謝慧琳+周新華+林粵順+周紅軍+鐘洛誠(chéng)+胡文斌
摘要:采用3-氨丙基三乙氧基硅烷(KH550)對(duì)MCM-41進(jìn)行改性得到了氨基化介孔硅,并以浸漬法制備了毒死蜱/介孔硅緩釋體系。利用紅外光譜、氮?dú)馕?脫附和X射線衍射對(duì)MCM-41和氨基化介孔硅進(jìn)行了表征,著重探討了不同KH550用量對(duì)介孔硅的載藥量和載藥體系緩釋性能的影響。研究表明,氨基化介孔硅的比表面積、孔容隨KH550用量的增大而減小,且明顯小于未改性的MCM-41。氨基化介孔硅的載藥量低于MCM-41的載藥量,但其相應(yīng)載藥體系的緩釋性能優(yōu)于未改性的MCM-41載藥體系。毒死蜱/介孔硅緩釋體系,其釋藥行為可用Korsmeryer-Pappas 動(dòng)力學(xué)方程描述,其釋放受擴(kuò)散機(jī)制控制。
關(guān)鍵詞:MCM-41;氨基化改性;毒死蜱;緩釋;介孔硅;表征
中圖分類號(hào): TQ450.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2016)09-0163-03
有序介孔硅材料因具有規(guī)則孔道、高比表面積、良好的生物相容性等特點(diǎn),已被廣泛應(yīng)用于生物學(xué)和藥學(xué)等領(lǐng)域[1-3]。在孔道內(nèi)引入有機(jī)官能團(tuán),如氨基、巰基,可以有效改善孔道界面的疏水性,提高其水熱穩(wěn)定性,且又可以對(duì)其孔道進(jìn)行修飾并調(diào)控,增強(qiáng)其表面與藥物的相互作用,使介孔硅在藥物緩釋方面發(fā)揮了重要作用,受到了廣泛的關(guān)注。Zeng等以MCM-41分子篩為載體,制備了氨基功能化介孔硅,并用于阿司匹林的控制釋放,結(jié)果發(fā)現(xiàn),氨基修飾后的MCM-41對(duì)藥物具有明顯的緩釋性能[4]。Sevimli等用3-氨丙基三乙氧基硅烷嫁接改性介孔硅為材料,以阿莫西林為模型藥物,探究了其孔徑和表面功能化對(duì)藥物吸附和緩釋的影響[5]。在農(nóng)藥領(lǐng)域,介孔硅的應(yīng)用也日益受到重視,但相對(duì)于醫(yī)藥領(lǐng)域,介孔硅的研究還比較欠缺。彭林等采用有機(jī)疏水改性的MCM-41對(duì)甲草胺的吸附和緩釋行為進(jìn)行了研究,發(fā)現(xiàn)有機(jī)改性能延緩甲草胺的釋放[6]。
本研究先制備了MCM-41,然后以KH550對(duì)其進(jìn)行修飾改性,得到氨基化介孔硅,以浸漬法制備毒死蜱/介孔硅緩釋體系,著重探究了KH550對(duì)氨基化介孔硅的載藥量和緩釋性能的影響,揭示了介孔硅結(jié)構(gòu)及其對(duì)農(nóng)藥的吸附和緩釋的影響,以期為介孔硅材料在農(nóng)藥緩釋方面的應(yīng)用提供理論指導(dǎo)。
1 材料與方法
1.1 材料與試劑
無水乙醇和氨水(分析純,天津市大茂化學(xué)試劑廠)、十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)、正硅酸乙酯(TEOS)與3-氨丙基三乙氧基硅烷(KH550)(分析純,阿拉丁試劑有限公司)、鹽酸及甲苯(分析純,廣州化學(xué)試劑廠)、毒死蜱原藥(純度≥98%,江蘇景宏化工有限公司)。
1.2 儀器與設(shè)備
Spectrum100型傅立葉紅外光譜儀(美國(guó)珀金埃爾默公司)、D8 Advance型X射線衍射儀(德國(guó)布魯克儀器公司)、T6新世紀(jì)紫外可見分光光度計(jì)(北京普析通用儀器有限公司)、Quadrasorb SI型氮?dú)馕?脫附儀(美國(guó)康塔儀器公司)。
1.3 方法
1.3.1 MCM-41的合成 稱取1.0 g CTAB置于裝有100 mL 蒸餾水和70 mL濃氨水的三口燒瓶中,在60 ℃恒溫油浴中攪拌至CTAB完全溶解;1 h后加入5 g TEOS,連續(xù)攪拌7 h;停止攪拌,置于室溫中晶化、過濾、烘干;干燥后的粉末放在裝有150 mL酸化乙醇(體積比鹽酸 ∶乙醇=1 ∶20)的索氏提取器中于120 ℃下回流72 h,最后在60 ℃鼓風(fēng)干燥箱中烘干至恒重,得到MCM-41,備用。
1.3.2 氨基改性MCM-41 稱取1 g MCM-41,置于裝有50 mL甲苯的三口燒瓶中,邊攪拌邊滴加0.5 g KH550。在氮?dú)獗Wo(hù)的條件下,加熱回流、攪拌、反應(yīng)24 h,待體系冷卻至室溫后,過濾、洗滌、干燥,可制得氨基化介孔硅,記為NH2-MCM-41。重復(fù)上述試驗(yàn),KH550的添加量改為MCM-41/KH550=1 ∶1和1 ∶2,其余操作不變,分別制得NH2-MCM-41-1和NH2-MCM-41-2。
1.4 結(jié)構(gòu)表征
1.4.1 傅里葉紅外(FTIR)分析 利用紅外光譜表征MCM-41和氨基化介孔硅的結(jié)構(gòu),采用溴化鉀壓片法制樣。
1.4.2 氮?dú)馕?脫附測(cè)試 將樣品置于200 ℃下預(yù)先脫氣12 h,并在-196 ℃測(cè)試其氮?dú)馕?脫附等溫線,分別采用BET法和BJH法(脫附分支)分別計(jì)算各物理結(jié)構(gòu)參數(shù)。
1.4.3 X射線衍射測(cè)試 采用銅靶K α射線,工作電壓40 kV,管電流20 mA,小角掃描范圍2q=0.5°~10°,掃描速度2°/min。
1.4.4 載藥性能測(cè)試 用紫外分光光度計(jì)測(cè)定介孔硅的載藥量,在波長(zhǎng)λ=290 nm的條件下檢測(cè),對(duì)不同濃度的毒死蜱/乙醇溶液濃度(C)和吸光度(D)進(jìn)行線性擬合,得到標(biāo)準(zhǔn)工作曲線方程:C=63.291D-0.917,r=0.999 7。
稱取一定量(a,mg)的介孔硅置于50 mL錐形瓶中,加入一定體積(b,mL)的濃度為4 mg/mL的毒死蜱/乙醇溶液,保持m(介孔硅) ∶m(毒死蜱)=1 ∶2,并將錐形瓶移至37 ℃的恒溫水浴振蕩器中振蕩吸附24 h;最后,移取0.2 mL錐形瓶的上層清液并將其稀釋一定倍數(shù),用紫外分光光度計(jì)掃描并測(cè)定其吸光度。根據(jù)下式計(jì)算其載藥量LC:
1.4.5 緩釋性能測(cè)試 將裝有一定量(m,mg)載藥介孔硅的透析袋放于錐形瓶中,加入50 mL 40%乙醇水溶液,將錐形瓶置于不同溫度的恒溫振蕩水浴中,間隔一定時(shí)間移取1 mL樣品液,并向錐形瓶補(bǔ)加1 mL原緩釋溶液;將1 mL樣品液稀釋至25 mL,用紫外分光光度計(jì)測(cè)量其吸光度,毒死蜱隨時(shí)間的累積釋放量為Ui,繪制t-Ri曲線作為毒死蜱的緩釋動(dòng)力學(xué)曲線。累積釋放量Ui由下式計(jì)算。
2 結(jié)果與討論
2.1 FTIR分析
圖1為MCM-41和氨基化介孔硅的FTIR圖。MCM-41在3 435 cm-1處是Si—OH和H2O的伸縮振動(dòng)峰,在1 629 cm-1 處為吸附水分子的特征吸收峰,而在1 057、799、458 cm-1為Si-O-Si的伸縮振動(dòng)峰和彎曲振動(dòng)峰,說明了MCM-41具有二氧化硅的結(jié)構(gòu)。NH2-MCM-41-2、NH2-MCM-41和NH2-MCM-41-1的譜線均在2 930 cm-1 處出現(xiàn)了-CH2-的反對(duì)稱伸縮振動(dòng)峰,在696、1 496 cm-1處分別出現(xiàn)了N-H鍵的彎曲振動(dòng)峰和-NH3+ 的對(duì)稱振動(dòng)峰,這表明KH550已經(jīng)成功嫁接在MCM-41上[7]。
2.2 XRD表征
圖2為MCM-41和氨基化介孔硅的小角XRD圖譜。圖中MCM-41在2θ為2.18°、3.81°和4.39°處出現(xiàn)(100)、(110)和(200)的晶面,表明其屬于典型的六方相介孔MCM-41。將KH550嫁接到MCM-41后,MCM-41在2.18°處的衍射峰強(qiáng)度顯著下降,且隨著KH550用量的增加,其衍射峰強(qiáng)度逐漸減弱。此外,3.81°和4.39°處的衍射峰幾乎消失,說明了KH550已嫁接于MCM-41,且在一定程度上降低了MCM-41的有序度。
2.3 氮?dú)馕?脫附分析
圖3為MCM-41和氨基化介孔硅的N2吸附-脫附等溫線以及相應(yīng)的孔徑分布圖,由此得到的相關(guān)參數(shù)列于表1。由圖3-A可見,4種介孔硅的等溫線都屬于Langmuir Ⅳ型,且具有H1型滯后環(huán),說明了MCM-41和氨基化介孔硅均屬于介孔材料。MCM-41的等溫線相對(duì)壓力在0.3~0.5的中壓區(qū),它對(duì)氮?dú)獾奈搅考眲≡黾?,這是由于MCM-41的孔道內(nèi)出現(xiàn)毛細(xì)管凝聚現(xiàn)象而產(chǎn)生的。由表1可知,經(jīng)過KH550嫁接修飾后的MCM-41,其比表面積和孔容都明顯下降,且隨著KH550用量的增加,氨基化介孔硅的比表面積、孔徑和孔容都逐步下降,這是因?yàn)榘北紦?jù)了MCM-41的六方孔道而引起的[8]。
2.4 載藥性能分析
圖4為MCM-41和氨基化介孔硅對(duì)毒死蜱的載藥量。由圖4可知,MCM-41的載藥量最高(13.64%),這是由于MCM-41具有有序的孔道結(jié)構(gòu)、較大的比表面積和孔容,藥物較易進(jìn)入孔道。經(jīng)過氨基修飾后的介孔硅,孔道內(nèi)外接枝了氨基骨架,對(duì)藥物吸附有一定的阻礙作用[9],所以吸附量相對(duì)MCM-41有所下降,NH2-MCM-41的載藥量為6.86%。結(jié)合表1可以發(fā)現(xiàn),隨著KH550用量的增加,氨基化介孔硅的比表面積和孔容積降低了,但其對(duì)藥物的吸附量呈增加的趨勢(shì),這是因?yàn)橐环矫娑舅莉缡鞘杷运幬?,?jīng)過氨基改性后得到的氨基化介孔硅,其疏水性增強(qiáng);另一方面是由于毒死蜱與氨基介孔硅之間可能存在氫鍵作用,有利于對(duì)藥物的吸附[10]。這也說明了介孔硅對(duì)藥物的吸附不僅取決于其比表面積、孔徑和孔容,還受到農(nóng)藥與載體間作用的影響。
2.5 緩釋性能分析
圖5為介孔硅和氨基化介孔硅負(fù)載毒死蜱后的藥物累積釋放量與時(shí)間關(guān)系圖。從圖5可以看出,隨著時(shí)間的增加,藥物的累積釋放率先增加后趨于穩(wěn)定,其緩釋效果為:MCM-41 為深入了解載藥介孔硅的釋放行為,對(duì)介孔硅及不同氨基化介孔硅的藥物釋放數(shù)據(jù),分別進(jìn)行零級(jí)、一級(jí)、Higuchi和Korsmeryer-Pappas動(dòng)力學(xué)模型擬合,結(jié)果如表2所示。由表2可知,載藥介孔硅的釋放曲線比較符合Korsmeryer-Pappas動(dòng)力學(xué)模型,MCM-41、NH2-MCM-41、NH2-MCM-41-1和NH2-MCM-41-2的釋放指數(shù)分別為0.360 7、0.328 4、0.372 4和0.330 0,即n<0.45,表明了毒死蜱在介孔硅中的釋放主要受擴(kuò)散機(jī)制控制[12]。 3 結(jié)論 本研究采用后嫁接法利用KH550對(duì)MCM-41進(jìn)行氨基修飾,制備了氨基化介孔硅。氨基改性后介孔硅對(duì)毒死蜱的載藥量降低,但隨著KH550用量的增加,氨基介孔硅對(duì)毒死蜱的載藥量增大。氨基改性有利于提高毒死蜱/MCM-41的緩釋性能,且KH550用量越大,其緩釋效果越好;載藥介孔硅的藥物釋放曲線符合Korsmeryer-Pappas動(dòng)力學(xué)模型,其藥物釋放主要受擴(kuò)散機(jī)制控制。 參考文獻(xiàn): [1] Vallet-Regí M.Ordered mesoporous materials in the context of drug delivery dystems and bone tissue engineering[J]. ChemistryEuropean Journal,2006,12(23):5934-5943. [2]Hussain H I,Yi Z F,Rookes J E,et al.Mesoporous silica nanoparticles as a biomolecule delivery vehicle in plants[J]. Journal ofNanoparticle Research,2013,15:1-15. [3]Mal N K,F(xiàn)ujiwara M,Tanaka Y.Photocontrolled reversible release of guest molecules from coumarin-modified mesoporous silica[J].Nature,2003,421(6921):350-353.
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