賈 健,李艷博,郭彩霞(首都醫(yī)科大學公共衛(wèi)生學院,北京100069)
納米材料誘導細胞死亡的研究進展
賈 健,李艷博,郭彩霞
(首都醫(yī)科大學公共衛(wèi)生學院,北京100069)
隨著納米材料在生物醫(yī)藥、材料化工等眾多領域日益廣泛的應用,納米材料環(huán)境暴露及其引發(fā)的細胞毒性效應受到了研究人員的高度關注,成為納米毒理和納米醫(yī)藥研究領域中一個新的研究方向。納米材料的毒性作用研究不僅為納米材料的安全性評價提供了理論依據(jù),而且有助于進一步擴展納米技術的應用領域。本文重點闡述納米材料在細胞自噬、凋亡和壞死中的作用,并探討納米材料誘導不同細胞死亡方式的可能機制,為納米材料的毒性研究和安全性評價提供參考。
納米材料;細胞死亡;細胞凋亡;自噬;壞死
DOl:10.3867/j.issn.1000-3002.2016.04.018
納米材料由尺寸在1~100 nm之間的納米粒子組成。通常將三維都在納米尺度的納米材料稱為納米顆粒。憑借尺寸小、比表面積大、吸附能力強和化學反應活性高等理化性質,納米材料被廣泛應用于生物傳感、醫(yī)療診斷、造影成像、藥物運輸?shù)阮I域。大量研究表明,多種納米材料具有細胞毒作用,可誘導細胞死亡。一般來說,納米材料進入細胞需要先穿越細胞膜,通過被動擴散或內吞作用,在細胞中釋放、擴散并分布在細胞質或多種細胞器中[1]。在此過程中,納米材料可能會生成活性氧(reactive oxygen species,ROS)導致氧化應激,聚團沉淀,或形成相應的離子(如金屬氧化物)破壞細胞器或細胞結構,并與生物大分子及其他分子相互作用,影響細胞正常功能,造成毒性損傷,導致細胞死亡。本文按照細胞死亡結局的類型,對納米材料誘導細胞死亡的方式及其可能的分子機制進行綜述。
細胞自噬是在細胞質中形成的雙層或多層膜結構的自噬小體通過和溶酶體融合對包裹的內容物進行降解的過程,是細胞程序性死亡的執(zhí)行方式之一,主要有3種形式:大自噬、小自噬和分子伴侶介導的自噬。自噬在某些情況下會保護細胞,但在另一些情況下會引起細胞損傷,導致細胞發(fā)生自噬性細胞死亡[2]。近來,從細胞自噬角度,探討納米材料可否用于控制某些惡性腫瘤、神經(jīng)退行性疾病的發(fā)展或作為疾病治療干預策略,受到了廣大學者的關注。已有研究表明,有的納米材料可選擇性誘導腫瘤細胞發(fā)生自噬;C60富勒烯-己酮可可堿復合納米材料能通過增強自噬效應消除β-淀粉樣多肽引發(fā)的細胞毒性[3]。不過,納米材料在正常細胞中引發(fā)的自噬可能產(chǎn)生細胞毒性,需要加以規(guī)避。
1.1金屬納米材料與細胞自噬
絕大多數(shù)金屬納米材料引起的細胞自噬是促進細胞死亡,如納米金能誘導細胞自噬,同時細胞發(fā)生氧化損傷,細胞內脂質過氧化產(chǎn)物以及抗氧化和氧化應激相關因子表達量顯著升高[4];但某些情況下,納米材料引起的自噬促進細胞存活,自噬可能是細胞的一個自我防御機制。有研究發(fā)現(xiàn),阻斷納米銀誘導的自噬體形成,可導致細胞凋亡[5],且阻礙線粒體自噬會引起損傷線粒體的聚集,細胞能量代謝受影響[6]。納米金能誘導細胞自噬,且其誘導的細胞內自噬體的積累或自噬相關蛋白微管相關蛋白輕鏈3(microtubule-associated protein light chain 3,LC3)Ⅱ表達量的升高是由于自噬流阻斷引起的[7]。溶酶體的功能紊亂可能與自噬流的阻斷有聯(lián)系。被細胞吞噬的納米金最終積聚在溶酶體內,使其堿化從而破壞其降解能力。還有研究發(fā)現(xiàn),納米金可通過ROS抑制磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)/蛋白激酶B (protein kinase B,又名Akt)/哺乳動物西羅莫司(雷帕霉素)靶蛋白〔mammalian target of sirolimus (Rapamycin),mTOR〕信號通路,誘導低氧處理的人近端腎小管上皮細胞HK-2發(fā)生自噬性死亡,但正常HK-2細胞可通過自噬體的形成而免受納米金的毒性[8],提示在使用納米顆粒進行生物醫(yī)藥相關的研究及應用中必須要考慮到細胞狀態(tài)。
1.2納米氧化物與細胞自噬
稀土金屬氧化物被認為是自噬誘導劑[9],同樣普通常見的氧化物納米材料也能在一定程度上引起自噬的發(fā)生。研究發(fā)現(xiàn),氧化鋅(zinc oxide,ZnO)納米顆粒的毒性由Zn2+的釋放所介導,自噬是其誘導細胞死亡的主要方式之一[10-11]。體內外研究表明,ZnO納米顆粒表面釋放的Zn2+可引起胞內ROS大量升高,上調自噬相關蛋白LC3Ⅰ、LC3Ⅱ和自噬蛋白5(autophagy protein 5,Atg-5),促進自噬體形成而誘導死亡并呈劑量依賴性加重[12]。而阻斷細胞攝取Zn2+或提供抗氧化劑或自噬特異性抑制劑3-甲基腺嘌呤(3-methyladenine,3-MA)可抑制ZnO納米顆粒誘導的自噬[13]。
除ZnO納米顆粒外,包括氧化鐵(iron oxide,F(xiàn)e2O3)、四氧化三鐵(ferroferric oxide,F(xiàn)e3O4)、氧化銅(copper oxide,CuO)、氧化鋁(aluminum oxide,Al2O3)、二氧化硅(silica dioxide,SiO2)以及二氧化鈦(titanium oxide,TiO2)等在內的多種納米氧化物均可誘導細胞自噬,如:Fe3O4納米顆??赏ㄟ^增加Beclin 1和Atg14并降低Bcl-2的含量促進自噬起始復合物的形成,呈時間濃度依賴性增加LC3Ⅱ并減少P62,引發(fā)血細胞自噬[14]。不過,不同氧化物納米顆粒對細胞的毒性效應及誘導細胞自噬的能力不同。有研究評估了CuO,SiO2,TiO2,F(xiàn)e2O3和Fe3O4納米顆粒對腫瘤細胞的毒性效應[15],結果只有CuO納米顆粒顯示出明顯的細胞毒性,導致細胞中自噬體積累、LC3Ⅱ表達升高,而加入3-MA可顯著提高細胞活力。
1.3納米材料誘導細胞自噬的可能機制
納米材料誘導細胞自噬所涉及的分子機制尚處于研究階段,且不同納米材料不盡相同。Khan等[16]發(fā)現(xiàn),F(xiàn)e2O3納米顆粒能選擇性地通過Akt/腺苷酸活化蛋白激酶(adenosine monophosphateactivated protein kinase,AMPK)/mTOR通路誘導腫瘤細胞發(fā)生自噬,從而顯著殺傷腫瘤細胞而對正常細胞不具有毒性效應。新近研究顯示,血管內皮細胞生長因子受體2(vascular endothelial growth factor receptor 2,VEGFR2)相關的自噬活化通路,可能在維持細胞內環(huán)境穩(wěn)定和清除異物方面起重要作用。研究表明,SiO2納米顆??赏ㄟ^VEGFR2/ PI3K/Akt/mTOR和VEGFR2/絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)/細胞外調節(jié)蛋白激酶1/2(extracellular regulated pro?tein kinases,ERK1/2)/mTOR信號通路引起人臍靜脈血管內皮細胞(human umbilical vein endothelial cell,HUVEC)自噬[17-18],還可通過氧化應激引發(fā)人肝癌細胞HepG2出現(xiàn)細胞自噬性死亡[19]。同樣,錳納米顆粒誘導產(chǎn)生的ROS及其引起的氧化應激和線粒體損傷相關凋亡信號對自噬的產(chǎn)生起一定的作用[20];羧基化單壁碳納米管誘導人肺腺瘤細胞A549自噬體產(chǎn)生依靠的是Akt/結節(jié)性硬化癥復合物1/2(tu?berous sclerosis complex,TSC1/2)/mTOR通路[21]。此外,細胞骨架的紊亂可影響細胞內囊泡的轉運,納米材料對細胞骨架的影響也可能是自噬功能紊亂和自噬體堆積的機制之一。研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)e2O3納米顆??墒笻UVEC細胞中肌動蛋白和微管蛋白的骨架網(wǎng)絡排列混亂,導致自噬功能損傷[22]。SiO2納米顆粒也可誘導細胞骨架的斷裂,并伴有線粒體的去極化和自噬體的堆積[18]。
細胞凋亡是由基因控制的細胞主動程序性死亡,與組織發(fā)生、器官細胞穩(wěn)定的維持、免疫以及腫瘤、自身免疫性疾病和衰老等的發(fā)生密切相關。納米材料是否對細胞凋亡過程產(chǎn)生特殊的影響,是近年來納米醫(yī)學研究的重要問題之一。研究發(fā)現(xiàn),無論是正常細胞還是腫瘤細胞,納米材料均有引發(fā)其凋亡的報道。不過,某些納米材料在一定條件可抑制細胞凋亡。有研究發(fā)現(xiàn),單壁碳納米管在一個長達6個月的慢性暴露實驗中,表現(xiàn)出通過活化Akt/ P53/Bcl-2信號通路并下調Bax和Noxa的表達而使肺上皮細胞抵抗細胞凋亡,阻斷細胞發(fā)生惡變[23]。
2.1金屬納米材料與細胞凋亡
大量研究表明,納米銀、納米金和納米銅等金屬納米材料具有促細胞凋亡作用。納米銀可誘導體外培養(yǎng)的多種細胞發(fā)生凋亡,包括宮頸癌細胞、表皮角質細胞[24]和巨噬細胞[25]等,還能誘導囊胚期內細胞團和滋養(yǎng)外胚層細胞發(fā)生凋亡,進而抑制胚胎細胞增殖[26]。體內實驗觀察到納米銀可誘導瑞士白化(swiss albino)小鼠肝細胞出現(xiàn)凋亡現(xiàn)象,可能與其誘導DNA損傷有關[27]。納米金可造成HL-7702細胞脂質過氧化,使細胞發(fā)生氧化應激,降低線粒體膜電位,誘導細胞凋亡[28];也可因胞質分裂阻滯(細胞分裂障礙)而導致細胞凋亡[29]。納米銅通過線粒體機制引起一種石斑魚(Epinephelus coiodes)的腸上皮細胞凋亡[30]。
2.2納米氧化物與細胞凋亡
ZnO納米顆粒可誘導多種腫瘤細胞發(fā)生凋亡。研究顯示,ZnO納米顆??烧T導HepGⅡ細胞內P53、Bax表達上調,Bcl-2表達下降,活化胱天蛋白酶3,造成DNA片段化,產(chǎn)生ROS引發(fā)氧化應激[31]。Fe3O4納米顆??烧T導肝細胞HL-7702發(fā)生氧化應激、DNA損傷和細胞凋亡[32],還可通過氧化應激激活JNK和P53信號通路,導致神經(jīng)細胞發(fā)生細胞周期紊亂和凋亡[33]。CuO納米顆粒也可通過ROS大量生成誘導腎上皮細胞DNA損傷,最終導致以凋亡方式為主的細胞死亡[34],還可通過增加胱天蛋白酶3的活性誘導細胞凋亡[35]。二巰基丁二酸包被的Fe2O3納米顆??梢鹑酥鲃用}血管細胞中促凋亡和抑凋亡基因表達發(fā)生改變,激活氧化應激相關基因和黏附分子表達,抑制血管生成[36]。至于非金屬氧化物納米顆粒,SiO2納米顆粒可進入線粒體,激活線粒體介導的細胞凋亡通路[37]。還有研究用SiO2包被的MnO納米顆粒處理鼠纖維細胞L929,發(fā)現(xiàn)這種混合納米顆粒首先在胞內產(chǎn)生大量ROS,隨后使得Bax/Bcl-2比值增高,引起P53活性增加,最終引起G2/M期阻滯、胱天蛋白酶3活性增加,導致凋亡[38]。
2.3納米材料誘導細胞凋亡的可能機制
雖然對于納米材料誘導細胞凋亡進行了較多的研究,但納米材料引起細胞凋亡的原因尚無完善的理論機制。而且,納米材料可能是通過多種途徑來誘導細胞凋亡,具體以哪種途徑為主,也會受到納米材料的粒徑、形狀、表面性質和細胞類型等眾多因素的影響。
2.3.1氧化應激途徑
近年來研究發(fā)現(xiàn),損害抗氧化系統(tǒng)和氧化應激是納米材料誘發(fā)凋亡的主要機制。納米材料可能通過產(chǎn)生大量的ROS引起氧化應激。如CuO納米顆粒作用于小鼠海馬趾細胞HT22,可呈時間-濃度依賴性下調谷胱甘肽過氧化物酶、超氧化物歧化酶和谷胱甘肽轉移酶的活性以及谷胱甘肽的表達,破壞抗氧化系統(tǒng),導致大量ROS聚集,引起B(yǎng)ax/Bcl-2比值增高,導致凋亡[39],若在CuO納米顆粒處理前給予具有抗氧化活性的藏紅花酸(crocetin)可使細胞免于這種毒性損傷。同樣,TiO2[40]和Fe2O3[41]納米顆??赏ㄟ^ROS誘導細胞凋亡。
2.3.2線粒體途徑
線粒體是細胞能量工廠,在細胞凋亡過程中發(fā)揮重要作用。ROS的大量生成可直接或間接作用于線粒體,誘導線粒體損傷。多種納米材料均可誘導線粒體損傷,進而通過線粒體途徑介導細胞凋亡。研究顯示,TiO2納米顆粒在胞內破壞抗氧化系統(tǒng),產(chǎn)生大量ROS導致線粒體功能障礙是其誘導神經(jīng)細胞凋亡的機制之一[42]。納米鎳作用于HepGⅡ,可通過產(chǎn)生大量ROS引起線粒體膜電位改變,進而通過線粒體途徑誘導胱天蛋白酶3活性增加,上調P53及Bax/Bcl-2比值,使細胞周期阻滯于G0/G1期,導致細胞發(fā)生凋亡[43]。納米銀也通過ROS相關線粒體應激途徑使小鼠胚胎成纖維細胞發(fā)生凋亡[44]。
2.3.3內質網(wǎng)應激途徑
正確折疊和聚集蛋白、合成脂類和固醇以及儲存Ca2+等都離不開內質網(wǎng)的穩(wěn)態(tài)。胞內未折疊蛋白的大量聚集可引起內質網(wǎng)應激(endoplasmic re?ticulum stress,ERS)。ERS通常很快恢復穩(wěn)態(tài),但長時間ERS則可通過CHOP和JNK通路引起凋亡。近年來研究也發(fā)現(xiàn),納米材料可通過ERS途徑誘導細胞凋亡。ZnO納米顆粒可誘導ERS信號通路活化,表現(xiàn)為糖調節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein 78,GRP78)、二硫鍵異構酶(PDI)、X盒結合蛋白1(X box binding protein1,XBP 1)、真核起始因子2(eukaryotic initiation factor 2ɑ,eIF2ɑ)和蛋白激酶R樣內質網(wǎng)激酶(protein kinase R-like ER kinase,PERK)含量增多,進而促進胱天蛋白酶3,9和12活化,c-Jun氨基端激酶(c-Jun N-termi?nal kinase,JNK)和CHOP等被磷酸化,且Bax被上調,最終導致小鼠肝細胞凋亡[45]。若沉默CHOP表達,可降低ERS強度,進而減弱納米銀誘導的細胞凋亡[46]。
2.3.4死亡受體途徑
個別研究報道顯示,死亡受體Fas/FasL途徑可能參與納米材料誘導的細胞凋亡過程。Choi等[47]研究發(fā)現(xiàn),量子點能引起神經(jīng)母細胞瘤SH-SY5Y細胞表面Fas的表達上調,增加細胞膜的脂質過氧化,從而導致細胞功能損傷。另外,氧化鈷納米顆粒對淋巴細胞的損傷中,通過產(chǎn)生大量的ROS誘導TNF-ɑ合成,隨后通過胱天蛋白酶8/P38/胱天蛋白酶3通路誘導細胞凋亡[48]。
2.3.5其他途徑
納米銀進入細胞后,大量聚集在胞質和核內,除通過胱天蛋白酶依賴途徑誘導細胞凋亡外,還可通過非胱天蛋白酶依賴途徑誘導細胞凋亡,這主要與細胞凋亡誘導因子(apoptosis inducing factor,AIF)和P38 MAPK的轉移有關[49]。除MAPK通路外,P53通路也參與納米材料誘導的細胞凋亡。Hori等[50]研究發(fā)現(xiàn),氧化鎳納米顆粒經(jīng)P53通路誘導細胞凋亡,同時去乙?;?沉默信息調節(jié)因子(silent information regulator 1,sirtuin 1)的表達受抑制。sirtuin1是一種NAD+依賴性脫乙?;?,可使P53等發(fā)生脫乙?;?。進一步研究發(fā)現(xiàn),過表達sir?tuin1可抑制氧化鎳納米顆粒誘導的細胞凋亡作用[51]。
從上述研究可見,ROS介導的氧化應激、線粒體途徑、死亡受體途徑、內質網(wǎng)途徑以及P53、MAPK等信號通路在納米材料誘導細胞凋亡過程中均發(fā)揮一定作用。不過,細胞凋亡途徑并非獨立,而是交織在一起的,有效地放大了凋亡信號。如TiO2納米顆??烧T導小鼠海馬趾神經(jīng)元細胞內Ca2+濃度升高、線粒體膜電位降低,上調促凋亡蛋白細胞色素c、Bax、胱天蛋白酶3和12的表達,并減少抑凋亡蛋白Bcl-2表達,可見TiO2納米顆粒可通過線粒體和內質網(wǎng)兩條途徑誘發(fā)神經(jīng)細胞凋亡[52]。同樣,ZnO納米顆粒通過ERS和氧化應激途徑使肝細胞發(fā)生凋亡[45]。
細胞壞死是細胞受到強烈刺激而發(fā)生的死亡現(xiàn)象。因壞死過程不需要合成新蛋白、低耗能,且不受穩(wěn)態(tài)機制調控,屬于被動性死亡。在生理和病理過程中均可有細胞壞死存在,而且細胞凋亡和壞死常發(fā)生在同一生理或病理學過程中。目前對于細胞壞死信號通路的了解甚少,納米材料誘發(fā)細胞發(fā)生壞死的機制尚不清楚。細胞內的ATP含量的降低、高濃度的ROS和Bcl-2大量表達引起的Bcl-2家族蛋白表達的失衡、胱天蛋白酶活性受到抑制等都可能會引發(fā)細胞壞死。Pan等[53]研究發(fā)現(xiàn),納米金可通過氧化應激和線粒體損害誘導細胞壞死而發(fā)生死亡。單分散的非晶體球形硅納米顆粒主要是通過壞死方式誘導內皮細胞EAHY926發(fā)生死亡[54]。SiO2納米顆粒包裹了Ce3+后,可極強地誘導人外周血細胞發(fā)生壞死[55]。
納米材料的毒性作用表現(xiàn)在可誘導細胞以不同的方式發(fā)生死亡,但各細胞死亡方式并不是孤立的,相互之間存在一定的轉換調節(jié)機制。不同的細胞死亡方式在細胞生化代謝、形態(tài)學改變等方面有著顯著不同,但在功能上有著一定的聯(lián)系。近年來研究發(fā)現(xiàn),自噬可通過內在的分子調控機制與凋亡相互協(xié)調轉化,從而調控細胞的生存和死亡。某些情況下,自噬抑制凋亡,促進細胞存活,但自噬本身也會誘導細胞死亡,或與凋亡共同作用,協(xié)同促進細胞死亡。Bcl-2蛋白家族、胱天蛋白酶、Atg、P53等是細胞自噬與凋亡交互作用的重要調節(jié)因子。此外,受體相互作用蛋白3(receptor-interacting protein 3,RiP3)是凋亡和壞死轉換的分子開關。RiP3低水平表達細胞死亡方式選擇凋亡,高水平表達則引導細胞走向壞死?,F(xiàn)有研究表明,納米材料作用劑量不同可誘導不同的細胞死亡方式,常表現(xiàn)為納米材料低濃度作用后,細胞發(fā)生自噬或凋亡;而在較高或高濃度作用下,細胞發(fā)生壞死。例如,納米銀顆粒誘導細胞發(fā)生凋亡所需濃度遠低于誘導細胞產(chǎn)生壞死所需濃度[56];TiO2納米顆粒30 mg·L-1誘導小鼠L929成纖維細胞發(fā)生凋亡,而TiO2納米顆粒600 mg·L-1可直接誘導細胞發(fā)生壞死[57];富勒烯C60高劑量暴露可引起腦膠質瘤細胞U251發(fā)生ROS介導的壞死性細胞損傷,這與氧化應激誘導細胞外信號調節(jié)激酶ERK活化有關,而低劑量下則引發(fā)ROS非依賴的自噬性細胞死亡[58]。
近年來,納米材料生物毒性數(shù)據(jù)已有一定的積累,納米材料引發(fā)細胞死亡及其毒作用機制有了一定的認識,但仍存在一些不足。一方面研究主要集中于體外培養(yǎng)的細胞系,而在體內正常組織及細胞中的研究還遠遠不夠;另一方面,實驗所用納米材料的理化性能(材料組成、尺度、形貌和表面性質等)、實驗設計和實驗條件等的不同,使得納米材料誘導細胞死亡方面的實驗結果不全一致,甚至存在矛盾報道。納米材料誘導細胞死亡受多種因素的影響。無論通過哪種方式誘導細胞死亡,都受納米材料本身、其粒徑大小和表面化學性質等的影響。對納米材料進行表面修飾可影響細胞死亡的發(fā)生及發(fā)生方式。因此,為規(guī)范納米材料生物毒性研究,今后納米毒理學研究需建立一套相對完整、科學的納米材料毒性測試的標準方法。此外,當前毒理學研究主要關注納米材料高劑量毒性效應,但為更切實地貼近納米材料實際暴露情況,納米材料的長期低劑量暴露及其毒性效應,如遺傳毒性和致癌性等更值得關注。
目前納米材料誘導細胞死亡的確切分子機制尚未完全闡明。納米材料誘導細胞死亡的機制現(xiàn)多見于氧化應激、線粒體介導細胞凋亡通路的激活、細胞膜通透性的改變以及DNA的斷裂,使得某些細胞最初產(chǎn)生大量自噬體以免除這種毒性損傷或最終導致自噬性死亡、凋亡,重者可致壞死。隨著研究的不斷深入和研究成果的不斷積累,新的毒性損傷機制逐漸被探索出來,但是ERS、代謝或信號轉導相關蛋白的功能或結構上的改變機制等方面的研究成果相對較少,有待進一步研究發(fā)現(xiàn)其中潛在的價值,以及尚未發(fā)掘的機制。此外,除了文中所闡述的自噬、凋亡和壞死外,細胞還存在別的死亡方式,如脹亡、有絲分裂災變死亡和衰老等,而它們在納米材料毒性效應中的作用及其分子機制尚不明確,以及不同死亡方式之間的聯(lián)系還不清楚。
納米材料誘導細胞死亡效應具有兩面性,一方面可能會引發(fā)應用于人體的生物安全問題,提示應加強納米材料的安全性評價,另一方面合理應用其促進靶細胞死亡的作用,將為疾病治療提供新希望,為納米材料提供更為廣闊的應用前景。雖然在納米毒理學研究中還有很多未知問題,但納米材料在疾病診治方面的應用給醫(yī)藥衛(wèi)生事業(yè)的發(fā)展帶來了新選擇。今后應全面深入研究納米材料誘導細胞死亡的分子機制以及不同死亡方式之間的交互作用機制,從而在分子水平有效地調控納米材料引發(fā)的細胞死亡效應,為人類疾病的認知和治療帶來新突破。
[1]Zhang Y,Hensel M.Evaluation of nanoparticles as endocytic tracers in cellular microbiology[J]. Nanoscale,2013,5(19):9296-9309.
[2] Yang YH,Bao Y,Jiang XX.Autophagy and newstrategy for cancer prevention and treatment [J].Chin J Pharmacol Toxicol(中國藥理學與毒理學雜志),2015,29(2):179-190.
[3] Lee CM,Huang ST,Huang SH,Lin HW,Tsai HP,Wu JY,et al.C60 fullerene-pentoxifylline dyad nanoparticles enhance autophagy to avoid cyto?toxic effects caused by the β-amyloid peptide[J]. Nanomedicine,2011,7(1):107-114.
[4] Li JJ,Hartono D,Ong CN,Bay BH,Yung LY. Autophagy and oxidative stress associated with gold nanoparticles[J].Biomaterials,2010,31 (23):5996-6003.
[5] Lin J,Huang Z,Wu H,Zhou W,Jin P,Wei P,et al.Inhibition of autophagy enhances the anti?cancer activity of silver nanoparticles[J].Autopha?gy,2014,10(11):2006-2020.
[6]Kim I,Lemasters JJ.Mitophagy selectively de?grades individual damaged mitochondria after photoirradiation[J].AntioxidRedoxSignal,2011,14(10):1919-1928.
[7] Ma X,Wu Y,Jin S,Tian Y,Zhang X,Zhao Y,et al.Gold nanoparticles induce autophagosome accumulation through size-dependent nanoparticle uptake and lysosome impairment[J].ACS Nano,2011,5(11):8629-8639.
[8] Ding F,Li Y,Liu J,Liu L,Yu W,Wang Z,et al. Overendocytosis of gold nanoparticles increases autophagy and apoptosis in hypoxic human renal proximal tubular cells[J].Int J Nanomed,2014,9:4317-4330.
[9] Man N,Yu L,Yu SH,Wen LP.Rare earth oxide nanocrystals as a new class of autophagy induc?ers[J].Autophagy,2010,6(2):310-311.
[10] Hackenberg S,Scherzed A,Gohla A,Technau A,F(xiàn)roelich K,Ginzkey C,et al.Nanoparticle-in?duced photocatalytic head and neck squamous cell carcinoma cell death is associated with au?tophagy[J].Nanomedicine(Lond),2014,9(1):21-33.
[11] Roy R,Singh SK,Chauhan LK,Das M,Tripathi A,DwivediPD.Zincoxidenanoparticlesinduce apoptosis by enhancement of autophagy via PI3K/ Akt/mTOR inhibition[J].Toxicol Lett,2014,227 (1):29-40.
[12] Yu KN,Yoon TJ,Minai-Tehrani A,Kim JE,Park SJ,Jeong MS,et al.Zinc oxide nanoparticle in?duced autophagic cell death and mitochondrial damage via reactive oxygen species generation [J].Toxicol In Vitro,2013,27(4):1187-1195.
[13] Johnson BM,F(xiàn)raietta JA,Gracias DT,Hope JL,Stairiker CJ,Patel PR,et al.Acute exposure to ZnO nanoparticles induces autophagic immune cell death[J].Nanotoxicology,2015,9(6):737-748.
[14] Shi M,Cheng L,Zhang Z,Liu Z,Mao X.Ferro?ferric oxide nanoparticles induce prosurvival au?tophagy in human blood cells by modulating the Beclin 1/Bcl-2/VPS34 complex[J].Int J Nanomed,2015,10:207-216.
[15] Sun T,Yan Y,Zhao Y,Guo F,Jiang C.Copperoxide nanoparticles induce autophagic cell death in A549 cells[J].PLoS One,2012,7(8):e43442.
[16]Khan MI,Mohammad A,Patil G,Naqvi SA,Chauhan LK,Ahmad I.Induction of ROS,mito?chondrial damage and autophagy in lung epitheli?al cancer cells by iron oxide nanoparticles[J]. Biomaterials,2012,33(5):1477-1488.
[17] Duan J,Yu Y,Yu Y,Li Y,Wang J,Geng W,et al.Silica nanoparticles induce autophagy and en?dothelial dysfunction via the PI3K/Akt/mTOR sig?naling pathway[J].Int J Nanomed,2014,9:5131-5141.
[18] Duan J,Yu Y,Yu Y,Li Y,Huang P,Zhou X,et al. Silica nanoparticles enhance autophagic activity,disturb endothelial cell homeostasis and impair angiogenesis[J].Part Fibre Toxicol,2014,11:50.
[19] Yu Y,Duan J,Yu Y,Li Y,Liu X,Zhou X,et al. Silica nanoparticles induce autophagy and autoph?agic cell death in HepG2 cells triggered by reac?tive oxygen species[J].J Hazard Mater,2014,270:176-186.
[20] Afeseh Ngwa H,Kanthasamy A,Gu Y,F(xiàn)ang N,AnantharamV,KanthasamyAG.Manganese nanoparticle activates mitochondrial dependent apoptotic signaling and autophagy in dopaminer?gic neuronal cells[J].Toxicol Appl Pharmacol,2011,256(3):227-240.
[21] Liu HL,Zhang YL,Yang N,Zhang YX,Liu XQ,Li CG,et al.A functionalized single-walled car?bon nanotube-induced autophagic cell death in human lung cells through Akt-TSC2-mTOR signal?ing[J].Cell Death Dis,2011,2(5):e159.
[22] Wu X,Tan Y,Mao H,Zhang M.Toxic effects of iron oxide nanoparticles on human umbilical vein endothelial cells[J].Int J Nanomed,2010,5:385-399.
[23] Chen D,Stueckle TA,Luanpitpong S,Rojanasakul Y,Lu Y,Wang L.Gene expression profile of human lung epithelial cells chronically exposed to single-walled carbon nanotubes[J].Nanoscale Res Lett,2015,10:12.
[24]Mukherjee SG.O′Claonadh N,Casey A,Cham?bers G.Comparative in vitro cytotoxicity study of silver nanoparticle on two mammalian cell lines [J].Toxicol In Vitro,2012,26(2):238-251.
[25]Park EJ,Yi J,Kim Y,Choi K,Park K.Silver nanoparticles induce cytotoxicity by a Trojanhorse type mechanism[J].Toxicol In Vitro,2010,24(3):872-878.
[26] Li PW,Kuo TH,Chang JH,Yeh JM,Chan WH. Induction of cytotoxicity and apoptosis in mouse blastocysts by silver nanoparticles[J].Toxicol Lett,2010,197(2):82-87.
[27] Al Gurabi MA,Ali D,Alkahtani S,Alarifi S.In vivo DNA damaging and apoptotic potential of silver nanoparticles in Swiss albino mice[J].Onco Tar?gets Ther,2015,8:295-302.
[28]Gao W,Xu K,Ji L,Tang B.Effect of gold nanoparticles on glutathione depletion-induced hydrogen peroxide generation and apoptosis in HL7702cells[J].ToxicolLett,2011,205(1):86-95.
[29] Kang B,Mackey MA,El-Sayed MA.Nuclear tar?geting of gold nanoparticles in cancer cells induces DNA damage,causing cytokinesis arrest and apoptosis[J].J Am Chem Soc,2010,132(5):1517-1519.
[30] Wang T,Long X,Liu Z,Cheng Y,Yan S.Effect of copper nanoparticles and copper sulphate on oxidation stress,cell apoptosis and immune re?sponses in the intestines of juvenile Epinephelus coioides[J].Fish Shellfish Immunol,2015,44 (2):674-682.
[31] Akhtar MJ,Ahamed M,Kumar S,Khan MM,Ahmad J,Alrokayan SA.Zinc oxide nanoparticles selectively induce apoptosis in human cancer cells through reactive oxygen species[J].Int J Nanomed,2012,7:845-857.
[32]Lin XL,Zhao SH,Zhang L,Hu GQ,Sun ZW,Yang WS.Dose-dependent cytotoxicity and oxida?tive stress induced by"naked"Fe3O4nanoparti?cles in human hepatocyte[J].Chem Res Chin Univ,2012,28(1):114-118.
[33] Wu J,Ding T,Sun J.Neurotoxic potential of iron oxide nanoparticles in the rat brain striatum and hippocampus[J].Neurotoxicology,2013,34:243-253.
[34]Thit A,Selck H,Bjerregaard HF.Toxic mecha?nisms of copper oxide nanoparticles in epithelial kidney cells[J].Toxicol In Vitro,2015,29(5):1053-1059.
[35] Alarifi S,Ali D,Verma A,Alakhtani S,Ali BA.Cy?totoxicityandgenotoxicityofcopperoxide nanoparticles in human skin keratinocytes cells [J].Int J Toxicol,2013,32(4):296-307.
[36] Ge G,Wu H,Xiong F,Zhang Y,Guo Z,Bian Z,et al.The cytotoxicity evaluation of magnetic iron oxide nanoparticles on human aortic endothelial cells[J].Nanoscale Res Lett,2013,8(1):215.
[37] Sun L,Li Y,Liu X,Jin M,Zhang L,Du Z,et al. Cytotoxicity and mitochondrial damage caused bysilica nanoparticles[J].Toxicol In Vitro,2011,25 (8):1619-1629.
[38] Yu C,Zhou Z,Wang J,Sun J,Liu W,Sun Y,et al.In depth analysis of apoptosis induced by silica coated manganese oxide nanoparticles in vitro [J].J Hazard Mater,2015,283:519-528.
[39]Niska K,Santos-Martinez MJ,Radomski MW,Inkielewicz-Stepniak I.CuO Nanoparticles induce apoptosis by impairing the antioxidant defense and detoxification systems in the mouse hippo?campal HT22 cell line:protective effect of croce?tin[J].Toxicol In Vitro,2015,29(4):663-671.
[40] Erriquez J,Bolis V,Morel S,F(xiàn)enoglio I,F(xiàn)ubini B,Quagliotto P,et al.Nanosized TiO2is internalized by dorsal root ganglion cells and causes damage via apoptosis[J].Nanomedicine,2015,11(6):1309-1319.
[41]Sadeghi L,Tanwir F,Yousefi Babadi V.In vitro toxicity of iron oxide nanoparticle:oxidative dam?ages on Hep G2 cells[J].Exp Toxicol Pathol,2015,67(2):197-203.
[42]Nalika N,Parvez S.Mitochondrial dysfunction in titanium dioxide nanoparticle-induced neurotoxicity [J].Toxicol Mech Methods,2015,25(5):355-363.
[43] Ahmad J,Alhadlaq HA,Siddiqui MA,Saquib Q,Al-Khedhairy AA,Musarrat J,et al.Concentra?tion-dependent induction of reactive oxygen spe?cies,cell cycle arrest and apoptosis in human liver cells after nickel nanoparticles exposure[J].Envi?ron Toxicol,2015,30(2):137-148.
[44] Lee YH,Cheng FY,Chiu HW,Tsai JC,F(xiàn)ang CY,Chen CW,et al.Cytotoxicity,oxidative stress,apoptosis and the autophagic effects of silver nanoparticles in mouse embryonic fibroblasts[J]. Biomaterials,2014,35(16):4706-4715.
[45] Yang X,Shao H,Liu W,Gu W,Shu X,Mo Y,et al.Endoplasmic reticulum stress and oxidative stress are involved in ZnO nanoparticle-induced hepatotoxicity[J].Toxicol Lett,2015,234(1):40-49.
[46] Zhang R,Piao MJ,Kim KC,Kim AD,Choi JY,Choi J,et al.Endoplasmic reticulum stress signal?ingisinvolvedinsilvernanoparticles-inducedapop?tosis[J].Int J Biochem Cell Biol,2012,44(1):224-232.
[47]Choi AO,Cho SJ,Desbarats J,Lovric′J,May?singer D.Quantum dot-induced cell death involves Fas upregulation and lipid peroxidation in human neuroblastoma cells[J].J Nanobiotechnol,2007, 5:1.
[48] Chattopadhyay S,Dash SK,Tripathy S,Das B,Mandal D,Pramanik P,et al.Toxicity of cobalt oxide nanoparticles to normal cells;an in vitro and in vivo study[J].Chem Biol Interact,2015,226:58-71.
[49] Austin LA,Ahmad S,Kang B,Rommel KR,Mah?moud M,Peek ME,et al.Cytotoxic effects of cy?toplasmic-targeted and nuclear-targeted gold and silver nanoparticles in HSC-3 cells-a mechanistic study[J].Toxicol In Vitro,2015,29(4):694-705.
[50] Hori YS,Kuno A,Hosoda R,Horio Y.Regulation of FOXOs and p53 by SIRT1 modulators under oxidative stress[J].PLoS One,2013,8(9):e73875.
[51] Duan WX,He MD,Mao L,Qian FH,Li YM,Pi HF,et al.NiO Nanoparticles induce apoptosis through repressing SIRT1 in human bronchial epi?thelial cells[J].Toxicol Appl Pharmacol,2015,286(2):80-91.
[52] Sheng L,Ze Y,Wang L,Yu X,Hong J,Zhao X,et al.Mechanisms of TiO2nanoparticle-induced neuronal apoptosis in rat primary cultured hippo?campal neurons[J].J Biomed Mater Res A,2015,103(3):1141-1149.
[53] Pan Y,Leifert A,Ruau D,Neuss S,Bornemann J,Schmid G,et al.Gold nanoparticles of diameter 1.4 nm trigger necrosis by oxidative stress and mi?tochondrial damage[J].Small,2009,5(18):2067-2076.
[54] Napierska D,Thomassen LC,Rabolli V,Lison D,Gonzalez L,Kirsch-Volders M,et al.Size-depen?dent cytotoxicity of monodisperse silica nanoparti?cles in human endothelial cells[J].Small,2009,5(7):846-853.
[55]Andreeva ER,Rudimov EG,Gornostaeva AN,Beklemyshev VI,Makhonin II,Maugeri UO,et al.In vitro study of interactions between siliconcontaining nanoparticles and human peripheral blood leukocytes[J].Bull Exp Biol Med,2013,155(3):396-398.
[56] Asare N,Instanes C,Sandberg WJ,Refsnes M,Schwarze P,Kruszewski M,et al.Cytotoxic and genotoxic effects of silver nanoparticles in testicu?lar cells[J].Toxicology,2012,291(1-3):65-72.
[57] Jin CY,Zhu BS,Wang XF,Lu QH.Cytotoxicity of titanium dioxide nanoparticles in mouse fibro?blast cells[J].Chem Res Toxicol,2008,21(9):1871-1877.
[58] Korynevska A,Heffeter P,Matselyukh B,Elbling L,Micksche M,Stoika R,et al.Mechanisms under?lying the anticancer activities of the angucycline landomycin E[J].Biochem Pharmacol,2007,74 (12):1713-1726.
(本文編輯:賀云霞)
Cell death induced by nanomaterials:research progress
JIA Jian,LI Yan-bo,GUO Cai-xia
(School of Public Health,Capital Medical University,Beijing 100069,China)
With the wide use of nanomaterials in biomedicine,materials,chemicals and other fields,their environmental exposure and cellular toxicity have come to the attention of researchers as a new research area in the field of nanotoxicology and nanomedicine.Researches on the toxic effects of nanomaterials have not only provided of a theoretical basis for safety evaluation of nanomaterials,but also promoted the have applications of nanotechnology.Numerous studies have revealed cell death is closely associated with the toxicity of nanomaterials.In this paper,we elaborated on the roles of three key cell death modes in nanotoxicity,including autophagy,apoptosis,and necrosis.Furthermore,the pos?sible mechanisms involved in these three modes were explored.All this will provide reference for safety evaluation of nanomaterials.
nanomaterial;cell death;apoptosis;autophagy;necrosis
The project supported by National Natural Science Foundation of China(81102095);National Natural Science Foundation of China(81202242);National Natural Science Foundation of China(81573176);Science and Technology Development Program of the Beijing Municipal Commission of Education(KM201510025005);and Project for Young Talents in Beijing Colleges and Universities(YETP1670)
GUO Cai-xia,E-mail:guocx@ccmu.edu.cn,Tel:(010)83911774
R994.6
A
1000-3002-(2016)04-0421-08
國家自然科學基金青年項目(81102095),國家自然科學基金青年項目(81202242),國家自然科學基金青年項目(81573176);北京市教育委員會科技發(fā)展計劃面上項目(KM201510025005);北京高等學校青年英才計劃項目(YETP1670)
賈 健,男,首都醫(yī)科大學2012級七年制臨床醫(yī)學學生。
郭彩霞,E-mail:guocx@ccmu.edu.cn,Tel:(010)83911774
2015-06-17接受日期:2016-02-23)