張麗娜 顧恪波 吳潔 孫岸弢 張晨 張明輝
·綜述與講座·
白藜蘆醇誘導腫瘤細胞凋亡的機制
張麗娜 顧恪波 吳潔 孫岸弢 張晨 張明輝
白藜蘆醇(resveratrol,Res)是一種天然可食用的多酚類化合物,主要來源于葡萄、漿果、花生以及虎杖等多種植物的塊根提取物,其中虎杖在我國具有悠久而重要的藥用歷史。近年大量報道表明,Res具有一定的抗氧化、抗炎和抗腫瘤作用。然而其誘導腫瘤細胞凋亡的分子機制尚未完全闡明。據(jù)近年來諸多研究結(jié)果,本文對白藜蘆醇誘導腫瘤細胞凋亡的分子機制作一簡單綜述,以供研究者參考。
白藜蘆醇;腫瘤;凋亡;機制;綜述
白藜蘆醇(resveratrol,Res)是一種天然可食用的多酚類化合物,主要來源于葡萄、漿果、花生以及虎杖等多種植物的塊根提取物,其中虎杖在我國具有悠久而重要的藥用歷史。近年大量報道表明,Res具有一定的抗氧化、抗炎和抗腫瘤作用。然而其誘導腫瘤細胞凋亡的分子機制尚未完全闡明。據(jù)近年來諸多研究結(jié)果,本文對白藜蘆醇誘導腫瘤細胞凋亡的分子機制作一簡單綜述,以供研究者們參考。
近年來,大量研究證實ROS可通過多種途徑導致線粒體功能障礙,使線粒體通透性轉(zhuǎn)換通道(permeability transition pore,PTP)在病理狀態(tài)下開放,將細胞色素C(cytochromr C)和其他促凋亡因子釋放到胞質(zhì)中,激活半胱氨酸蛋白酶3 (caspase-3),從而引起瀑布效應,誘導細胞凋亡[1]。然而,腫瘤細胞通常顯示出高于正常水平的ROS含量,這不僅能促使腫瘤進展、侵襲,而且可使腫瘤細胞更容易受到進一步的ROS傷害[2]。事實上,目前許多抗腫瘤藥物正是通過誘導氧化應激殺死腫瘤細胞,盡管它們有時既針對腫瘤細胞,也作用于正常細胞。
但是作為一種天然可食用的、無毒無公害的植物提取物,Res及其類似物Pterostilbene(PTE)可通過增加ROS含量,強化氧化應激,降低線粒體膜電位(mitochondrial membrane potential,MMP),在人肺腺癌A549、卵巢癌SKOV-3、多發(fā)骨髓瘤H929及彌漫大B淋巴瘤(DLBCL)細胞中啟動內(nèi)源性凋亡途徑,誘導腫瘤細胞死亡[3-6]。且這種ROS含量的增加,可能是通過觸發(fā)細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)1/2和JNK(c-Jun N-terminal kinase)等信號通路而實現(xiàn)的[5,6]。
有絲分裂原激活的MAPK信號通路涉及多種細胞過程,包括細胞的增殖、分化、凋亡,并參與免疫反應調(diào)節(jié)。最初被發(fā)現(xiàn)的MAPK成員是ERK1/2信號途徑,其磷酸化可啟動一系列底物,對細胞增殖、細胞周期進展、細胞分裂及分化進行調(diào)節(jié)。
相較于ERK1/2,p38和JNK激酶在MAP3K水平上具有較多的共有激活劑,一些MAP2K也能同時激活p38和JNK。而JNK和p38信號通路均參與應對一些應激性刺激,包括細胞因子、放射線照射、熱休克和滲透壓性休克等,并參與對應激、凋亡和細胞分化的調(diào)節(jié)。
不過,JNKs也有許多專門的底物,只有JNKs才能將之磷酸化;而p38s也有一些特有的底物,以確保兩者在應對應激性刺激時的各自需要。
Res可以激活MAPK家族的兩個成員p38和JNK激酶,同時抑制另一成員ERK1/2的活性,從而在人慢性骨髓源性白血病K562細胞系中誘導凋亡。它誘導位于Ser139的H2AX發(fā)生磷酸化,而H2AX的高表達可顯著增強Res誘導的K562細胞凋亡;突變的Ser139高表達(可以封閉H2AX的磷酸化)則可抑制Res誘導的K562細胞凋亡。這提示Res可能通過p38和JNK激酶調(diào)節(jié)的H2AX磷酸化誘導K562細胞的凋亡[7]。
PPARγ屬于核受體超家族成員,是一個配體依賴性的轉(zhuǎn)錄因子,其激活在各種腫瘤細胞可導致生長周期停滯和(或)細胞凋亡。
有研究顯示,Res作用于結(jié)腸癌細胞,可激活PPARγ而抑制其增殖、促進其凋亡。而轉(zhuǎn)染顯性陰性的PPARγ突變體于相關(guān)結(jié)腸癌細胞,或治之以PPARγ拮抗劑,可反轉(zhuǎn)Res的抑制作用[8]。Res的同源合成物PTER-ITC作用于激素依賴性乳腺癌細胞MCF-7和非激素依賴性乳腺癌細胞MDA-MB-231后,均能調(diào)節(jié)PPARγ表達相關(guān)的基因,并增加PPARγ mRNA及其蛋白表達水平,運用PPARγ拮抗劑或PPARγ siRNA預處理則可抑制PTER-ITC誘導的細胞凋亡[9]。PTER-ITC是在PTER主體上添加一半異硫氰酸酯(isothiocyanate,ITC)而合成的,而PTER是二甲基化的Res同源物,其分子式為trans-3,5-dimethoxy-4'-hydroxystilbene。另外,該研究還表明,共同孵育于p38 MAPK或JNK的抑制劑,PTER-ITC介導的PPARγ上調(diào)就可以被抵消,說明p38 MAPK和JNK信號途徑均參與了PTER-ITC的作用[9]。此外,PTER- ITC還在PPARγ配體結(jié)合部位與5個極性的、8個非極性的殘基發(fā)生相互作用,對其活性的激活具有至關(guān)重要的作用。上述研究表明,PTER-ITC可能通過p38 MAPK和JNK信號途徑參與了PPARγ的激活,從而誘導結(jié)腸癌細胞凋亡。
PI3K-AKT-mTOR信號通路已被證實是對腫瘤具有重要意義的三個主要信號通路之一。mTOR是PI3K/AKT的關(guān)鍵下游激酶,可以參與調(diào)解腫瘤細胞的增殖、成長、存活及血管生成。事實上,通過磷酸化,PI3K-AKT-mTOR可抑制促凋亡因子活性而激活抗凋亡因子活性。因此,抑制AKT/mTOR磷酸化是抑制腫瘤細胞增殖、促進腫瘤細胞凋亡的一個重要途徑。
有研究報道,HS-1793、Res的一種合成類似物,可以通過下調(diào)AKT的水平而抑制結(jié)腸癌細胞HCT116的生長,誘導其凋亡,并伴隨有形態(tài)學改變、二磷酸腺苷核糖多聚酶(poly ADP- ribose polymerase,PARP)裂解、Bax/Bcl-2比例改變和caspases 激活[10]。
此外,Res可誘導前列腺癌細胞的DDX5,即DEAD (Asp-Glu-Ala-Asp) box helicase 5,亦即p68的表達水平降低;而DDX5耗減可通過抑制mTORC1 (mammalian target of rapamycin complex 1)信號,促進細胞凋亡[11]。
當然,在AKT上游可能還存有其他調(diào)節(jié)機制。研究表明,Res在膀胱癌T24和5637細胞中可降低miR21表達,減少AKT磷酸化,降低Bcl2蛋白表達水平,從而誘導細胞凋亡;而高表達的miR21可恢復AKT活性,下調(diào)Bcl2表達和Res誘導的細胞凋亡[12]。說明Res可能通過miR21抑制Akt/Bcl2活性及表達,從而達到促凋亡作用。
FoxO3是AKT下游FoxO轉(zhuǎn)錄因子家族成員之一,可調(diào)節(jié)細胞功能。Res在肝癌細胞系HepG2中可誘導凋亡,并伴隨有促凋亡蛋白Bim表達的增加,以及AKT調(diào)節(jié)的FoxO3磷酸化減少。而且,Res可使得核內(nèi)FoxO3a水平增加而通過Bim調(diào)節(jié)細胞核的死亡。因此,Res誘導的肝癌細胞HepG2凋亡可能是通過AKT調(diào)節(jié)的FoxO3磷酸化減少,增加促凋亡蛋白Bim表達而實現(xiàn)的[13]。
Res通過加強細胞間連接及下調(diào)NF-κB活性,抑制上皮細胞-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)起到化療增敏作用,可以增強5-氟尿嘧啶(5-Fu)對結(jié)直腸癌的抑制效果[14]。而Res加載明膠納米粒子(RSV-GNPs)后,亦可通過下調(diào)NF-κB表達,誘導非小細胞肺癌NCI-H460細胞凋亡[15]。
Res可通過抑制JAK1、JAK2和Tyk2及其下游的調(diào)節(jié)因子STAT3和STAT5的磷酸化,從而抑制JAK2(V617F)突變的腫瘤細胞增殖,誘導其凋亡。這種對具有JAK2(V617F)突變的腫瘤細胞的選擇性效應,比沒有JAK2(V617F)突變的腫瘤細胞更為突出。在來自于JAK2(V617F)突變的真性紅細胞增多癥患者提供的血樣中,Res也抑制了紅系祖細胞集落的形成。而且與選擇性的JAK2抑制劑ruxolitinib聯(lián)用,可協(xié)同加強其清除JAK2(V617F)突變腫瘤細胞的作用。這些證據(jù)表明,Res可通過抑制JAK2通路,選擇性地誘導JAK2(V617F)突變的腫瘤細胞凋亡[16]。
另一項研究也證實,Res可持續(xù)抑制四種NK細胞系,即KHYG-1、NKL、NK-92和NK-YS的STAT3活性及JAK2磷酸化,但對STAT3活性有影響的其他上游調(diào)節(jié)因子如PTEN、TyK2和JAK1等則無明顯調(diào)節(jié)作用;對STAT3下游的兩個抗凋亡效應因子MCL1和survivin則具有下調(diào)的作用[17]。在惡性間皮瘤細胞MSTO-211H中,Res也通過下調(diào)MCL1蛋白水平,啟動生長抑制和誘導凋亡作用,并伴隨有procaspase-3裂解、底物PARP出現(xiàn),caspase-3/7活性增強等效應[18]。
另一種Res的合成類似物,(E)-8-acetoxy-2-[2-(3,4-diacetoxyphenyl)ethenyl]-quinazoline(8-ADEQ),可以通過增加ROS產(chǎn)生,增加Fas、Fas相關(guān)死亡死亡域(Fas-associated death domain,F(xiàn)ADD)及FasL表達,促進死亡誘導信號復合物(death- inducing signaling complex,DISC)形成,在人白血病HL-60細胞系中誘導凋亡,并伴隨有MMP降低,細胞色素C釋放,以及caspases-8、caspases-9、caspases-6和caspases-3的激活,及其底物PARP的裂解[19]。
丙酮酸激酶M2(Pyruvate kinase M2,PKM2)在各種腫瘤細胞中往往呈現(xiàn)非正常的高表達狀態(tài),并促進腫瘤生存。Res可通過降低PKM2表達水平,來增加(ER stress)蛋白及線粒體分裂蛋白(mitochondrial fission proteins)的表達,抑制腫瘤細胞的活性,降低融合蛋白(fusion proteins)的水平。這種現(xiàn)象可被人為地高表達PKM2所逆轉(zhuǎn)。而實驗中,隨著Res的干預microRNA-326 (miR-326)表達升高,若予miR-326模擬物干預則能降低PKM2水平,且促進ER stress及線粒體分裂的恢復。因此,miR-326/PKM2調(diào)節(jié)的ER stress和線粒體功能紊亂可能參與了Res誘導的腫瘤細胞凋亡[20]。
此外,CSTMP,一種TMP與Res衍生物的合成制劑,可以顯著誘導人骨髓瘤細胞系RPMI8226凋亡,也是通過增加ER stress相關(guān)蛋白如CHOP、GRP78、GRP94、裂解的caspase-12等表達,提高相關(guān)ER stress信號轉(zhuǎn)導因子PERK- eIF2α、IRE1α和ATF6活性而達成的。若通過siRNA抑制CHOP,就能顯著抑制CSTMP誘導的凋亡,提示CSTMP可能是通過CHOP依賴的ER stress途徑誘導線粒體功能紊亂及凋亡的[21]。
有研究認為,下調(diào)Notch-1抑制腫瘤細胞生長、侵襲和轉(zhuǎn)移,此效應可能與激活Akt-mTOR和NF-κB信號通路有關(guān)[22,23]。而Res可誘導功能性的Notch1蛋白表達,并通過轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)激活相關(guān)通路。在兩種甲狀腺未分化癌(anaplastic thyroid carcinoma,ATC)細胞系HTh7和8505C中,Res干預均可通過S期阻滯及誘導凋亡抑制其增殖,而且Res干預促進甲狀腺特有的基因包括TTF1、TTF2、Pax8以及鈉碘同向轉(zhuǎn)運體(sodium iodide symporter,NIS)的表達上調(diào);通過siRNA靜默Notch1后,則可導致Res誘導的NIS表達反向降低。說明Res抑制ATC細胞生長及促進其再分化依賴于Notch1信號的激活[24]。
綜上所述,白藜蘆醇誘導腫瘤細胞凋亡的機制主要通過:(1)增加ROS含量,啟動內(nèi)源性凋亡信號;(2)參與對MAPK家族ERK、p38和JNK蛋白激酶的調(diào)節(jié);(3)上調(diào)PPARγ水平;(4)抑制AKT/mTOR信號通路;(5)激活AKT介導的轉(zhuǎn)錄因子FoxO3a;(6)下調(diào)NF-κB活性;(7)抑制JAK/STAT通路;(8)激活Fas調(diào)節(jié)的凋亡途徑;(9)調(diào)節(jié)ER stress;(10)調(diào)節(jié)Notch1信號通路等途徑而達成,其作用靶點及調(diào)節(jié)機制十分多樣,作用于多種不同的腫瘤細胞也顯示了較好的促凋亡效果,研究前景十廣闊。
但目前總的來說,在細胞研究中的報道較多而動物及人體實驗的報道較少,可能是由于白藜蘆醇的光敏感性及代謝不穩(wěn)定性限制了其充分利用[10]。盡管報道中也有白藜蘆醇的同源合成物的研究報道,但是其光敏感性是否有所改善,其穩(wěn)定性和干預作用是否能夠得到充分保存甚至是有所提高,目前未有報道的。另外,能否通過一些生物合成或修飾,提高其穩(wěn)定性及干預效果,也是今后需要深入研究的課題。另外,從不同植物中提取的白藜蘆醇含量是否穩(wěn)定,哪些植物可以為今后提供充分的藥源,這些問題也可能是今后需要進一步研究和解決的。
1 Francesco A,Monica M,Mochael S.Mitochondria and reactive oxygen species.Hypertension,2009,53:885-892.
2 Gibellini L,Pinti M,Nasi M,et al.Interfering with ROS metabolism in cancer cells:the potential role of quercetin.cancers,2010,2:1288-1311.
3 Lucas IK,Kolodziej H.Trans-resveratrol induces apoptosis through ROS- triggered mitochondria-dependent pathways in A549 human lung adenocarcinoma epithelial cells.Planta Med,2015,81:1038-1044.
4 Dong J,Guo H,Chen Y.Pterostilbene induces apoptosis through caspase activation in ovarian cancer cells.Eur J Gynaecol Oncol,2016,37:342-347.
5 Xie B,Xu Z,Hu L,et al.Pterostilbene inhibits human multiple myeloma cells via ERK1/2 and JNK pathway in vitro and in vivo.Int J Mol Sci,2016,17:E1927.
6 Kong Y,Chen G,Xu Z,et al.Pterostilbene induces apoptosis and cell cycle arrest in diffuse large B-cell lymphoma cells.Sci Rep,2016,6:37417.
7 Wu XP,Xiong M,Xu CS,et al.Resveratrol induces apoptosis of human chronic myelogenous leukemia cells in vitro through p38 and JNK-regulated H2AX phosphorylation.Acta Pharmacol Sin,2015,36:353-361.
8 Aires V,Brassart B,Carlier A,et al.A role for peroxisome proliferator-activated receptor gamma in resveratrol - induced colon cancer cell apoptosis.Mol Nutr Food Res,2014,58:1785-1794.
9 Nikhil K,Sharan S,Singh AK,et al.Anticancer activities of pterostilbene- isothiocyanate conjugate in breast cancer cells:involvement of PPARγ.P LoS One,2014,9:e104592.
10 Kim DH,Kim MJ,Sung B,et al.Resveratrol analogue,HS-1793,induces apoptotic cell death and cell cycle arrest through downregulation of AKT in human colon cancer cells.Oncol Rep,2017,37:281-288.
11 Taniguchi T,Iizumi Y,Watanabe M,et al.Resveratrol directly targets DDX5 resulting in suppression of the mTORC1 pathway in prostate cancer.Cell Death Dis,2016,7:e2211.
12 Zhou C,Ding J,Wu Y.Resveratrol induces apoptosis of bladder cancer cells via miR21 regulation of the Akt/Bcl2 signaling pathway.Mol Med Rep,2014,9:1467-1473.
13 Liu MH,Lin XL,Li J,et al.Resveratrol induces apoptosis through modulation of the Akt/FoxO3a/Bim pathway in HepG2 cells.Mol Med Rep,2016,13:1689-1694.
14 Buhrmann C,Shayan P,Kraehe P,et al.Resveratrol induces chemosensitization to 5-fluorouracil through up-regulation of intercellular junctions,Epithelial-to- mesenchymal transition and apoptosis in colorectal cancer.Biochem Pharmacol,2015,98:51-68.
15 Karthikeyan S,Hoti SL,Prasad NR.Resveratrol loaded gelatin nanoparticles synergistically inhibits cell cycle progression and constitutive NF-kappaB activation,and induces apoptosis in non-small cell lung cancer cells.Biomed Pharmacother,2015,70:274-282.
16 Trung LQ,Espinoza JL,An DT,et al.Resveratrol selectively induces apoptosis in malignant cells with the JAK2V617F mutation by inhibiting the JAK2 pathway.Mol Nutr Food Res,2015,59:2143-2154.
17 Quoc Trung L1,Espinoza JL,Takami A,et al.Resveratrol induces cell cycle arrest and apoptosis in malignant NK cells via JAK2/STAT3 pathway inhibition.P Lo S One,2013,8:e55183.
18 Lee YJ,Lee YJ,Lee SH.Resveratrol and clofarabine induces a preferential apoptosis- activating effect on malignant mesothelioma cells by Mcl-1 down-regulation and caspase-3 activation.BMB Rep,2015,48:166-71.
19 Park EY,Kim JI,Leem DG,et al.Resveratrol analogue (E)-8-acetoxy-2-[2-(3,4-diacetoxyphenyl)ethenyl]- quinazoline induces apoptosis via Fas-mediated pathway in HL-60 human leukemia cells.Oncol Rep,2016,36:3577-3587.
20 Wu H,Wang Y,Wu C,et al.Resveratrol induces cancer cell apoptosis through miR-326/PKM2-mediated ER stress and mitochondrial fission.J Agric Food Chem,2016,64:9356-9367.
21 Sun X,Liao W,Wang J,et al.CSTMP induces apoptosis and mitochondrial dysfunction in human myeloma RPMI8226 cells via CHOP- dependent endoplasmic reticulum stress.Biomed Pharmacother,2016,83:776-784.
22 Zhao N,Guo Y,Zhang M,et al.Akt-mTOR signaling is involved in Notch-1-mediated glioma cell survival and proliferation Oncol Rep,2010,23:1443-1447.
23 Wang Z,Li Y,Banerjee S,et al.Down-regulation of Notch-1 and Jagged-1 inhibits prostate cancer cell growth,migration and invasion,and induces apoptosis via inactivation of Akt- mTOR and NF-kappaB signaling pathways.J Cell Biochem,2010,109:726-736.
24 Yu XM,Jaskula-Sztul R,Ahmed K,et al.Resveratrol induces differentiation markers expression in anaplastic thyroid carcinoma via activation of Notch1 signaling and suppresses cell growth.Mol Cancer Ther,2013,12:1276-1287.
10.3969/j.issn.1002-7386.2017.11.037
100053 北京市,中國中醫(yī)科學醫(yī)院廣安門醫(yī)院血液科
顧恪波,100053 北京市,中國中醫(yī)科學醫(yī)院廣安門醫(yī)院;
E-mail:gkbo74@163.com
R 917.7
A
1002-7386(2017)11-1725-04
2017-02-21)