闕州
摘 要 多細(xì)胞紅藻的生活史復(fù)雜,其生殖發(fā)育是日照時(shí)間、光強(qiáng)、光質(zhì)、溫度、營(yíng)養(yǎng)鹽等多種環(huán)境因子綜合調(diào)控的結(jié)果。隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,陸生植物生殖發(fā)育的分子機(jī)理已有較為系統(tǒng)的研究。近些年的研究發(fā)現(xiàn),紅藻中也存在許多與陸生植物相同或相似的生殖發(fā)育調(diào)控因子,參照陸生植物的機(jī)理研究,這些調(diào)控因子為揭示紅藻生殖發(fā)育機(jī)理提供思路?;诖?,簡(jiǎn)要概述紅藻生殖發(fā)育機(jī)理。
關(guān)鍵詞 紅藻;生殖發(fā)育;分子機(jī)理
中圖分類號(hào):S968.43 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:B DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2016.29.035
1 紅藻生殖發(fā)育特點(diǎn)
紅藻擁有最復(fù)雜的生活史,如產(chǎn)膠藻江蘺屬具有三個(gè)世代,包括配子體世代、孢子體世代和果孢子體世代。紅藻既能進(jìn)行有性生殖又能進(jìn)行無性生殖,紅藻有性生殖通過精子和果胞結(jié)合完成。無性生殖是以多種無鞭毛的靜孢子進(jìn)行,有的產(chǎn)生單孢子,如紫菜;有的產(chǎn)生四分孢子,如多管藻。因此,紅藻的生殖行為包括配子和孢子的形成和釋放、配子的結(jié)合等。紅藻的有性生殖存在很大缺陷,因?yàn)榧t藻的雄配子(精子)和雌配子(果胞)都沒有運(yùn)動(dòng)能力,且精子釋放后只有幾個(gè)小時(shí)的存活時(shí)間。Gracilariagracilis精子只存活不到5h[1]。
紅藻生殖發(fā)育是多種環(huán)境因子綜合調(diào)控的結(jié)果,如光照(光強(qiáng)、光質(zhì)和光周期)、溫度、季節(jié)、營(yíng)養(yǎng)(無機(jī)和有機(jī))、生物因子(細(xì)菌、動(dòng)物)、滲透壓、pH、波浪及機(jī)械沖擊、污染和輻射等[2,3]。
2 模式物種選擇
在褐藻中,長(zhǎng)囊水云是褐藻生物的起源物種,由于它的特殊進(jìn)化地位而成為褐藻的發(fā)育模式生物[4]。高通量技術(shù)的應(yīng)用,發(fā)現(xiàn)了長(zhǎng)囊水云中生活史轉(zhuǎn)換和發(fā)育模式調(diào)控的關(guān)鍵基因,大大促進(jìn)了褐藻生殖發(fā)育分子機(jī)理的相關(guān)研究[4-8]。而在紅藻中,既沒有一個(gè)公認(rèn)的模式生物,也缺乏公認(rèn)的研究方法,因此紅藻生殖發(fā)育研究進(jìn)展緩慢。
條斑紫菜具有很高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值,有研究者建議將條斑紫菜作為紅藻模式生物[9]。全基因組測(cè)序發(fā)現(xiàn),條斑紫菜共有10327個(gè)基因,其中1%的基因與生殖發(fā)育相關(guān)[10]。然而這些預(yù)測(cè)結(jié)果是根據(jù)設(shè)定好的程序與已知的基因進(jìn)行相似性比對(duì)預(yù)測(cè)而得的,結(jié)果的可靠性存在很大的質(zhì)疑。
皺波角叉菜也有大量的基因注釋,共9606個(gè)基因被注釋,推動(dòng)真核生物基因組進(jìn)化研究,因此有研究者建議把皺波角叉菜作為紅藻模式生物[11,12]。且皺波角叉菜體內(nèi)存在隱花色素,隱花色素對(duì)植物生殖發(fā)育和激素合成都有重要的調(diào)控作用。但皺波角叉菜完整的生活史不易獲得,且無法獲得突變體,因此很難進(jìn)行后續(xù)的生殖發(fā)育相關(guān)研究。關(guān)于其調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中關(guān)鍵因子(植物色素、向光素和轉(zhuǎn)錄調(diào)控相關(guān)的蛋白)的研究也很少。因此,皺波角叉菜作為紅藻生殖發(fā)育的模式生物在很多方面存在爭(zhēng)議。
3 激素調(diào)控
光照是一切生物體的能量來源,植物通過光合作用固定碳并產(chǎn)生植物體內(nèi)所需營(yíng)養(yǎng)物,為植物的生殖發(fā)育提供物質(zhì)基礎(chǔ)[3]。植物除利用光能進(jìn)行光合作用合成能源物質(zhì)外,還可以通過光受體介導(dǎo)光形態(tài)建成,即光以信息的形式去激發(fā)植物光受體,光受體被光激活后或直接調(diào)節(jié)細(xì)胞膜的離子流動(dòng)等生理反應(yīng),或與下游的信號(hào)因子發(fā)生互作,推動(dòng)細(xì)胞內(nèi)一系列的信號(hào)反應(yīng)來調(diào)控下游基因的表達(dá),并最終匯集成組織和器官的建成。根據(jù)光受體感受光譜區(qū)域的不同,可將高等植物的光受體分為以下幾類:遠(yuǎn)紅光(700~750nm)和紅光(600~700nm)受體光敏素,UV-A/藍(lán)光(320~500nm)受體隱花素,LOV 藍(lán)光受體 ZTL/FKF1/LKP2、向光素和紫外光 UV-B 受體 UVR 8[13]。水生生物光受體的研究受到廣泛關(guān)注,因?yàn)樗泄獾膹?fù)雜特性,水生生物出現(xiàn)多種光受體,比如向光素、金色素(吸收藍(lán)光)、新色素(一種植物色
素嵌合體)、隱花色素、植物色素在海洋藻類中都有報(bào)道[14]。隨著研究的深入,海洋藻類向光素的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制可能與高等植物相同[15,16]。
研究表明,植物激素對(duì)紅藻生殖發(fā)育起到調(diào)控作用。蜈蚣藻在囊果的不同成熟時(shí)期其多胺(腐胺、亞精胺和精胺)含量不同。在蜈蚣藻和江蘺中,這些多胺,尤其是精胺,能促進(jìn)果胞的成熟和釋放[17,18]。同時(shí),研究表明乙烯能促進(jìn)翼枝菜四分孢子囊的成熟[19]。
4 基因調(diào)控
運(yùn)用轉(zhuǎn)錄組分析方法揭示了許多基因只在紅藻配子體或孢子體內(nèi)特異表達(dá)。在紫紅紫菜中,一個(gè)少見的轉(zhuǎn)錄延伸因子EF-1a只在孢子體表達(dá),而另一個(gè)基因EF在配子體和孢子體有同等的表達(dá)[20]。一個(gè)編碼鈉泵的基因PyKPA1在配子體和孢子體中表達(dá)量也不同,可能是由于性別特異的轉(zhuǎn)錄激活因子導(dǎo)致[21]。除紫紅紫菜外,其他紅藻中也有類似的研究。Gracilariopsisandersonii鑒定出果孢子體特異基因[22],龍須菜存在雌配子體特異基因GMF-01[23],果孢子體形成時(shí)一個(gè)泛素基因的表達(dá)量較多[24]。日本凋毛藻的基因GjFP-1或與雌配子體分化相關(guān)[24]。
此外,還有不少方法被運(yùn)用到探索紅藻生殖發(fā)育潛在基因的研究中。如在蜈蚣藻中發(fā)現(xiàn)了GiODC基因,GiODC基因編碼鳥氨酸脫羧酶,鳥氨酸脫羧酶使鳥氨酸脫羧化,產(chǎn)生脯氨酸,脯氨酸作為前體物合成精氨酸和亞精氨酸,這些多胺(脯胺,精胺和亞精胺)影響孢子成熟和釋放[17,18]。并通過染色體步移擴(kuò)增得到GiODC全基因序列,發(fā)現(xiàn)GiODC基因在可育和不可育藻體中表達(dá)量不同[25,26]。
5 結(jié)語
無論是高通量方法,還是單基因分析方法,這些潛在的生殖發(fā)育調(diào)控基因的發(fā)現(xiàn)都促進(jìn)了對(duì)紅藻生殖發(fā)育的了解。然而這些潛在基因都只是針對(duì)特異物種中存在,而沒有在大多數(shù)紅藻中證實(shí),使得人們對(duì)紅藻生殖發(fā)育調(diào)控基因的認(rèn)識(shí)有很大的局限性,因此,如何確定一個(gè)公認(rèn)的模式生物和統(tǒng)一的研究方法將是未來研究紅藻生殖發(fā)育分子機(jī)理的主要研究方向之一。
參考文獻(xiàn)
[1]Destombe C, Godin J, Remy JM. Viability and dissemination of spermatia of Gracilariaverrucosa(Gracilariales, Rhodophyta)[J].Hydrobiologia,1990,204(1):219-223.
[2]Bornette G, Puijalon S. Response of aquatic plants to abiotic factors:a review[J].Aquatic Sciences,2011,73(1):1-14.
[3]Agrawal SC. Factors controlling induction of reproduction in algae—review:the text[J].Folia microbiologica,2012,57(5):387-407.
[4]Peters AF, Marie D, Scornet D, et al. Proposal of Ectocarpussiliculosus(Ectocarpales, Phaeophyceae) as a model organism for brown algal genetics and genomics[J].Journal of Phycology, 2004,40(6):1079-1088.
[5]Cock JM, Sterck L, Rouzé P, et al. The Ectocarpusgenome and the independent evolution of multicellularity in brown algae[J].Nature,2010,465(7298):617-621.
[6]Coelho SM, Godfroy O, Arun A,et al. OUROBOROS is a master regulator of the gametophyte to sporophyte life cycle transition in the brown alga Ectocarpus[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2011,108(108):11518-11523.
[7]LeBailA, BilloudB, LePanseS,et al. ETOILE regulates developmental patterning in the filamentous brown alga Ectocarpussiliculosus[J].Plant Cell,2011,23(4):1666-1678.
[8]Arun A, Peters NT, Scornet D,et al. Non-cell autonomous regulation of life cycle transitions in the model brown alga Ectocarpus[J].New Phytologist,2013,197(2):503-510.
[9]SutherlandJE, Lindstrom SC, Nelson WA, et al. A new look at an ancient order: generic revision of the Bangiales (Rhodophyta)1[J].Journal of Phycology,2011,47(5):1131.
[10]Nakamura Y, Sasaki N, Kobayashi M, et al.The first symbiont-free genome sequence of marine red alga, Susabi-nori (Pyropiayezoensis)[J].Plos One,2013,8(3):e57122.
[11]Collén J, Cornish ML, Craigie J, et al.Chondrus crispus–A Present and Historical Model Organism for Red Seaweeds[M]// Advances in Botanical Research. Elsevier Science and Technology,2014:53-89.
[12]Collén J, Porcel B, Carré W, Ball SG, et al. Genome structure and metabolic features in the red seaweed Chondruscrispus shed light on evolution of the Archaeplastida[J].Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.,2013,110(13):5247-5252.
[13]Hohm T, Preuten T, Fankhause, CH. Phototropism: translating light into directional growth[J]. American Journal of Botany,2012,100(1):47-59.
[14]Kianianmomeni A, Hallmann A. Algal photoreceptors: in vivo functions and potential applications[J].Planta,2014,293(1):1-26.
[15]Onodera A, Kong SG, Doi M, et al. Phototropin from Chlamydomonasreinhardtii is functional inArabidopsis thaliana[J].Plant Cell Physiol,2005,46(2):367-374.
[16]Prochnik SE, Umen J, Nedelcu AM, et al. Genomic analysis of organismal complexity in the multicellular green alga Volvoxcarteri[J].Science,2010,329(5988):223-226.
[17]Guzmanurióstegui A, Robaina R, Freilepelegri Y, et al. Polyamines increase carpospore output and growth during in vitro cultivation of Hydropuntiacornea[J].BiotechnologyLetters,2012,34(4):755-761.
[18]SacramentoAT,García-JiménezP,RobainaRR. The polyaminespermineinducescystocarp development in seaweed Grateloupia (Rhodophyta)[J].Plant Growth Regulation,2007,53(3):147-154.
[19]García-Jiménez P, Robaina RR. Effects of ethylene on tetrasporogenesis in Pterocladiellacapillacea (Rhodophyta)1[J].Journal Phycology,2012,48(3):710-715.
[20]Liu QY, Baldauf SL, Reith ME. Elongation factor 1 alpha genes of the red alga Porphyrapurpurea include a novel, developmentally specialized variant[J].Plant Molecular Biology,1996,31:77-85.
[21]Uji T, Mizuta H, Saga N. Characterization of the sporophytepreferential gene promoter from the red alga Porphyrayezoensisusing transient gene expression[J].MarineBiotechnology,2013,15(2):188-196.
[22]Kamiya M, Kawai H, Moon D, et al. Isolation and characterization of phase-specific cDNAs from carposporophytes of Gracilariopsisandersonii(Gracilariales, Rhodophyta) [J].European Journal of Phycology,2011,46(1):27-35.
[23]Chen P, Shao H, Xu D. Cloning and characterization of a female gametophyte-specific gene inGracilarialemaneiformis(Gracilariales, Rhodophyte)[J].African Journal of Microbiology Research,2011,5(18):2590-2595.
[24]Ren X, Sui Z, Mao Y, et al. Cloning and characterization of two types of ubiquitin genes from Gracilariopsislemaneiformis (Gracilariales, Rhodophyta)[J].Journal of Applied Phycology,2009,21(3):273-278.
[25]Lee YK, Kim SH, Hong CB, et al. Heat-shock protein 90 may be involved in differentiation of the female gametophytes inGriffithsia japonica(Ceramiales, Rhodophyta) [J].Journal of Phycology,1998,34(6):1017-1023.
[26]Garcíajiménez P, Garcíamaroto F, Garrido-Cárdenas JA,et al. Differential expression of the ornithine decarboxylase gene during carposporogenesis in the thallus of the red seaweed Grateloupiaimbricata(Halymeniaceae) [J].Journal of Plant Physiology,2009,166(16):1745-1754.
(責(zé)任編輯:趙中正)