J].Plant Pathology,2001,49(1):141-146.
[13]宋小雙,鄧 勛,遇文婧,等.鹽脅迫對(duì)深色有隔內(nèi)生真菌D575和D377生長及營養(yǎng)代謝的影響[J].中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2015,31(13):36-42.
[14]鄧 勛,宋小雙,尹大川,等.鹽脅迫對(duì)2株深色有隔內(nèi)生真菌(DSE)生長及營養(yǎng)代謝的影響[J].中南林業(yè)科技大學(xué)學(xué)報(bào),2015,35(5):1-8.
[15] 尹大川,鄧 勛,Ilan Chet,等.厚環(huán)乳牛肝菌(Suillus grevillei)N40與綠木霉(Trichoderma virens)T43復(fù)合接種下樟子松苗木的生理響應(yīng)[J].生態(tài)學(xué)雜志,2014,33(8):2142-2147.
[16]張峰峰.甘肅鹽堿土植物菌根真菌資源與耐鹽性研究[D].楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2007.
[17] Phillips J M,Hayman D S.Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection[J].Transactions of the British Mycological Society,1970,55(1):118-158.
[18]李 娟,張耀庭,曾 偉,等.應(yīng)用考馬斯亮藍(lán)法測定總蛋白含量[J].中國生物制品學(xué)雜志,2000,13(2):118-120.
[19]張憲政.植物葉綠素含量測定——丙酮乙醇混合液法[J].遼寧農(nóng)業(yè)科學(xué),1986(3):26-28.
[20]李沖偉,楊立賓,鄧 勛,等.木霉菌株對(duì)金黃殼囊孢菌的抑菌效應(yīng)及機(jī)制[J].林業(yè)科學(xué),2012,48(9):88-94.
[21]張永峰,殷波.混合鹽堿脅迫對(duì)苗期紫花苜蓿抗氧化酶活性及丙二醛含量的影響[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2009,18(1):46-50.
[22]張殿忠,汪沛洪,趙會(huì)賢.測定小麥葉片游離脯氨酸含量的方法[J].植物生理學(xué)通訊,1990(4):62-65.
[23]李 健,蔣志榮,王繼和,等.水分脅迫下四種濱藜屬植物保護(hù)酶活性的變化[J].甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,41(5):76-80.
[24]孫淑萍,邱 靖,萬 欣,等.SO2對(duì)3種垂直綠化植物丙二醛及保護(hù)酶的影響[J].林業(yè)科技開發(fā),2010,24(5):50-52.
[25]肖 強(qiáng),陳 娟,吳飛華,等.外源NO供體硝普鈉(SNP)對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗中葉綠素和游離脯氨酸含量以及抗氧化酶的影響[J].作物學(xué)報(bào),2008,34(10):1849-1853.
[26] Glick B R.Modulation of plant ethylene levels by the bacterial enzyme ACC deaminase[J].FEMS Microbiology Letters,2005,251(1):1-7.
[27] Barassi C A,Ayrault G,Creus C M,et al.Seed inoculation with Azospirillum mitigates NaCl effects on lettuce[J].Scientia Horticulturae,2006,109(1):8-14.
[28]張峰峰,趙玉潔,謝鳳行,等.AM真菌提高植物耐鹽性研究進(jìn)展與展望[J].天津農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,14(6):66-70.
[29]賀忠群,賀超興,張志斌,等.叢枝菌根真菌提高植物耐鹽性的作用機(jī)制[J].西北植物學(xué)報(bào),2007,27(2):414-420.
[30]王桂君,張麗輝,趙驥民,等.鹽性條件下的AM真菌以及AM真菌提高植物耐鹽性研究[J].長春師范學(xué)院學(xué)報(bào),2004,23(10):64-68.
[31]馮固,李曉林,張福鎖,等.VA菌根提高植物耐鹽性研究進(jìn)展[J].西北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1999,27(3):97-103.
[32] Grégory B,J B F,Annick B,et al.Ectomycorrhizal fungi affect the physiological responses of Picea glauca and Pinus banksiana seedlings exposed to an NaCl gradient.[J].Tree Physiology,2006,26(9):1185-1196.
[33] Calvo-Polanco M,Zwiazek J J,Jones M D,et al.Effects of NaCl on responses of ectomycorrhizal black spruce(Picea mariana),white spruce(Picea glauca)and jack pine(Pinus banksiana)to fluoride[J].Physiologia Plantarum,2009,135(1):51-61.
[34] Hugentobler I,Reininger V,Sieber T N.Control of pathogenic PAC strains by non-pathogenic PAC strains in planta does not correlate with higher competitiveness of non-pathogenic PAC strains ex planta[J].Mycological Progress,2014,13(4):1241-1247.
[35] Tellenbach C,Sumarah M W,Grünig C R,et al.Inhibition of Phytophthora species by secondary metabolites produced by the dark septate endophyte Phialocephala europaea[J].Fungal Ecology,2013,6(1):12-18.
[36] Tellenbach C,Sieber T N.Do colonization by dark septate endophytes and elevated temperature affect pathogenicity of oomycetes?[J].FEMS Microbiology Ecology,2012,82(1):157-168.
[37]宋小雙,鄧 勛,遇文婧,等.一株生防內(nèi)生真菌D202對(duì)立枯絲核菌的抑制作用及生理學(xué)特性研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,42(27):9274-9275.