孟想想，閆佳萍，劉曉夢(mèng)，廖詠玲，常 杰，許 鋒

(1.長(zhǎng)江大學(xué) 園藝園林學(xué)院，湖北 荊州 434025；2.靶向抗腫瘤藥物湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心，湖北 荊門 448000；3.荊楚理工學(xué)院 化工與藥學(xué)院，湖北 荊門 448000)

羅馬洋甘菊HMGR基因的克隆與表達(dá)分析

孟想想1，閆佳萍1，劉曉夢(mèng)1，廖詠玲1，常 杰2，3，許 鋒1

(1.長(zhǎng)江大學(xué) 園藝園林學(xué)院，湖北 荊州 434025；2.靶向抗腫瘤藥物湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心，湖北 荊門 448000；3.荊楚理工學(xué)院 化工與藥學(xué)院，湖北 荊門 448000)

3-羥基-3-甲基戊二酰-CoA還原酶(3-hydroxy-3-methyl glutaryl coenzyme A reductase，HMGR)是植物萜類化合物甲羥戊酸合成途徑中的關(guān)鍵限速酶。為研究HMGR基因在洋甘菊萜類化合物合成代謝中的功能，根據(jù)前期羅馬洋甘菊轉(zhuǎn)錄組注釋HMGR的Unigene序列設(shè)計(jì)引物，以羅馬洋甘菊cDNA為模板，采用RT-PCR方法，從羅馬洋甘菊中克隆得到一個(gè)長(zhǎng)為1 856 bp的HMGR基因，命名為CnHMGR(GenBank登錄號(hào)為KU589282)。CnHMGR基因序列包含1個(gè)1 746 bp長(zhǎng)的開放閱讀框，編碼582個(gè)氨基酸，生物信息學(xué)軟件預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)分子量和等電點(diǎn)分別為62.5 kDa和6.80。氨基酸序列多重比對(duì)結(jié)果顯示，CnHMGR蛋白質(zhì)與其他植物的HMGR蛋白具有高度相似性，并包含HMGR蛋白質(zhì)家族中的2個(gè)HMG-CoA結(jié)合基序：TTEGCLUA、EMPVGYVQIP以及2個(gè)NADP(H)結(jié)合基序：TVGGGT、DAMGMNM，表明CnHMGR屬千羅馬洋甘菊HMGR家族成員。組織表達(dá)分析顯示CnHMGR在羅馬洋甘菊的不同組織均有表達(dá)，在花中表達(dá)量最高，在莖中表達(dá)量最低。通過對(duì)CnHMGR基因的克隆及表達(dá)特性分析，為后續(xù)深入研究其在洋甘菊倍半萜合成途徑中的功能奠定了理論基礎(chǔ)。

羅馬洋甘菊；CnHMGR；基因克??；組織表達(dá)

羅馬洋甘菊(Chamaemelumnobile)為菊科母菊屬草本植物，富含揮發(fā)性芳香油[1]。研究表明，洋甘菊揮發(fā)油的主要成分為倍半萜類化合物，包括α-甜沒藥醇、α-甜沒藥醇氧化物A和B以及母菊薁等活性成分，具有消炎、抑菌、抗氧化性和抗癌等功效，被廣泛用于藥品、化妝品和香料等領(lǐng)域。盡管洋甘菊揮發(fā)油主要從花中提取，但花中僅含有1%～2%的揮發(fā)性油[2-3]，遠(yuǎn)不能滿足市場(chǎng)需求。因此，提高洋甘菊揮發(fā)油中倍半萜類化合物含量，是目前洋甘菊栽培育種研究領(lǐng)域中的重要方向之一。

植物倍半萜類物質(zhì)生物合成中的C5單位主要來自甲羥戊酸(MVA)途徑。MVA途徑是合成倍半萜的主要來源，兩分子乙酰CoA(Acetyl-CoA)在乙酰CoA轉(zhuǎn)運(yùn)酶(AACT)作用下形成乙酰CoA(Acetoacetyl-CoA)，經(jīng)羥甲基戊二酰CoA合酶(HMGS)催化形成3-羥基-3-甲基戊二酰CoA(HMG-CoA)，再在HMGR催化下形成甲羥戊酸(MVA)，之后逐步合成甲羥戊酸-5-磷酸(MVAP)、甲羥戊酸-5-二磷酸(MVAPP)及異戊烯基焦磷酸(IPP)，或其異構(gòu)體二甲丙烯基焦磷酸(DMAPP)[4]。IPP和DMAPP縮合形成牻牛兒基焦磷酸(GPP)；GPP與1個(gè)IPP 單元結(jié)合生成法呢基焦磷酸(FPP)為倍半萜的前體物質(zhì)，F(xiàn)PP經(jīng)異構(gòu)、環(huán)化、絡(luò)合等方式最終形成倍半萜[5]。在MVA途經(jīng)中，3-羥基-3-甲基戊二酸單酰CoA還原酶(HMGR)催化3-羥基-3-甲基戊二酸單酰輔酶A(HMG-CoA)生成甲羥戊酸(MVA)，這一催化過程被認(rèn)為是控制MVA途徑前期反應(yīng)的關(guān)鍵限速步驟[6]，因此HMGR被認(rèn)為是MVA途徑中的關(guān)鍵限速酶之一。大量研究表明：倍半萜類物質(zhì)的合成與HMGR活性呈正相關(guān)，提高植物體內(nèi)HMGR基因的表達(dá)水平可顯著提高倍半萜類物質(zhì)含量[7]。如Chappell和Nable[8]通過外源真菌誘導(dǎo)煙草懸浮細(xì)胞的HMGR酶活性，進(jìn)而促進(jìn)了倍半萜類化合物的積累。此外，甜椒HMGR2基因表達(dá)水平也受外源真菌誘導(dǎo)，同時(shí)倍半萜環(huán)化酶及法尼基焦磷酸合酶的活性也隨之提高，暗示HMGR2基因參與調(diào)控甜椒倍半萜類化合物的生物合成[9]。

近年來，科學(xué)家已先后從銀杏(Ginkgobiloba)[10]、樂昌含笑(Micheliachapensis)[11]、丹參(Salviamiltiorrhiza)[12]、龍眼(Dimocarpuslongan)[13]、蒲公英(Taraxacummongolicum)[14]、露水草(Cyanotisarachnoidea)[15]、積雪草(Centellaasiatica)[16]等植物中分離克隆出HMGR基因，但迄今為止在羅馬洋甘菊中尚未見HMGR基因的報(bào)道。鑒于HMGR是倍半萜類化合物合成途徑中的關(guān)鍵限速酶，因此，本研究以羅馬洋甘菊為試材，利用RT-PCR技術(shù)克隆CnHMGR基因，并進(jìn)行了該基因的生物信息學(xué)分析，通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)CnHMGR在不同組織中的表達(dá)水平，以期為進(jìn)一步開展羅馬洋甘菊CnHMGR基因的表達(dá)調(diào)控和定向調(diào)節(jié)倍半萜類化合物的生物合成奠定理論基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 材料和試劑

試驗(yàn)材料為種植于長(zhǎng)江大學(xué)植物園的羅馬洋甘菊。本試驗(yàn)中引物核苷酸和PCR產(chǎn)物測(cè)定序列工作均委托上海生工生物工程公司完成。切膠回收試劑盒(Agarose Gel DNA purifieation Kit Ver.4.0)、RNA提取試劑盒(MiniBEST Plant RNA Extraction kit)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(PrimeScriptTM1st Strand cDNA Synthesis Kit)、實(shí)時(shí)定量試劑盒(PrimeScriptTMRT reagent Kit Perfect Real Time)、pMD18-T載體、dNTP、RNA酶和TaqDNA聚合酶均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司。

1.2 羅馬洋甘菊CnHMGR基因的克隆

取羅馬洋甘菊的花組織樣品2～3 g，使用液氮研磨成粉狀，并采用TaKaRa MiniBEST Plant RNA Extraction kit試劑盒提取總RNA，采用PrimeScriptTM1st Strand cDNA Sythesis Kit(TaKaRa，大連)試劑盒將提取RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)許鋒課題組前期羅馬洋甘菊轉(zhuǎn)錄組注釋的HMGRUnigene序列，設(shè)計(jì)一對(duì)特異引物DFHMGR(5′-CCCACCCCTTCCT

TTGAAAA-3′)和DRHMGR(5′-GGATCAGAAGATGA

TGCCCACA-3′)，利用反轉(zhuǎn)錄PCR技術(shù)(RT-PCR)擴(kuò)增HMGR基因。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)過凝膠電泳初步檢測(cè)后切膠回收，進(jìn)一步純化后與pMD-18T載體進(jìn)行連接，轉(zhuǎn)化進(jìn)大腸桿菌株DH5α，挑選陽(yáng)性克隆送上海生工生物工程公司測(cè)序。

1.3 生物信息學(xué)分析

經(jīng)測(cè)序成功的HMGR基因序列，利用NCBI網(wǎng)站上的在線軟件Blast P(http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)進(jìn)行DNA序列相似性比較及蛋白質(zhì)序列分析，利用軟件Vector NTI 11.5預(yù)測(cè)CnHMGR基因的開放讀碼框(ORF)。采用在線工具ExPASy(http：//web.expasy.org)預(yù)測(cè)CnHMGR編碼蛋白的理化性質(zhì)。利用軟件Vector NTI 11.5將CnHMGR蛋白與其他植物HMGR的蛋白質(zhì)進(jìn)行多重比對(duì)，通過Clustal X2.0和MEGA5構(gòu)建HMGR蛋白質(zhì)的系統(tǒng)進(jìn)化樹。

1.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析

分別提取羅馬洋甘菊根、莖、葉、花的總RNA，反轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)CnHMGR的cDNA序列設(shè)計(jì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR特異引物，上游引物為5′-AGAAGAAACCACCTCCAACTATCG-3′，下游引物為5′-CTTCCAGAGGCAATCCTGATAGAG-3′；內(nèi)參基因選用18S基因，基因上游引物為5′-TTGGTCTCC CGTGCTAATGG-3′，下游引物為5′-CGAAGCGTC ATCCTAAGACAACA-3′。參照TaKaRa公司的SYBR?Premix ExTaqⅡ(TliRNaseH Plus)試劑盒說明書，在Bio-Rad CFX熒光定量PCR儀上進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR。反應(yīng)程序?yàn)?5 ℃，30 s；95 ℃，5 s，60 ℃，30 s，共40個(gè)循環(huán)，加溶解曲線程序，每個(gè)部位均進(jìn)行3次重復(fù)，基因相對(duì)表達(dá)量值通過2-ΔΔCt法計(jì)算[17]，各組織表達(dá)水平以莖中的表達(dá)量為對(duì)照(CK)。

起始密碼子和終止密碼子通過方框標(biāo)出；引物通過下劃線標(biāo)出。The initial codon and the stop codon are highlighted in square box；The primer sequences are underlined.

2 結(jié)果與分析

2.1CnHMGR全長(zhǎng)cDNA克隆和序列分析

根據(jù)本課題組前期羅馬洋甘菊轉(zhuǎn)錄組注釋的HMGRUnigene序列設(shè)計(jì)引物，利用RT-PCR擴(kuò)增得到長(zhǎng)為1 856 bp的cDNA序列。經(jīng)NCBI網(wǎng)站的Blast程序在線比對(duì)分析顯示，該cDNA序列與其他植物的HMGR序列高度同源，表明克隆的cDNA序列為羅馬洋甘菊HMGR基因，因此，將該cDNA序列命名為CnHMGR，GenBank登錄號(hào)為KU589282。CnHMGR基因的cDNA序列全長(zhǎng)1 856 bp，包含1 746 bp的開放閱讀框，編碼582個(gè)氨基酸(圖1)。2.2 CnHMGR蛋白質(zhì)分析ExPASy在線分析結(jié)果顯示，CnHMGR基因編碼的蛋白質(zhì)分子量為62.5 kDa，理論等電點(diǎn)為6.80。利用軟件Vector NTI11.5將CnHMGR蛋白質(zhì)序列與其他植物HMGR蛋白序列進(jìn)行多重比對(duì)，結(jié)果顯示CnHMGR與其他植物的HMGR蛋白序列高度同源(圖2)。如表1所示，CnHMGR與蒼術(shù)(Atractylodeslancea)、三七(Panaxnotoginseng)、甜瓜(Cucumismelo)、荔枝(Litchichinensis)、橡膠樹(Heveabrasiliensis)、蓮花(Nelumbonucifera)、葡萄(Vitisvinifera)、黃瓜(Cucumissativus)、蓖麻(Ricinuscommunis)HMGR蛋白質(zhì)的相似度分別為85%，78%，80%，79%，79%，78%，78%，77%，77%，進(jìn)一步驗(yàn)證了CnHMGR為羅馬洋甘菊HMGR基因家族成員之一。進(jìn)一步的序列分析結(jié)果顯示，CnHMGR蛋白包含4個(gè)保守的結(jié)構(gòu)域，分別為2個(gè)NADP(H)結(jié)合域：TVGGGT、DAMGMNM，以及2個(gè)HMG-CoA結(jié)合域：TTEGCLVA、EMPVGYVQIP，暗示CnHMGR也具有與其他植物HMGR蛋白酶相似的催化功能[18]。

表1 CnHMGR與其他植物HMGR蛋白質(zhì)序列的相似性比對(duì)Tab.1 Protein sequence of CnHMGR similarity to HMGRs of other plant species

保守的HMG-CoA結(jié)合基序與NADP(H)結(jié)合基序用黑框標(biāo)出。The conserved NADP(H)-binding motifs and HMG-CoA-binding domains is highlighted in black square box.

2.3 CnHMGR系統(tǒng)進(jìn)化分析

利用軟件ClustalX 2.0和MEGA 6.0通過鄰接法(Neighbor-joining)構(gòu)建了HMGR的系統(tǒng)進(jìn)化樹。HMGR系統(tǒng)進(jìn)化樹分成兩大分支，單子葉植物禾本科和雙子葉植物，雙子葉植物又被分為菊科、桔?？?、藍(lán)果樹科、五加科、茄科、玄參科、唇形科、十字花科、無患子科和大戟科。在HMGR系統(tǒng)進(jìn)化上，羅馬洋甘菊與雙子葉植物的親緣關(guān)系較單子葉植物近，與菊科植物萬壽菊(Tageteserecta)親緣關(guān)系最近、與桔梗(Platycodongrandiflorus)、喜樹(Camptothecaacuminata)、三七(Panaxnotoginseng)和人參(Panaxginseng)也有很高的親緣性(圖3)，這一方面反映了CnHMGR基因在雙子葉植物中進(jìn)化保守，另一方面也反映了植物HMGR基因在進(jìn)化上的多樣性，這與植物形態(tài)學(xué)分類情況是一致的。

圖中各分支數(shù)值代表置信度。The number shown at each branch indicates the bootstrap values.

2.4CnHMGR組織表達(dá)分析

提取羅馬洋甘菊的根、莖、葉、花的總RNA，利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)(qRT-PCR)測(cè)定了羅馬洋甘菊各器官中CnHMGR基因的表達(dá)水平(圖4)。結(jié)果表明，CnHMGR基因在羅馬洋甘菊的根、莖、葉、花中均有表達(dá)，其中在花中的表達(dá)量最高，其次是根和葉，而在莖中表達(dá)量最低。

圖4 CnHMGR在羅馬洋甘菊不同組織的表達(dá)水平Fig.4 Expression pattern of CnHMGR among different tissues of Chamaemelum nobile

3 討論

倍半萜在植物體內(nèi)多以醇、酮、苷或內(nèi)酯的形式存在，羅馬洋甘菊中的倍半萜化合物主要有α-甜沒藥醇及其氧化物，以及母菊薁、金合歡烯等，藥理學(xué)研究表明倍半萜類物質(zhì)具有抗菌、抗氧化、消炎、抗痙攣、抗癌、抗腫瘤、抗神經(jīng)毒性、保肝等生物活性，是醫(yī)藥、食品、化妝品工業(yè)的重要原料[11，19]。研究表明倍半萜類化合物生物合成主要通過甲羥戊酸(MVA)途徑，HMGR是甲羥戊酸(MVA)合成途徑中的關(guān)鍵基因，對(duì)甲羥戊酸代謝“碳流”的調(diào)控起重要作用，改變HMGR活性可有效調(diào)控萜類化合物含量。利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)將HMGR基因在植物中超表達(dá)可提高倍半萜類化合物含量[7，20-21]。例如馬鈴薯HMGR2和HMGR3的超表達(dá)可使與倍半萜植保素含量增加[22-23]，長(zhǎng)春花HMGR基因在黃花蒿中過表達(dá)，可使倍半萜類物質(zhì)青蒿素含量提高22.5%[24]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，MVA途徑控制了黃花蒿萜類代謝途徑中80%的碳源，且HMGR作為該途徑的主要限速酶，其酶活性的調(diào)節(jié)直接影響了細(xì)胞中甲羥戊酸的儲(chǔ)蓄和青蒿素的積累[25]。鑒于此，本研究克隆了羅馬洋甘菊中倍半萜合成途徑中的關(guān)鍵基因HMGR基因，并分析了該基因的組織表達(dá)模式，可為利用基因工程技術(shù)提高羅馬洋甘菊倍半萜類化合物含量提供基因資源與理論基礎(chǔ)。

生物信息學(xué)表明CnHMGR蛋白與其他植物的HMGR蛋白具有高度的同源性，并包含4個(gè)保守基序，即NADPH結(jié)合基序：TVGGGT、DAMGMNM和HMG-CoA結(jié)合基序：TTEGCLVA、EMPVGYVQIP。CnHMGR蛋白的HMG-CoA結(jié)合基序中TTEGCLVA中的谷氨酸(Glu)可能在HMGR的催化功能發(fā)揮著重要作用。研究表明，HMG-CoA結(jié)合基序(EMPVGYVQIP)在各植物之間的多樣性對(duì)于HMGR催化底物的選擇可能發(fā)揮著重要作用[18，26]。CnHMGR包含該保守基序，推測(cè)也具有底物選擇的功能。通過進(jìn)化樹分析結(jié)果可見，羅馬洋甘菊與萬壽菊親緣關(guān)系最近，推測(cè)CnHMGR與萬壽菊HMGR蛋白具有相似的催化活性，羅馬洋甘菊與其他雙子葉、及單子葉植物也具有親緣關(guān)系，反映了植物HMGR基因在進(jìn)化上的多樣性，同時(shí)也表明HMGR是萜類生物合成途徑中1個(gè)十分保守的基因。利用鄰接法構(gòu)建的HMGR系統(tǒng)進(jìn)化樹雖然只能在一定程度上反映各物種之間的進(jìn)化關(guān)系，但對(duì)物種間親緣關(guān)系的判定仍具有一定的參考價(jià)值。

研究表明，HMGR基因在不同植物組織表達(dá)模式呈現(xiàn)出較大的差異，例如，在南非醉茄(Withaniasomnifera)中表達(dá)量最高，花中表達(dá)量最少[27]；在人參花中表達(dá)量最高，莖中表達(dá)量最低[28]；在露水草中根和葉表達(dá)豐富[15]；在積雪草節(jié)點(diǎn)表達(dá)最高，在根部表達(dá)最低[16]。HMGR基因的特異性表達(dá)通常與類固醇或倍半萜積累相關(guān)，如在丹參[12]、銀杏[10]、黃花蒿[24]、白木香[29]中，HMGR的表達(dá)量分別與銀杏內(nèi)酯和白果內(nèi)酯、青蒿素、沉香倍半萜、丹參酮的含量呈正相關(guān)。本研究中實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)結(jié)果顯示CnHMGR在花中的表達(dá)量最高。該結(jié)果表明CnHMGR在羅馬洋甘菊中的表達(dá)具有組織特異性，該表達(dá)模式可能和羅馬洋甘菊倍半萜的合成與積累部位有關(guān)。已有文獻(xiàn)報(bào)道羅馬洋甘菊的花器官中富含精油及倍半萜類化合物，其含量顯著高于其他組織[30]，CnHMGR在花中的表達(dá)水平最高，可能與倍半萜類化合物的合成呈正相關(guān)，暗示了HMGR可能具有調(diào)控倍半萜化合物的功能。

本課題組前期的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果顯示羅馬洋甘菊HMGR基因家族中存在眾多成員，本研究克隆的CnHMGR基因僅為其家族中的一個(gè)成員。因此，在后續(xù)研究中，需進(jìn)一步對(duì)羅馬洋甘菊HMGR基因家族的其余成員進(jìn)行克隆及功能分析，并研究它們?cè)诖呋δ苌系漠愅c(diǎn)，為后期開展羅馬洋甘菊HMGR基因家族調(diào)控倍半萜類化合物生物合成的分子機(jī)制研究提供基礎(chǔ)理論。

[1] Lemberkovics E, Kery A, Marczal G, et al. Phytochemical evaluation of essential oils,medicinal plants and their preparations[J]. Acta Pharmaceutica Hungarica, 1998, 68(3): 141-149.

[2] Carnat A, Carnat A P, Fraisse D, et al. The aromatic and polyphenolic composition of Roman chamomile tea[J]. Fitoterapia, 2004, 75(1): 32-38.

[3] Srivastava J K, Shankar E, Gupta S. Chamomile: A herbal medicine of the past with a bright future (Review)[J]. Molecular Medicine Reports, 2010, 3(6): 895-901.

[4] 張長(zhǎng)波, 孫紅霞, 鞏中軍, 等. 植物萜類化合物的天然合成途徑及其相關(guān)合酶[J]. 植物生理學(xué)通訊, 2007, 43: 779-786.

[5] 何云飛, 高 偉, 劉塔斯, 等. 二萜合酶的研究進(jìn)展[J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào), 2011, 46( 9): 1019.

[6] Doblas V G, Amorim-Silva V, Posé D, et al. The SUD1 gene encodes a putative E3 ubiquitin ligase and is a positive regulator of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase activity in Arabidopsis[J]. Plant Cell, 2013, 25(2): 728-743.

[7] Chappell J, Wolf F, Proulx J, et al. Is the reaction catalyzed by 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase a rate-limiting step for isoprenoid biosynthesis in plants[J]. Plant Physiology, 1995, 109(4):1337-1343.

[8] Chappell J, Nable R. Induction of sesquiterpenoid biosynthesis in tobacco cell suspension cultures by fungal elicitor[J]. Plant Physiology, 1987, 85(2):469-473.

[9] Ha S H, Kim J B, Hwang Y S, et al. Molecular characterization of three 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase genes including pathogen-induced Hmg2 from pepper(Capsicumannuum)[J]. Biochimica et Biophysica acta, 2003, 1625(3): 253-260.

[10] Shen G, Pang Y, Wu W, et al. Cloning and characterization of a root-specific expressing gene encoding 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase fromGinkgobiloba[J]. Molecular Biology Reports, 2006, 33(2): 117-127.

[11] Cao X Y, Li C G, Miao Q, et al. Molecular cloning and expression analysis of a leaf- specific expressing 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA (HMG-CoA) reductase gene fromMicheliachapensisDandy[J]. Journal of Medicinal Plant Research, 2011, 5(16): 3868-3875.

[12] Dai Z, Cui G, Zhou S F, et al. Cloning and characterization of a novel 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase gene fromSalviamiltiorrhizainvolved in diterpenoid tanshinone accumulation[J]. Journal of Plant Physiology, 2011, 168(2): 148-157.

[13] Xia R, Lu W J, Wang Z H, et al. Cloning and characterisation of two genes for 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase and their possible roles during fruit development inDimocarpuslongan[J]. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 2011, 86(1): 25-30.

[14] Van D N, Bachmann A L, Schmidt T, et al. Molecular cloning of mevalonate pathway genes fromTaraxacumbrevicorniculatumand functional characterisation of the key enzyme 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A reductase[J]. Molecular Biology Reports, 2012, 39(4): 4337-4349.

[15] Wang Q J, Zheng L P, Zhao P F, et al. Cloning and characterization of an elicitor-responsive gene encoding 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase involved in 20-hydroxyecdysone production in cell cultures ofCyanotisarachnoidea[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2014, 84: 1-9.

[16] Kalita R, Patar L, Shasany A K, et al. Molecular cloning, characterization and expression analysis of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase gene fromCentellaasiaticaL.[J]. Molecular Biology Reports, 2015, 42(9): 1431-1439.

[17] Livak K J, Schmittgen T D. Analysis of relative gene expression data using Real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCtmethod[J]. Methods, 2001, 25(4): 402-408.

[18] Wang Y, Darnay B G, Rodwell V W. Identification of the principal catalytically important acidic residue of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase[J]. The Journal of Biological Chemistry, 1990, 265(35): 21634-21641.

[19] 樸英花, 樸惠順. 倍半萜類化合物生物活性研究進(jìn)展[J]. 職業(yè)與健康, 2012, 28(18): 2291-2293.

[20] Chappell J. Biochemistry and molecular biology of the isoprenoid biosynthetic pathway in plants[J]. Annual Review of Plant Biology, 1995, 46(1): 521-547.

[21] Darabi M, Masoudi-Nejad A, Nemat-Zadeh G. Bioinformatics study of the 3-hydroxy-3-methylglotaryl-coenzyme A reductase (HMGR) gene in Gramineae[J]. Molecular Biology Reports,2012,42(9):1243-1243.

[22] Yang Z, Park H, Lacy G H, et al. Differential activation of potato 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase genes by wounding and pathogen challenge[J]. The Plant Cell, 1991, 3(4): 397-405.

[23] Choi D, Ward B L, Bostock R M. Differential induction and suppression of potato 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase genes in response to Phytophthora infestans and to its elicitor arachidonic acid[J]. The Plant Cell, 1992, 4(10): 1333-1344.

[24] Aquil S, Husaini A M, Abdin M Z, et al. Overexpression of the HMG-CoA reductase gene leads to enhanced artemisinin biosynthesis in transgenicArtemisiaannuaplants[J]. Planta Medica, 2009, 75(13): 1453-1458.

[25] Alam P, Abdin M Z. Over-expression of HMG-CoA reductase and amorpha-4,11-diene synthase genes in Artemisia annua L. and its influence on artemisinin content[J]. Plant Cell Reports, 2011, 30(10): 1919-1928.

[26] Ruiz-Albert J, Cerdá-Olmedo E, Corrochano L M. Genes for mevalonate biosynthesis in Phycomyces[J]. Molecular Genetics and Genomics, 2002, 266(5): 768-777.

[27] Akhtar N, Gupta P, Sangwan N S, et al. Cloning and functional characterization of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase gene fromWithaniasomnifera:an important medicinal plant[J]. Protoplasma, 2013, 250(2): 613-622.

[28] 羅紅梅, 宋經(jīng)元, 李雪瑩, 等. 人參皂苷合成生物學(xué)關(guān)鍵元件HMGR基因克隆與表達(dá)分析[J].藥學(xué)學(xué)報(bào), 2013, 48(2): 219-227.

[29] 徐艷紅, 楊 欣, 張 爭(zhēng), 等. 白木香3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶基因-AsHMGR2的克隆及表達(dá)分析[J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào), 2013, 48(6): 953.

[30] Agatonovic-Kustrin S, Ortakand D B, Morton D W. Migraine headaches:Feverfew or Chamomile leaves[J]. Modern Chemistry Applications, 2015, 3(169): 2.

Cloning and Expression Analysis of HMGR Gene from Chamaemelum nobile

MENG Xiangxiang1，YAN Jiaping1，LIU Xiaomeng1，LIAO Yongling1，CHANG Jie2，3，XU Feng1

(1.College of Horticulture and Landscape Architecture，Yangtze University，Jingzhou 434025，China；2.Hubei Collaborative Innovation Center of Targeted Antitumor Drug，Jingmen 448000，China；3.College of Chemical Engineering and Pharmacy，Jingchu University of Technology，Jingmen 448000，China)

3-hydroxy-3-methyl-glutaryl-CoA reductase (3-hydroxy-3-methyl glutaryl coenzyme A reductase，HMGR) is one of the key rate-limiting enzymes in mevalonic (MVA) pathway of terpenoid biosynthesis.To analysis the function ofHMGRgene in terpenoid biosynthesis inChamaemelumnobile，aHMGRgene (designated asCnHMGR，GenBank accession number KU589282) was cloned fromC.nobileusing RT-PCR method.The full-length cDNA ofCnHMGRgene was 1 856 bp and contained an open reading frame (ORF) of 1 746 bp，which encodes a 582 amino-acid protein.The theoretical molecular weight and PI of theCnHMGRwere 62.5 kDa and 6.80，respectively.Multi-alignment comparison analysis showed the protein sequence of CnHMGR had high similarity with those of HMGR proteins from other plants.Furthermore，CnHMGR has two HMG-CoA-binding motifs：TTEGCLVA，EMPVGYVQIP，and two NADP(H)-binding motifs:TVGGGT,DAMGMMM,suggesting CnHMGR is one of HMGR family mumbers inC.nobile.The results of tissue expression analysis showed thatCnHMGRwas constituently expressed indifferent tissues ofC.nobile，with highest expression level in flowers and lowest expression level in stems.The present study cloned，characterized and analyzed the tissue expression pattern ofCnHMGRinC.nobile，providing basic data for further studying the function ofCnHMGRin sesquiterpene biosynthesis ofC.nobile.

Chamaemelumnobile；CnHMGR；Gene cloning；Tissue expression

2016-06-05

國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31400603)；大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目(201207014)

孟想想(1991-)，女，安徽蚌埠人，在讀碩士，主要從事植物分子生物學(xué)研究。

許 鋒(1979-)，男，湖北武漢人，教授，博士，主要從事藥用植物次生代謝研究。

Q78；S682.03

A

1000-7091(2016)06-0068-08

10.7668/hbnxb.2016.06.011