寧慶鵬,王常青*,方 甜,白云云,陳 彤(山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西 太原 030006)
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酶法制備花生粕醒酒多肽
寧慶鵬,王常青*,方 甜,白云云,陳 彤
(山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西 太原 030006)
摘 要:為更合理有效地利用花生粕資源,制備具有醒酒作用的花生粕多肽,本實(shí)驗(yàn)以Alcalase AF 2.4L蛋白酶酶法制備花生粕醒酒肽,經(jīng)分級(jí)分離后,通過(guò)體外和動(dòng)物實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證其醒酒效果。結(jié)果表明,花生粕醒酒肽制備最佳工藝條件為:酶解時(shí)間3 h、酶解溫度35 ℃、pH 9.5及料液比1∶30(m/V)。該條件下乙醇脫氫酶(alcohol dehydrogenase,ADH)激活率及多肽得率均較高。經(jīng)分級(jí)分離后,分子質(zhì)量在1 000~3 000 D的多肽對(duì)ADH激活作用最強(qiáng),激活率為30.47%。G25凝膠色譜分析表明,花生粕多肽中小于3 000 D的多肽占89.55%,ADH激活率為29.25%。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)證明,花生粕多肽對(duì)小鼠有顯著的防醉醒酒作用。小鼠血液乙醇含量測(cè)定結(jié)果表明,高劑量的花生粕多肽在60~90 min內(nèi)能顯著降低小鼠血液中的乙醇含量。
關(guān)鍵詞:花生粕;醒酒肽;蛋白酶;乙醇脫氫酶激活率
引文格式:
寧慶鵬, 王常青, 方甜, 等.酶法制備花生粕醒酒多肽[J].食品科學(xué), 2016, 37(13): 173-177.DOI:10.7506/spkx1002-6630-201613031. http://www.spkx.net.cn
NING Qingpeng, WANG Changqing, FANG Tian, et al.Preparation of polypeptides with sobering effect from peanut meal by enzymatic hydrolysis[J].Food Science, 2016, 37(13): 173-177.(in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/ spkx1002-6630-201613031. http://www.spkx.net.cn
花生粕是花生果經(jīng)浸出或壓榨提取油脂后的副產(chǎn)品[1-2],其中粗蛋白含量為50%~55%,粗脂肪含量為3%~5%,粗纖維含量為4%~7%,此外還含有豐富的黃酮類物和多種礦質(zhì)元素[3-4],可開(kāi)發(fā)利用價(jià)值較高。在花生粕中,總氨基酸占總蛋白含量的39.65% ,其中必需氨基酸占總蛋白含量的10.85%[5-6],是一種營(yíng)養(yǎng)價(jià)值較高的植物性蛋白資源。但目前我國(guó)各地的花生粕主要被用于飼料和肥料,尚未得到合理利用。隨著我國(guó)食品工業(yè)與綠色循環(huán)經(jīng)濟(jì)的發(fā)展要求,花生粕的開(kāi)發(fā)與利用受到人們?cè)絹?lái)越多的重視。近年來(lái)的研究表明,小分子的多肽極易被人體吸收,有些多肽還具有一定的生物活性,如以玉米為原料制備的醒酒多肽[7-9],以沙棘籽制備的抑菌多肽[10]等。目前已有關(guān)于花生粕抗氧化肽的研究報(bào)道[11-13],但未見(jiàn)到用花生蛋白或花生粕制備醒酒肽的研究報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)用花生粕為原料酶法制備醒酒多肽,研究了該醒酒肽的酶解工藝條件,并進(jìn)行醒酒肽的乙醇脫氫酶(alcohol dehydrogenase,ADH)激活率實(shí)驗(yàn)和小鼠醒酒實(shí)驗(yàn),以期為開(kāi)發(fā)花生粕的新型醒酒產(chǎn)品奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料與試劑
花生粕購(gòu)于青島長(zhǎng)壽食品有限公司,粗蛋白含量為55.42%。
Alcalase AF 2.4L蛋白酶(酶用量為10 U/mg pro)諾維信生物技術(shù)有限公司;ADH(300 U/mg)、氧化性輔酶Ⅰ 上海源聚生物科技有限公司;肌紅蛋白、胸腺肽、桿菌肽酶、還原性谷胱甘肽(均為分析純) 美國(guó)Sigma公司;其他試劑均為分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
UV-2600型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 尤尼柯(上海)儀器有限公司;Sephadex凝膠色譜系統(tǒng)、UVD-680-3紫外檢測(cè)儀 上海金達(dá)生物科技有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上海申升科技有限公司;數(shù)顯恒溫水浴提取器 國(guó)華電器有限公司;卷式超濾-納濾膜組件 北京安德膜分離技術(shù)工程有限公司;SC-3614低速離心機(jī) 安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 花生粕多肽的制備
花生粕粉末過(guò)100 目篩后,加入5 倍(m/V)的清水浸泡提取4 h,4 000 r/min離心棄上清液除水溶性蛋白,取沉淀再加2 倍(m/V)的清水,水洗3 次,然后將得到花生粕沉淀低溫烘干備用。取水洗干燥后的花生粕沉淀,按料液比為1∶25(m/V)加入清水,根據(jù)蛋白的含量加入Alcalase AF 2.4L(酶用量為5 000 U/g pro),在酶適宜的條件下酶解2 h。酶解結(jié)束后沸水浴使酶失活,冷卻至室溫后,調(diào)節(jié)pH值至中性,4 000 r/min離心10 min,取上清酶解多肽液濃縮備用[14-16]。
1.3.2 花生粕多肽得率的測(cè)定
根據(jù)GB 5009.5—2010《食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》[17]測(cè)定酶解后水溶性蛋白含量和總蛋白含量;根據(jù)QB/T 2879—2007《海洋魚(yú)低聚肽粉測(cè)定》[18]中三氯乙酸沉淀法測(cè)定酶解前蛋白含量。
1.3.3 ADH激活率的測(cè)定
采用瓦勒-霍赫法[19]測(cè)定花生粕多肽對(duì)ADH的激活作用。按下式計(jì)算ADH酶活力。
式中:A340 nm為340 nm波長(zhǎng)處每分鐘吸光度的增大值;Ew為每毫升酶液中含酶量/(mg/mL);6.2為還原型輔酶Ⅰ(NADH)的克分子吸光系數(shù);3.2為反應(yīng)液的總體積/mL。在規(guī)定條件下每分鐘還原l μmol NAD+時(shí)所需酶量定義為U。按下式計(jì)算ADH激活率。
式中:E樣品為樣品反應(yīng)液的酶活力/U;E空白為空白反應(yīng)液的酶活力/U。
1.3.4 酶解條件的單因素試驗(yàn)
以多肽得率和ADH激活率作為評(píng)價(jià)指標(biāo),分別進(jìn)行酶解時(shí)間(1、2、3、4、5 h)、酶解pH值(7.0、8.0、9.0、10.0、11.0)、酶解溫度(20、30、40、50、60 ℃)和料液比(1∶15、1∶20、1∶25、1∶30)的單因素試驗(yàn)。
1.3.5 酶解條件的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
為了得到高ADH激活率的花生粕多肽,以單因素試驗(yàn)為基礎(chǔ),選取適宜的酶解溫度、酶解時(shí)間、酶解pH值以及料液比進(jìn)行L9(34)正交試驗(yàn)。
1.3.6 花生粕多肽的超濾分級(jí)與分離
選用截留分子質(zhì)量為5 000、3 000、1 000 D的超濾膜,得到分子質(zhì)量為>5 000、3 000~5 000、1 000~3 000、<1 000 D的4 個(gè)組分。將所得的4 個(gè)組分多肽和原酶解液分別真空濃縮到相同總氮含量后,取樣進(jìn)行分子質(zhì)量分析和ADH激活率分析。
1.3.7 不同分子質(zhì)量花生粕多肽的分布
采用Sephadex G-25凝膠色譜分析,Marker為肌紅蛋白(17 000 D)、胸腺肽(3 108 D)、桿菌肽酶(1 486 D)和還原性谷胱甘肽(307 D),檢測(cè)波長(zhǎng)為220 nm。以Marker的分子質(zhì)量對(duì)數(shù)(lgMw)作為橫坐標(biāo),洗脫體積(Ve)作為縱坐標(biāo)繪制曲線,得到回歸方程:Ve=-64.718 lgMw+350.320。根據(jù)峰面積歸一法和方程計(jì)算不同分子質(zhì)量多肽的分布及含量[20-21]。
1.3.8 小鼠的防醉和醒酒翻正反射實(shí)驗(yàn)
1.3.8.1 防醉實(shí)驗(yàn)
參照文獻(xiàn)[22]將灌胃醉酒的小鼠仰臥至四肢朝上,保持姿勢(shì)30 s作為翻正反射消失的指標(biāo)。取40 只體質(zhì)量為(20±2)g雄性昆明小鼠,在(25±3) ℃、相對(duì)濕度(50±10)%的封閉環(huán)境中飼養(yǎng)1 周,實(shí)驗(yàn)前12 h禁食不禁水,隨機(jī)分為4 組:乙醇模型組,花生粕多肽低、中、高劑量組。市售解酒藥建議攝入量為20.2 mg/d,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物給藥量根據(jù)人體攝入量的5、10、20 倍,得到花生粕多肽低、中、高劑量為100、200、400 mg/(kg·d)(以體質(zhì)量計(jì),下同),乙醇模型組小鼠灌胃劑量為0.1 mL/10 g的生理鹽水,實(shí)驗(yàn)組小鼠灌胃0.1 mL/10 g劑量的花生粕多肽溶液,30 min后所有小鼠均灌胃相同劑量的酒精含量為56 mL/100 mL的白酒。記錄各組給酒后翻正反射消失時(shí)間和翻正反射恢復(fù)時(shí)間及小鼠醉酒只數(shù)。
為了驗(yàn)證方法的可行性,本文討論了3種不同的設(shè)計(jì)例子。第一個(gè)例子是在四邊形陣列天線內(nèi)沿正方形產(chǎn)生電場(chǎng)分布。為此,引入8個(gè)輔助偶極子組成的接收天線陣列,偶極子天線陣列沿著正方形電場(chǎng)均勻分布。相鄰偶極子天線之間的距離為80 mm(約0.67λ,λ是自由空間中的波長(zhǎng))。通過(guò)求解式(3),可以得到四邊形天線陣列最優(yōu)的激勵(lì)分布,如表1的第二列所示。圖6比較了電場(chǎng)分布模擬結(jié)果和測(cè)試結(jié)果,兩者吻合較好。
1.3.8.2 醒酒實(shí)驗(yàn)
方法與實(shí)驗(yàn)指標(biāo)與1.3.8.1節(jié)相同,區(qū)別在于小鼠先灌酒后灌胃樣液。
1.3.9 小鼠血液中乙醇含量的測(cè)定
取體質(zhì)量為(20±2) g雄性小鼠,隨機(jī)分為3 組:乙醇模型組和花生粕多肽低、高劑量組(100、400 mg/(kg·d)),每組25 只。各組先灌樣液,實(shí)驗(yàn)組灌胃0.1 mL/10 g樣液,乙醇模型組灌胃0.1 mL/10 g生理鹽水。30 min后,3 組均灌胃0.1 mL/10 g劑量的56 mL/100 mL的白酒,在灌胃30、60、90、120、150 min時(shí)眼眶取血,參照血液酒精含量的檢驗(yàn)方法GA/T 842—2009《血液酒精含量的檢驗(yàn)方法》[23]中頂空氣相色譜法測(cè)定血液中乙醇含量。
1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
單因素與正交試驗(yàn)重復(fù)3 次,除去異常值,取平均值作為結(jié)果。數(shù)據(jù)用SPSS 18.0軟件處理,正交試驗(yàn)結(jié)果采用方差分析,醒酒與防醉實(shí)驗(yàn)采用t檢驗(yàn)分析,結(jié)果用±s表示。
由圖1可知,隨酶解時(shí)間延長(zhǎng),多肽得率與ADH激活率在前3 h增長(zhǎng)迅速,3 h后增長(zhǎng)變緩,故選3 h為正交試驗(yàn)的基礎(chǔ)條件。酶解溫度為40 ℃時(shí),多肽得率與ADH激活率均達(dá)到最大值,所以選取40 ℃為正交試驗(yàn)的基礎(chǔ)條件。而多肽得率和ADH激活率在pH 7.0~8.0間迅速上升,pH 9.0~11.0間迅速下降,pH 9.0時(shí)多肽得率及ADH激活率均比其他條件時(shí)要高,因此選擇pH 9.0作為下一步正交試驗(yàn)的條件。而料液比在1∶25時(shí)酶解多肽得率和ADH激活率均較高,繼續(xù)增加料液比多肽得率和ADH激活率提高緩慢,故選取為正交試驗(yàn)的基礎(chǔ)條件。
2.2 酶解條件的正交試驗(yàn)結(jié)果
表 1 酶解條件的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 1 Orthogonal array designarrangement andcorrespondingexperimental results for the optimization of hydrolysis conditions試驗(yàn)號(hào) A酶解時(shí)間/h B酶解溫度/℃ C酶解pH D料液比(m/V) 多肽得率/% ADH激活率/% 1 1(2.5) 1(35) 1(8.5) 1(1∶20) 32.81 11.37 2 1 2(40) 2(9.0) 2(1∶25) 35.45 9.30 3 1 3(45) 3(9.5) 3(1∶30) 41.21 15.44 4 2(3.0) 1 2 3 47.67 17.51 5 2 2 3 1 33.65 7.27 6 2 3 1 2 48.77 13.35 7 3(3.5) 1 3 2 47.32 13.47 8 3 2 1 3 49.03 9.29 9 3 3 2 1 36.53 8.58 k112.04 14.12 11.34 9.41 k213.04 8.95 11.80 12.04 k310.45 12.46 12.39 14.08 R 2.59 5.17 1.05 4.67
正交試驗(yàn)的9 個(gè)試驗(yàn)條件的平均多肽得率為41.38%,ADH的平均激活率為11.73%。由表1可知,4 個(gè)因素對(duì)ADH激活率影響次序?yàn)椋築(酶解溫度)>D(料液比)>A(酶解時(shí)間)>C(酶解pH值)。正交試驗(yàn)以多肽的ADH激活率為主要指標(biāo)進(jìn)行分析,最終得到制備的最佳酶解工藝條件為A2B1C3D3,即酶解時(shí)間3 h、酶解溫度35 ℃、酶解pH 9.5及料液比1∶30。驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)表明,該條件下所制備的多肽的ADH激活率為18.25%,高于正交試驗(yàn)表中的各試驗(yàn)號(hào),此時(shí)多肽得率為40.05%也在較高水平。由方差分析可知(表2),酶解溫度和料液比對(duì)ADH激活率影響顯著,而酶解pH值和時(shí)間對(duì)ADH激活率影響不明顯(P>0.05)。
注:*.差異顯著(P<0.05)。
2.3 花生粕多肽分離及分子質(zhì)量分布分析
表 3 不同種類花生粕溶液的ADH激活率對(duì)比結(jié)果Table 3 Comparison of percentageADH activation by peanut meal protein,peanutmeal proteinhydrolysateanditsultrafiltration fraction <3000D樣品 花生粕蛋白未酶解液 未分級(jí)原酶解液 <3 000 D濾出液ADH激活率/% 2.36 20.41 29.25
表 4 各級(jí)花生粕多肽的分子質(zhì)量分布Table 4 Molecularweightdistributionof peanut meal peptides樣品 指標(biāo) >5 000 D 3 000~5 000 D 1 000~3 000 D<1 000 D分級(jí)分離液 ADH激活率/% 7.24 30.47 5.53未分級(jí)原酶解液 多肽分子質(zhì)量分布/% 35.27 8.80 42.41 13.52 <3 000 D濾出液 多肽分子質(zhì)量分布/% 6.79 3.66 60.12 29.43
由表3、4可知,花生粕蛋白未酶解液的ADH激活率為2.36%,可能是由于花生粕蛋白中含有部分游離氨基酸,而分子質(zhì)量大于5 000 D的多肽未表現(xiàn)出ADH激活作用,分子質(zhì)量在1 000~3 000 D的多肽對(duì)ADH的激活率最高為30.47%,分子質(zhì)量在3 000~5 000 D與小于1 000 D的多肽ADH激活率較小,分別為7.24%和5.53%。為了簡(jiǎn)化分離工藝,實(shí)驗(yàn)選取小于3 000 D的分離液進(jìn)行ADH激活率的測(cè)定和G25凝膠色譜分析。由圖2可知,該分離液中具有高A D H激活率的1 000~3 000 D的多肽純度從42.41%提高到了60.12%,ADH激活率也由原酶解液的20.41%上升到29.25%,省去了多級(jí)分離的繁瑣步驟,且激活率較高,為開(kāi)發(fā)與生產(chǎn)花生粕醒酒肽提供了依據(jù)。
2.4 小鼠翻正反射實(shí)驗(yàn)結(jié)果
2.4.1 防醉實(shí)驗(yàn)
注:**.與模型組相比差異極顯著(P<0.01);*.與模型組相比差異顯著(P<0.05)。表6同。
由表5可知,低劑量組對(duì)于延緩小鼠醉酒和縮短醉酒時(shí)間有一定作用,但作用不顯著(P>0.05)。中劑量組與高劑量組對(duì)于延緩醉酒及縮短醉酒時(shí)間,分別表現(xiàn)為顯著差異(P<0.05)和極顯著差異(P<0.01),說(shuō)明劑量與防醉之間有一定的依存關(guān)系,同時(shí)也顯示了該多肽具有防醉酒作用。
2.4.2 醒酒實(shí)驗(yàn)
表 6 醒酒實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table6 Sobering effect of peanutmeal peptides on drunken mice組別 小鼠只數(shù) 醉酒只數(shù) 解酒時(shí)間/min模型組 10 10 277.96±19.05花生粕多肽低劑量組 10 10 238.52±12.39花生粕多肽中劑量組 10 10 204.55±17.94**花生粕多肽高劑量組 10 10 190.46±20.39**
由表6可知,與模型組比較,低劑量組不具有顯著的醒酒作用。而中、高劑量組的醒酒作用均表現(xiàn)為極顯著性差異(P<0.01),說(shuō)明當(dāng)劑量達(dá)到200 mg/(kg·d)時(shí),該多肽具有良好的醒酒效果,繼續(xù)加大劑量并不能顯著提高醒酒效果。
2.5 小鼠血液中乙醇含量
如圖3所示,各組動(dòng)物在灌胃乙醇60 min后,血液中乙醇含量達(dá)到最大值,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),乙醇被機(jī)體代謝,使血液中的乙醇含量逐漸下降?;ㄉ啥嚯牡蛣┝拷M中血液乙醇含量下降趨勢(shì)與模型組相近,t檢驗(yàn)表明兩組間無(wú)顯著差異性(P>0.05)。而花生粕多肽高劑量組在灌胃后,乙醇含量始終明顯低于模型組,在30、120 min處血液中乙醇含量表現(xiàn)出顯著降低(P<0.05),在60、90 min時(shí),乙醇含量極顯著降低(P<0.01)。說(shuō)明高劑量花生粕多肽在酒后60~90 min的時(shí)間段內(nèi)醒酒效果最好。
有研究表明,具有ADH激活率作用的多肽能夠在肝臟中產(chǎn)生穩(wěn)定的輔酶(NAD+),提高ADH的活性,促進(jìn)三羧酸循環(huán),乙醇代謝為乙醛或乙酸,從而降低血液中乙醇的含量[24-25]。本研究采用Alcalase AF酶解花生粕蛋白制備出有ADH激活作用的醒酒肽,并確定了該多肽的最佳制備工藝條件為:酶解時(shí)間3 h、酶解溫度35 ℃、酶解pH 9.5及料液比1∶30;在此條件下制備的多肽得率為40.05%,ADH激活率為18.25%。由超濾分離分段得到分子質(zhì)量在3 000 D以下的多肽組分,比未分級(jí)的多肽原液ADH激活率顯著提高,到達(dá)了29.25%。凝膠色譜的分析表明,在3 000 D以下的超濾分離液中,1 000~3 000 D的多肽組分占60.12%,小于1 000 D的多肽占29.43%,其共占總質(zhì)量的89.55%。小鼠醒酒和防醉實(shí)驗(yàn)表明,該多肽在200 mg/(kg·d)的劑量下有良好的醒酒和防醉作用。在灌酒后的60~120 min的時(shí)間段內(nèi),對(duì)于降低血液中乙醇含量有顯著作用。
參考文獻(xiàn):
[1] 謝秋濤, 單楊, 李高陽(yáng).花生餅粕中活性成分的提取及其綜合利用[J].食品工業(yè)科技, 2012, 33(14): 417-420.
[2] REDDY N, CHEN L H, YANG Y Q.Thermoplastic films from peanut proteins extracted from peanut meal[J].Industrial Crops and Products,2013, 43: 159-164.DOI:10.1016/j.indcrop.2012.06.051.
[3] 孔濤, 米平, 趙雪淞, 等.堿法提取花生粕蛋白質(zhì)工藝條件的優(yōu)化[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013, 41(7): 277-279.DOI:10.3969/ j.issn.1002-1302.2013.07.102.
[4] KAIN R J, CHEN Z X, SONDA T S.Study on the effects of enzymatic hydrolysis on the physical, functional and chemical properties of peanut protein isolates extracted from defatted heat pressed peanut meal flour (Arachis hypogaea L.)[J].Pakistan Journal of Nutrition,2009, 8(6): 818-823.DOI:10.3923/pjn.2009.818.825.
[5] 李建軍, 蔡楨, 汪天明, 等.花生粕營(yíng)養(yǎng)成分分析[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012, 40(7): 3999-4000.DOI:10.3969/j.issn.0517-6611.2012.07.059.
[6] 梅娜, 周文明, 胡曉玉, 等.花生粕營(yíng)養(yǎng)成分分析[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2007, 16(3): 96-99.DOI:10.3969/j.issn.1004-1389.2007.03.025.
[7] 王曉杰, 鄭喜群, 劉曉蘭.預(yù)處理方法對(duì)玉米醒酒肽有效成分的影響[J].食品研究與開(kāi)發(fā), 2012, 33(16): 8-11.DOI:10.3969/ j.issn.1005-6521.2012.06.003.
[8] 郭輝, 何慧, 韓櫻.玉米肽對(duì)小鼠酒后肝臟乙醇脫氫酶活力的影響及醒酒機(jī)理[J].食品科學(xué), 2011, 32(11): 265-269.
[9] 吳暉, 王蓓蓓, 李麗麗, 等.玉米粗肽的可控酶法制備及其體外醒酒活性的研究[J].食品與發(fā)酵工業(yè), 2009, 35(9): 88-92.
[10] 陳彤, 王長(zhǎng)青, 連偉帥, 等.沙棘籽渣酶解產(chǎn)物的體內(nèi)外抑菌作用[J].食品科學(xué), 2015, 36(11): 91-94.DOI:10.7506/spkx1002-6630-201511018.
[11] LIU J, CHEN L W, JI K M.An endurance-enhancing effect of peanut meal protein hydrolysate in mice: possible involvement of a specific peanut peptide[J].Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition,2014, 98(5): 830-837.DOI:10.1111/jpn.12140.
[12] XIAO C Q, ZHENG L, SU G W.Effect of solution pH and activated carbon dosage on the decolourization ability, nitrogen components and antioxidant activity of peanut meal hydrolysate[J].International Journal of Food Science & Technology, 2014, 49(12): 2571-2577.DOI:10.1111/ijfs.12587.
[13] 柳杰.花生粕抗氧化肽的研究[D].無(wú)錫: 江南大學(xué), 2010: 1-3.
[14] 王連翠.酶法制備芝麻粕多肽的工藝研究[J].食品科學(xué), 2009,30(20): 220-222.
[15] 張洪微, 魏文毅, 唐彥君, 等.酶法制備綠豆多肽的研究[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào), 2007, 19(1): 69-74.DOI:10.3969/ j.issn.1002-2090.2007.01.018.
[16] 朱玉端, 李小強(qiáng), 董懷燦, 等.雙酶法酶解制備懷山藥多肽的研究[J].食品工業(yè), 2012, 33(9): 80-82.
[17] 中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì).GB 5009.5—2010中華人民共和國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定[S].北京: 中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社, 2010.
[18] 訾艷, 王常青, 陳曉萌, 等.具有α-淀粉酶抑制活性的白蕓豆多肽的制備及其熱穩(wěn)定性研究[J].食品科學(xué), 2015, 36(13): 190-195.DOI:10.7506/spkx1002-6630-201513035.
[19] SULTATOS L G, PASTINO G M, ROSENFELD C A, et al.Incorporation of the genetic control of alcohol dehydrogenase into a physiologically based pharmacokinetic model for ethanol in humans[J].Toxicological Sciences, 2004, 78(1): 20-31.DOI:10.1093/ toxsci/kfh057.
[20] 連偉帥, 王常青, 于書(shū)佳, 等.沙棘籽酶解多肽的抗氧化性能研究[J].食品工業(yè)科技, 2013, 34(22): 128-131.
[21] 李小凡, 王常青, 訾艷, 等.香菇柄中水溶性蛋白的提取及組成分析[J].食品工業(yè)科技, 2015, 36(9): 342-346.
[22] 谷峰, 汪德清, 鄧心新, 等.枳葛片對(duì)急性酒精中毒小鼠翻正反射及血液中各項(xiàng)生物化學(xué)參數(shù)的影響[J].中國(guó)臨床康復(fù), 2005, 9(11): 134-136.DOI:10.3321/j.issn:1673-8225.2005.11.075.
[23] 中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì).GA/T 842—2009血液酒精含量的檢驗(yàn)方法[S].北京: 中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社, 2009.
[24] 呂杰, 何慧, 范允卿, 等.酶膜耦合連續(xù)法制備玉米肽解酒及防醉研究[J].食品科學(xué), 2012, 33(17): 241-244.
[25] 張湲婷, 嚴(yán)嵬, 袁明, 等.帕珠丸對(duì)急性酒精性肝損傷小鼠解酒保肝作用研究[J].青海醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào), 2014, 35(4): 255-259.DOI:10.13452/ j.cnki.jqmc.2014.04.009.
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201613031
中圖分類號(hào):TS255.6
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1002-6630(2016)13-0173-05
收稿日期:2015-09-10
作者簡(jiǎn)介:寧慶鵬(1990—),男,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称飞锛夹g(shù)與功能食品開(kāi)發(fā)。E-mail:2427988759@qq.com
*通信作者:王常青(1956—),男,教授,學(xué)士,研究方向?yàn)槭称飞锛夹g(shù)與功能食品開(kāi)發(fā)。E-mail:wcq@sxu.edu.cn
Preparation of Polypeptides with Sobering Effect from Peanut Meal by Enzymatic Hydrolysis
NING Qingpeng, WANG Changqing*, FANG Tian, BAI Yunyun, CHEN Tong
(College of Life Science, Shanxi University, Taiyuan 030006, China)
Abstract:For more reasonable and effective utilization of peanut meal resources, we investigated the preparation of polypeptides with sobering effect by enzymatic hydrolysis of peanut meal with Alcalase AF 2.4L.Polypeptide fractions were separated and their sobering effect was evaluated in vitro and in animals.The results showed that the optimal hydrolysis conditions for preparing polypeptides with sobering effect were determined to be 3 h hydrolysis at 35 ℃ and pH 9.5 with a solid-to-solvent ratio of 1:30 (m/V).Under these conditions, the percentage activation of alcohol dehydrogenase (ADH) and peptide yield were significantly improved.The fraction with molecular weight in the range of 1 000-3 000 D had the highest activating effect on ADH, with a percentage activation of 30.47%.G25 gel permeation chromatographic analysis showed that the yield of peanut meal peptides with molecular weight less than 3 000 D was 89.55%, giving a percentage activation of ADH of 29.25%.Animal experiments proved that the peanut meal polypeptides could significantly prevent alcoholism and sober up drunken mice.They at high dosages could significantly reduce blood alcohol content in mice in 60-90 min.
Key words:peanut meal; peptide with sobering effect; protease; percentage activation of alcohol dehydrogenase