陶昱 喻金鳳 陳軍 余勇

從生物學的角度來看，要想實現(xiàn)良好的牙周組織再生需要2 個關鍵因素：合適的種子細胞和有利的局部微環(huán)境。1992 年Wise教授[1]首次發(fā)現(xiàn)人牙囊細胞(human dental follicle stem cells, HDFSCs)，大量研究證實HDFSCs可向成骨、成軟骨、成脂、成神經方向分化[2-4]，并在適當條件誘導下，HDFSCs可以在體內外形成牙周膜樣組織、牙髓牙本質復合體及骨組織[5-6]。經典牙齒發(fā)育理論認為，HDFSCs是成牙骨質細胞、牙周膜細胞和成骨細胞的前體細胞，其分別形成牙骨質、牙周膜和牙槽骨，這三者便構成完整的牙周組織[7-8]。同時，有研究證明HDFSCs比牙周膜細胞有更好的分化潛能，所以HDFSCs在牙周組織再生過程中具有巨大的應用前景[9]。在牙齒發(fā)育過程中，牙周膜的形成是由包繞成釉器的牙囊和發(fā)育中的牙髓共同作用的結果[10]。為了盡可能的模擬牙周膜形成過程中的局部微環(huán)境，本實驗采用牙髓細胞條件培養(yǎng)液誘導HDFSCs，探討人牙髓細胞條件培養(yǎng)液(human dental pulp stem cells- conditioned medium，HDPSCs- CM)對HDFSCs成骨分化的作用，以期為牙周組織再生提供一個新的思路。

1 材料與方法

1.1 主要實驗儀器及試劑

分選型流式細胞儀(BD influx,美國)；激光共聚焦顯微鏡(TCS.SP8,Leica，德國);兔抗人波形絲蛋白抗體(Immuno Way,美國)；鼠抗人角蛋白(CK- 14)抗體(Santa Cruz,美國)；鼠抗人CD34、CD73、CD105及Strol- 1抗體(BD Biosciences,美國)；CCK- 8試劑盒(Dojindo,日本)； RNA抽提試劑盒、逆轉錄試劑盒及Syber Green熒光定量PCR檢測試劑盒(Takara,日本)。

1.2 HDFSCs的分離、純化及培養(yǎng)

HDFSCs來源于因正畸需要拔除的第三磨牙患者，患者簽知情同意書，且年齡在18～25 歲之間、無其他系統(tǒng)疾病,牙齒健康、處于牙根發(fā)育階段。取出牙囊組織后采用組織塊-消化聯(lián)合法分離培養(yǎng) HDFSCs并用單克隆細胞培養(yǎng)方法純化，第3代細胞用于后續(xù)試驗。采用免疫熒光方法(波形蛋白和角化蛋白CK- 14)對分離細胞進行來源鑒定。

1.3 HDPSCs- CM的制備

HDPSCs來源同HDFSCs。取得的牙齒在無菌條件下劈開牙冠和牙根，取出牙髓組織，含2%雙抗的PBS反復沖洗。其余步驟同HDFSCs。每24 h換液1 次，直至細胞融合約80%時，收集培養(yǎng)液，4 ℃ 5 000 r/min離心10 min，收集上清液，0.22 μm過濾器過濾，加入等量新鮮的含10%FBS的DMEM/F12 1∶1培養(yǎng)液制成HDPSCs條件培養(yǎng)液(HDPSCs- CM)，-80 ℃中儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.4 流式細胞術分析

根據(jù)抗體說明書，取第3代HDFSCs分別與抗體CD34、CD73、CD105和Stro- 1室溫下避光孵育45 min，PBS洗滌重懸后，上機檢測分析。

1.5 HDFSCs克隆形成能力檢測

取第3代HDFSCs，細胞計數(shù)，以1×102的密度接種到100 mm培養(yǎng)皿中，輕輕晃蕩，使細胞均勻分布在培養(yǎng)皿中，常規(guī)換液，待單個細胞增長到50 個左右時，按照結晶紫染色說明書進行細胞染色，體式顯微鏡下觀察、拍照。

1.6 HDPSCs- CM誘導HDFSCs

取第3代HDFSCs隨機分為誘導組和對照組。誘導組加入HDPSCs- CM，對照組加入含10%FBS的DMEM/F12 1∶1培養(yǎng)液，2 組均采用半換液1 次/2 d，倒置相差顯微鏡觀察細胞生長狀況及形態(tài)學改變。

1.7 CCK- 8檢測HDFSCs增殖活性變化

取第3代對數(shù)生長期HDFSCs，以2×103/孔的密度接種到96 孔板中，每組設6 個復孔，24 h后，按分組情況加入HDPSCs- CM或對照組培養(yǎng)液，采用CCK- 8進行測定，連續(xù)檢測7 d。

1.8 成骨誘導培養(yǎng)

取第3代對數(shù)生長期HDFSCs，接種于6孔板，密度為2.5×104/孔，按分組情況分別加入HDPSCs- CM或對照組培養(yǎng)液以及成骨誘導培養(yǎng)基。經過7 d和21 d后分別進行ALP染色和茜素紅S染色。

1.9 qRT- PCR檢測HDFSCs mRNA的表達差異

取第3代HDFSCs以5×104/孔接種到6孔板中，HDPSCs- CM誘導7 d后，根據(jù)TaKaRa試劑盒說明書提取總RNA，并進行逆轉錄，逆轉錄所得cDNA進行qRT- PCR檢測，均采用20 μl反應體系，引物見表 1。實驗重復3 次。

表 1 引物信息

1.10 統(tǒng)計學分析

2 結 果

2.1 HDFSCs的分離、培養(yǎng)、鑒定

與以往研究一致[1-3]，與其他間充質來源干細胞一樣，HDFSCs具有極強的克隆形成能力(圖 1A)，結晶紫染色呈藍紫色(圖 1B)。免疫熒光結果：波形蛋白陽性著色(圖 1C)，提示細胞是間充質來源；CK- 14陰性著色(圖 1D)，提示分離的HDFSCs無上皮來源。

2.2 流式細胞術結果

結果表明：間充質干細胞表面標志物STRO- 1及CD105陽性，陽性率分別為12.01%和97.02%；淋巴細胞標志物CD73陽性，陽性率為98.70%，造血干細胞表面標志物CD34陰性，只有0.69%(圖 2)。

A： 克隆形成； B： 結晶紫染色； C： 波形蛋白表達陽性； D： CK- 14表達陰性

圖 2 流式細胞術鑒定HDFSCs表型

2.3 誘導后HDFSCs形態(tài)學改變

對照組中HDFSCs始終保持長梭形形態(tài)，即使連續(xù)培養(yǎng)2 周，其形態(tài)也未發(fā)生明顯變化(圖 3)；而在實驗組中，經HDPSCs- CM誘導2 周后，HDFSCs逐漸喪失其最初的長梭形形態(tài)，呈現(xiàn)出成骨細胞或成牙骨質細胞的短梭形或圓形(圖 3)。隨著培養(yǎng)時間延長，短梭形或圓形細胞的比例會明顯增加。

2.4 誘導后HDFSCs活性的改變

CCK- 8結果示誘導組和對照組的生長曲線趨勢均呈“S”型。除第1天，誘導組在每個時間點上HDFSCs活性均低于對照組(P<0.05或P<0.01)(圖 4)。

2.5 誘導后HDFCS成骨分化能力的改變

在ALP染色中，誘導組有大量的藍紫色陽性染色，而對照組則顏色較淡。茜素紅S染色的結果顯示誘導組的紅色礦化結節(jié)比對照組染色深而聚集，而對照組礦化結節(jié)色淡且較分散(圖 5)。

圖 4 CCK- 8檢測HDFSCs活性

圖 5 成骨相關檢測

圖 6 qRT- PCR檢測HDFSCs基因表達

2.6 誘導后HDFSCs基因表達的變化

qRT- PCR檢測結果顯示：經HDPSCs- CM誘導1周后，誘導組和對照組HDFSCs均表達POSTN、Col- Ⅰ、ALP、BSP和OPN，誘導組相關基因表達均明顯高于對照組(P<0.05或P<0.01)(圖 6)。

3 討 論

干細胞的臨床應用前景使得干細胞的研究成為21世紀最熱門的研究之一。HDFSCs具有與間充質干細胞相似的特征，并且在體外具有向多種細胞系分化的潛能[2-6]。因此，HDFSCs是細胞治療和組織工程很好的種子細胞。有研究表明，局部微環(huán)境在人類多能干細胞的增殖、分化過程中發(fā)揮著重要作用[11]。其中局部微環(huán)境中產生的生長因子起著主要作用。傳統(tǒng)方法中，僅用某些生長因子來模擬其微環(huán)境是很難實現(xiàn)完全模擬的，因為這不可能提供全部所需的生物因子。因此，本實驗采用HDPSCs- CM誘導HDFSCs的方式來建立牙周膜再生的微環(huán)境，為HDFSCs成骨分化提供合適的細胞信號網狀通路。

研究表明牙周膜干細胞來源于HDFSCs，表現(xiàn)為類似于外胚間充質來源干細胞的長梭形形態(tài)[8,12]。本實驗結果證實HDFSCs來源于外胚間充質，且具有干細胞的特征。在HDPSCs- CM誘導下，HDFSCs還可以向類似于成牙骨質或成骨細胞分化，這對牙周再生的實現(xiàn)具有重要的意義，并且將來有望建立成牙骨質或成骨細胞系。盡管僅僅靠細胞形態(tài)學的改變并不能判斷細胞發(fā)生分化，但在對照組中，并沒有發(fā)現(xiàn)類似的成牙骨質或成骨細胞形態(tài)的改變。

細胞增殖活性測定結果顯示：HDPSCs- CM誘導后HDFSCs增殖活性明顯降低，提示HDPSCs- CM促進HDFSCs分化的同時抑制其增殖活性。這種現(xiàn)象與由于參與這兩個過程的雙功能調節(jié)的存在使得增殖和分化呈負性相關的理念是一致的[13]。

ALP作為成骨細胞分化和功能成熟的早期標志物，在礦化過程中有著關鍵作用。HDPSCs- CM誘導組的ALP染色較對照組明顯。此外鈣鹽沉積是成骨分化晚期的標志物，通過茜素紅S染色發(fā)現(xiàn)：相比對照組，HDPSCs- CM誘導組的紅色鈣鹽結節(jié)明顯。由此說明HDPSCs- CM能促進HDFSCs向成骨方向分化。

本實驗還檢測了牙周膜相關基因(POSTN、Col- Ⅰ)、成骨相關基因(ALP、BSP、OPN)的表達情況，后者通常被認為是礦化相關基因，特別是牙源性硬組織[14-15]。結果顯示，與對照組相比，誘導組中Col- Ⅰ、ALP、BSP和OPN表達明顯增強。提示HDPSCs- CM可以誘導HDFSCs成牙骨質或成骨分化。POSTN作為牙周膜的特異性標記基因[16]，在本實驗結果中其表達也明顯增強，說明經HDPSCs- CM誘導的HDFSCs確實獲得了牙周膜干細胞的一些特征。

綜上所述，以上實驗結果表明經HDPSCs- CM誘導的HDFSCs在體外確實有潛能獲取牙周膜干細胞的一些特征，同時還能向成牙骨質或成骨方向分化。HDPSCs- CM提供了其必需的生長因子、生物分子和必要的信號網狀通路。然而，關于HDPSCs- CM促進HDFSCs成骨分化的內在機制還需要進一步的研究。