于曉明,王霞
(吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院,吉林吉林132101)
組織培養(yǎng)誘發(fā)玉米自交系H99、A188和黃早四的變異研究
于曉明,王霞
(吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院,吉林吉林132101)
本實(shí)驗(yàn)利用AFLP技術(shù)對(duì)這三個(gè)玉米自交系的愈傷組織和再生苗進(jìn)行遺傳變異分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn),H99的再生率最低,并且具有最多的遺傳變異;而A188和黃早四的愈傷組織再生率都很高,而且愈傷組織和再生苗的變異較少。說明玉米愈傷組織在組織培養(yǎng)過程中的基因組穩(wěn)定性是與愈傷組織分化再生過程密切相關(guān)。
玉米;組織培養(yǎng);遺傳變異;AFLP
組織培養(yǎng)誘發(fā)的植物體細(xì)胞變異(也稱植物體細(xì)胞克隆變異),一般是指在植物細(xì)胞、組織或器官的離體培養(yǎng)狀態(tài)下發(fā)生的遺傳變異或表觀遺傳變異[1],這些變異可以通過細(xì)胞分裂和植物再生而傳遞給后代。植物體細(xì)胞克隆變異的產(chǎn)生沒有種屬特異性,出現(xiàn)的頻率一般比較高,一個(gè)組織培養(yǎng)周期內(nèi)可產(chǎn)生1%~3%的無性系變異,有時(shí)甚至能高達(dá) 90%以上[2]。植物通過體細(xì)胞克隆變異,可產(chǎn)生一系列有益的新性狀,對(duì)植物品種改良和新品種選育具有重要的意義[3]。然而體細(xì)胞胚或通過不定芽繁殖的植株經(jīng)常出現(xiàn)高頻率的體細(xì)胞克隆變異現(xiàn)象[4,5],又使其成為微繁和遺傳轉(zhuǎn)化工作中需要克服的重大難題。本試驗(yàn)通過AFLP分子標(biāo)記技術(shù)對(duì)玉米玉米自交系H99、A188和黃早四在組織培養(yǎng)過程中發(fā)生的 DNA序列變異的頻率和狀態(tài)進(jìn)行分析,探討分析玉米體細(xì)胞克隆遺傳變異的發(fā)生規(guī)律。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
玉米自交系黃早四H99、A188和黃早四的種子苗、愈傷組織和再生苗。
1.2 組織培養(yǎng)和再生
各玉米自交系在授粉后12天,取幼胚,誘導(dǎo)愈傷組織。誘導(dǎo)培養(yǎng)基:N6基本培養(yǎng)基+2.8克/升脯氨酸 +1毫克 /升2,4-D+100毫克/升 水解酪蛋白+10毫克/升 硝酸銀 +2%蔗糖+0.7%瓊脂(pH5.8),于25±1℃條件下,暗培養(yǎng)4周。繼代培養(yǎng)基:誘導(dǎo)培養(yǎng)基中添加2毫克/升 2,4-D,暗培養(yǎng)4周。分化培養(yǎng)基:N6基本培養(yǎng)基+1毫克/升 NAA+6%蔗糖+0.7%瓊脂(pH5.8),25±1℃、80umol·m-2·s-1光照強(qiáng)度、光照時(shí)間為14小時(shí)/天的條件下誘導(dǎo)再生苗。待再生苗長至 2~3厘米高時(shí)取材。
1.3 DNA提取
分別采集種子苗、愈傷組織和再生苗的葉片,用改良的CTAB法[6]提取上述植物材料的基因組DNA。
1.4 AFLP分子標(biāo)記分析
AFLP分子標(biāo)記技術(shù)主要包括以下幾個(gè)環(huán)節(jié):酶切連接、預(yù)擴(kuò)增、選擇性擴(kuò)增、變性聚丙烯酰胺凝膠電泳、銀染檢測[7]。使用的限制性內(nèi)切酶為MseI和EcoRI。
圖1 三個(gè)玉米自交系組織培養(yǎng)誘導(dǎo)的遺傳變異頻率
2.1 愈傷組織的誘導(dǎo)和植株再生
玉米幼胚接種到愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上以后,2天后幼胚開始膨脹,6天后就可見到開始生成愈傷組織,以后半個(gè)月內(nèi)都可陸續(xù)見到愈傷組織的產(chǎn)生,黃早四的出愈率最低(42%),A188的最高(80%)(見表1)。雖然H99表現(xiàn)出了較好出愈率但是再生率很低,僅為 22.9%。
2.2 AFLP分子標(biāo)記檢測的遺傳變異
本實(shí)驗(yàn)以20對(duì)引物分別對(duì)各基因型玉米的種子苗、愈傷組織(愈傷)和隨機(jī)選取的4株再生苗(R1-R4)DNA樣品進(jìn)行了 AFLP分析。結(jié)果表明 A188、H99、黃早四分別產(chǎn)生826,790,904條帶,呈多態(tài)性的帶的條數(shù)分別為 30,62,38(表2)。
以種子苗作為對(duì)照,供體來源相同的愈傷組織或再生植株,表現(xiàn)變異的遺傳位點(diǎn)在各個(gè)材料中表現(xiàn)并不一致(圖 1):其中A188在愈傷組織和再生苗中變異的頻率比較接近(1.5%~2.7%);而 H99的愈傷組織檢測到了較多的變異(6.2%),4株再生苗的變異相對(duì)下降(4.0%~4.5%);黃早四來源的愈傷組織發(fā)生變異比較少(2.5%),而在其再生苗中的檢測到的變異更少(0.8%~1.5%)。另外,在 A188的愈傷組織和再生苗中檢測到的變異中,以條帶新增的變異為主,而 H99和黃早四的愈傷組織和再生苗的變異條帶沒有表現(xiàn)出這樣的傾向。
在組織培養(yǎng)過程中,為排除由于激素濃度或外部條件的不同或是離體培養(yǎng)時(shí)間不同而造成的遺傳變異頻率的不同,本實(shí)驗(yàn)對(duì)各個(gè)材料均采用一致的誘導(dǎo)、繼代、分化培養(yǎng)基和一致的培養(yǎng)條件,并且選擇相同培養(yǎng)時(shí)間的愈傷組織和再生苗。結(jié)果表明,玉米愈傷組織在組織培養(yǎng)過程中的基因組穩(wěn)定性是與愈傷組織分化再生過程密切相關(guān)的,而且不同基因型玉米由組織培養(yǎng)誘導(dǎo)的遺傳變異頻率有較大差異。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果對(duì)于理解不同基因型玉米在組織培養(yǎng)并誘導(dǎo)再生過程中表現(xiàn)出來的巨大差異有很大幫助。
[1]Larkin P J,Scowcroft W R.Somaclonal variation-a novel source of variability from cell cultures for plant improvement [J].Theo Appl Genet,1981,60:443-455.
[2]Smith M K,Drew R A.Current applications of tissue culture in plant propagation and improvement[J].Austral.J.Plant Physiol,1990,17:267-289.
[3]Bouman H,De Klerk GJ.Somaclonal variation.In:Geneve RL,Preece SE and Merkle SA (eds)Biotechnology of ornamental plants[M].CAB Int,Wallingford,UK,1997,165-189.
[4]肖輝海,陳良碧.植物體細(xì)胞無性系變異育種[J],湖南文理學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2003,15(04):40-46.
[5]刁現(xiàn)民,孫敬三.植物體細(xì)胞無性系變異的細(xì)胞學(xué)和分子生物學(xué)的發(fā)展.植物學(xué)通報(bào)[J],1999,16(04):372~377.
[6]Moller E.,et al.,A simple and efficient protocol for isolation of high molecular weight DNA from filamentous fungi, fruit bodies,and infected plant tissues.Nucleic Acids Research, 1992.20(22):p.6115.
[7]羅洋.肥料和密度對(duì)玉米生長發(fā)育及DNA甲基化的影響[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
表1 三個(gè)玉米自交系組織培養(yǎng)效率的分析
表2 各基因型玉米組織培養(yǎng)誘導(dǎo)的AFLP多態(tài)性統(tǒng)計(jì)
吉林省教育廳科學(xué)技術(shù)研究項(xiàng)目(吉教科合字〔2012〕第475號(hào))
S513.03;S336
A
10.14025/j.cnki.jlny.2016.23.051
于曉明,吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院,講師,研究方向:遺傳學(xué)與基因工程。