国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的影響因素

2017-07-10 13:00陳素紅鄒璞廖景平
安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年18期

陳素紅 鄒璞 廖景平

摘要 [目的]探討藍(lán)豬耳花粉管的最佳培養(yǎng)條件,為建立植物離體受精體系奠定基礎(chǔ)。[方法]采用離體培養(yǎng)技術(shù),研究了藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)和花粉管體外生長(zhǎng)的主要影響因素。[結(jié)果]藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)及花粉管生長(zhǎng)的最佳培養(yǎng)基為:5.00%(V/V)蔗糖、0.01%(V/V)氯化鈣、0.01%(V/V)硼酸和0.01%(V/V)磷酸二氫鉀,其培養(yǎng)基的滲透壓主要靠蔗糖調(diào)節(jié)。[結(jié)論]硼是藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)中必不可少的微量元素;鈣對(duì)花粉管生長(zhǎng)起著非常重要的調(diào)節(jié)作用,并推測(cè)鈣離子主要是通過(guò)電壓依賴(lài)型鈣通道進(jìn)入花粉管內(nèi)部。

關(guān)鍵詞 藍(lán)豬耳;花粉萌發(fā);花粉管生長(zhǎng);影響因素

中圖分類(lèi)號(hào) Q942.5 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 0517-6611(2017)18-0011-04

Abstract [Objective] To explore the optimum culture conditions for the pollen tube of Torenia fournieri. [Method] Using the techniques of in vitro culture, the main influencing factors of pollen germination and pollen tubes growth in vitro of T. fournieri were studied. [Result] The suitable culture medium for pollen germination and pollen tubes growth in vitro of T. fournieri was as follows:5% (V/V) sucrose, 0.01% (V/V) CaCl2, 0.01% (V/V) boric acid and 0.01% (V/V) KH2PO4. The osmotic pressure of the medium was mainly regulated by sucrose. [Conclusion] Boron is an essential microelement in pollen germination of T. fournieri. Calcium plays an important role in pollen tubes growth. It is deduced that voltagedependent Ca2+ channels may be a main calcium influx pathway through which Ca2+ entered into pollen tube.

Key words Torenia fournieri;Pollen germination;Pollen tube growth;Influencing factors

花粉管在植物受精過(guò)程中起著傳遞、運(yùn)輸雄配子到達(dá)受精作用靶細(xì)胞區(qū)的作用,因此花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)是高等植物有性生殖過(guò)程的重要生理環(huán)節(jié)?;ǚ酃茏陨泶嬖凇白晕医M織調(diào)控網(wǎng)絡(luò)”,使之具有極性生長(zhǎng)特性[1]。因此,花粉管常被作為植物細(xì)胞運(yùn)動(dòng)、定向生長(zhǎng)、頂端或極性生長(zhǎng)、胞內(nèi)外信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)及細(xì)胞骨架變化等研究的模式體系。

Ca2+ 是花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的核心調(diào)控因子,在囊泡的運(yùn)輸和融合、細(xì)胞骨架的組裝、細(xì)胞壁性狀等方面起調(diào)節(jié)作用[2]。關(guān)于花粉離體萌發(fā)的研究表明,花粉水合后萌發(fā)孔或萌發(fā)溝部位的鈣離子濃度升高,從而啟動(dòng)并促進(jìn)花粉萌發(fā)[3-5]?;ǚ酃艿纳L(zhǎng)對(duì)鈣的需求具有濃度效應(yīng),只有適宜的外源鈣濃度才能促進(jìn)花粉管生長(zhǎng),鈣濃度過(guò)高或過(guò)低均抑制花粉管生長(zhǎng)。在花粉萌發(fā)孔和花粉管中存在從頂端至基部的鈣梯度[6-7],尖端高濃度的鈣是胞外鈣經(jīng)活化的鈣通道內(nèi)流產(chǎn)生的,消除鈣梯度會(huì)抑制花粉管生長(zhǎng)[8]。鈣通道和鈣離子梯度等共同控制著花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)及其定向性。

硼對(duì)花粉萌發(fā)和花粉管的生長(zhǎng)亦起促進(jìn)作用。細(xì)胞中大部分的硼位于細(xì)胞壁上,Blevins等[9]研究發(fā)現(xiàn)硼與果膠類(lèi)物質(zhì)GR-Ⅱ(鼠李半乳糖醛酸-Ⅱ)結(jié)合使酸性果膠變成酯化果膠。在花粉管中,酯化果膠集中在花粉管頂端,使頂端存在一定的延展性;酸性果膠遍及整個(gè)花粉管,使細(xì)胞壁有足夠的機(jī)械強(qiáng)度[10]。硼酸可防止酚類(lèi)物質(zhì)的積累,促進(jìn)花粉管的生長(zhǎng)[11]。

藍(lán)豬耳是玄參科(Scrophulariaceae)蝴蝶草屬(Torenia L.)植物,具有半裸露的胚囊結(jié)構(gòu)。研究者利用其獨(dú)特的胚囊特征,建立了藍(lán)豬耳花粉管定向生長(zhǎng)至胚囊的離體試驗(yàn)技術(shù),首次驗(yàn)證了受精過(guò)程中助細(xì)胞是引導(dǎo)花粉管定向進(jìn)入胚囊的靶位點(diǎn)[12]。創(chuàng)建離體受精體系是研究高等植物有性生殖的熱點(diǎn)領(lǐng)域。藍(lán)豬耳是被子植物受精生物學(xué)研究的模式植物,研究藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)和花粉管離體生長(zhǎng)的影響因素是建立藍(lán)豬耳離體受精體系的前提。筆者研究鈣和硼對(duì)藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)和花粉管離體生長(zhǎng)的影響,探索花粉管的最佳培養(yǎng)條件。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

藍(lán)豬耳種植在中國(guó)科學(xué)院華南植物園,每年4—12月開(kāi)花,6—10月為盛花期。藍(lán)豬耳是二強(qiáng)雄蕊,兩長(zhǎng)花絲上的花藥在柱頭上方,自花、異花授粉都能受精、結(jié)實(shí)。當(dāng)開(kāi)花后2 d,花藥有開(kāi)裂,取柱頭上的兩枚花藥,用于花粉離體萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)試驗(yàn)。

1.2 試驗(yàn)方法

花粉萌發(fā)的培養(yǎng)液基本成分包括:磷酸二氫鉀、氯化鈣、硼酸和蔗糖?;ǚ酃芘囵B(yǎng)基配制方法如下:①蔗糖濃度梯度設(shè)置為3%、5%、7%、10%和15%(V/V),磷酸二氫鉀、氯化鈣和硼酸濃度均為0.01%(V/V),確定花粉萌發(fā)率最高時(shí)蔗糖的濃度(即蔗糖最佳濃度);②當(dāng)蔗糖為最佳濃度,磷酸二氫鉀濃度為0.01%(V/V)時(shí),Ca2+ 和H3BO3濃度梯度分別為0、0.001%、0.010%和0.100%(V/V)。

在培養(yǎng)皿中用凡士林制出若干個(gè)小室,將花粉萌發(fā)培養(yǎng)液放于其中,用微針從花藥中挑取花粉灑入培養(yǎng)液中,花粉要均勻遍及液體表面,然后將培養(yǎng)皿置于黑暗、22 ℃恒溫條件下萌發(fā)。分別在花粉培養(yǎng)1和3 h,取出培養(yǎng)皿在倒置顯微鏡下觀察,每1微室取6個(gè)視野,每個(gè)視野的花粉粒達(dá)30粒以上;每種培養(yǎng)液重復(fù)3次,取萌發(fā)率平均值?;ǚ勖劝l(fā)以花粉管長(zhǎng)度大于或等于萌發(fā)孔直徑為萌發(fā)標(biāo)準(zhǔn)。

硝苯吡啶(Nif)、Al3+、La3+為鈣通道抑制劑。在上述花粉萌發(fā)最好的培養(yǎng)液中加入有機(jī)抑制劑硝苯吡啶和無(wú)機(jī)抑制劑氯化鋁、氯化鑭,在倒置顯微鏡下觀察不同濃度不同鈣通道抑制劑培養(yǎng)液中花粉管萌發(fā)情況,統(tǒng)計(jì)萌發(fā)率和花粉管長(zhǎng)度。同時(shí),對(duì)50 μmol/L硝苯吡啶培養(yǎng)液中生長(zhǎng)3 h的花粉管拍照。

2 結(jié)果與分析

2.1 藍(lán)豬耳花粉的離體萌發(fā)

藍(lán)豬耳的花粉需要在含少量糖的培養(yǎng)基上才能較好的萌發(fā)?;ǚ叟囵B(yǎng)1 h時(shí),5個(gè)濃度的蔗糖培養(yǎng)液中花粉萌發(fā)率都不高,花粉正處于剛開(kāi)始萌發(fā)階段,彼此之間萌發(fā)率相差不大;花粉培養(yǎng)3 h時(shí),在5%的蔗糖培養(yǎng)液中,花粉萌發(fā)率達(dá)最高,而在3%和7%的蔗糖培養(yǎng)液中,萌發(fā)率也比較高,與5%的相差不大,隨著蔗糖濃度的升高,萌發(fā)率呈下降趨勢(shì)(表1)。這表明蔗糖濃度5%為藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)的最佳濃度。

確定最佳蔗糖濃度后,改變鈣和硼的濃度研究二者對(duì)花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的影響。

當(dāng)藍(lán)豬耳花粉離體培養(yǎng)1 h,在無(wú)鈣條件下,隨硼濃度的升高,花粉萌發(fā)率逐漸升高,當(dāng)硼濃度為0.010%時(shí),花粉萌發(fā)率達(dá)最高,然后隨硼濃度的繼續(xù)升高,花粉萌發(fā)率反而下降;在無(wú)硼條件下,改變鈣的濃度,花粉萌發(fā)率都很低;同時(shí),在無(wú)鈣無(wú)硼條件下,花粉萌發(fā)率相當(dāng)?shù)?。從花粉離體培養(yǎng)1 h的試驗(yàn)結(jié)果來(lái)看,在無(wú)鈣且硼酸濃度為0.010%時(shí),花粉萌發(fā)率最高,達(dá)40.8%(表2)。

當(dāng)藍(lán)豬耳花粉離體培養(yǎng)3 h,在無(wú)鈣條件下,當(dāng)硼濃度小于0.010%時(shí),隨著硼濃度的升高,花粉萌發(fā)率驟升,直到硼濃度為0.010%,萌發(fā)率達(dá)到最大值(86.0%),然后隨著硼濃度的繼續(xù)增加,萌發(fā)率開(kāi)始降低;在無(wú)硼條件下,雖然有鈣加入,但萌發(fā)率仍然不高,當(dāng)鈣濃度為0.001%時(shí),萌發(fā)率最高(37.3%),然而在無(wú)硼、無(wú)鈣條件下,花粉萌發(fā)率仍然很低,只有9.7%。同時(shí)改變鈣和硼的濃度,當(dāng)鈣和硼濃度均為0.010%時(shí),花粉萌發(fā)率最高,達(dá)91.7%(表3)。

以上結(jié)果表明,藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)時(shí)可不需要外源鈣,但高鈣會(huì)抑制花粉的萌發(fā);硼在花粉萌發(fā)時(shí)起重要的作用,是花粉萌發(fā)必不可少的微量元素。

2.2 鈣通道抑制劑對(duì)花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的影響

在含有鈣通道無(wú)機(jī)抑制劑(3價(jià)陽(yáng)離子)的培養(yǎng)基中,藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)率比對(duì)照稍低,花粉管長(zhǎng)度低于對(duì)照水平(圖1)。抑制劑對(duì)花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的抑制效果與其濃度密切相關(guān),分別加入10、20、50、100 μmol/L 的氯化鋁和氯化鑭處理后,花粉萌發(fā)率受影響不大,在體外培養(yǎng)3 h,萌發(fā)率在70%左右。然而,鈣通道無(wú)機(jī)抑制劑對(duì)花粉管生長(zhǎng)的抑制效果較明顯,濃度越高,培養(yǎng)3 h的花粉管長(zhǎng)度就越短;將氯化鋁和氯化鑭2種抑制劑進(jìn)行比較,鋁抑制花粉管生長(zhǎng)的效果比鑭明顯。

在含有鈣通道有機(jī)抑制劑硝苯吡啶的培養(yǎng)基中,藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)率低于對(duì)照,花粉管長(zhǎng)度明顯低于對(duì)照水平(圖2)。抑制劑對(duì)花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)的抑制效果與其濃度密切相關(guān),分別加入1、10、50、100 μmol/L 的硝苯吡啶處理后,花粉萌發(fā)率雖然比對(duì)照的降低較多,但在體外培養(yǎng)3 h,萌發(fā)率仍達(dá)60%以上。然而,鈣通道有機(jī)抑制劑對(duì)花粉管生長(zhǎng)的抑制效果很明顯,當(dāng)加入1 μmol/L 的硝苯吡啶時(shí),培養(yǎng)3 h的花粉管長(zhǎng)度只有對(duì)照的1/3。硝苯吡啶濃度越高,花粉管長(zhǎng)度越短。當(dāng)硝苯吡啶濃度為100 μmol/L時(shí),花粉管長(zhǎng)度僅有(29.25±10.97)μm。這表明有機(jī)抑制劑對(duì)藍(lán)豬耳花粉管生長(zhǎng)的抑制作用最強(qiáng)。

2.3 硝苯吡啶對(duì)藍(lán)豬耳花粉管形態(tài)的影響

定時(shí)觀察花粉管的形態(tài),發(fā)現(xiàn)藍(lán)豬耳花粉管在適宜的培養(yǎng)液中形態(tài)正常。當(dāng)10 μmol/L硝苯吡啶處理時(shí),在抑制花粉管生長(zhǎng)的同時(shí),還導(dǎo)致花粉管形態(tài)異常。其形態(tài)異常主要表現(xiàn)為:萌發(fā)孔處破裂,溢出花粉內(nèi)含物;花粉管扭曲,螺旋生長(zhǎng);花粉管分枝生長(zhǎng),其中有的分叉出現(xiàn)在基部,有的在生長(zhǎng)一段時(shí)間后在頂部出現(xiàn)分叉(圖3)。

3 討論與結(jié)論

從花粉離體萌發(fā)所需培養(yǎng)基來(lái)看,不同植物對(duì)培養(yǎng)基成分的要求不同[13]。藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)的培養(yǎng)基需要恰當(dāng)平衡的鹽/糖、適宜的鈣和硼。目前,大量研究表明硼對(duì)花粉的萌發(fā)有促進(jìn)作用,硼作為Ca2+誘導(dǎo)劑引導(dǎo)胞外Ca2+進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),提高細(xì)胞內(nèi)的Ca2+濃度以促進(jìn)花粉萌發(fā),對(duì)花粉管的生長(zhǎng)發(fā)育有重要的影響[5]。在藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)中,硼的需求顯得格外重要,在無(wú)硼的培養(yǎng)基中花粉萌發(fā)率相當(dāng)?shù)停蝗欢?,外源鈣的影響顯得不甚明顯。一般認(rèn)為,花粉內(nèi)存在較多的鈣,而缺乏硼,因此萌發(fā)時(shí)胞外鈣對(duì)萌發(fā)率的影響不如硼顯著[14]。藍(lán)豬耳花粉中的鈣量足以滿(mǎn)足花粉萌發(fā),而硼則需要外援。雖然硼和鈣在花粉萌發(fā)中的作用被一致認(rèn)為是2個(gè)相當(dāng)獨(dú)立的過(guò)程,但是在藍(lán)豬耳花粉離體萌發(fā)試驗(yàn)中雙向調(diào)節(jié)硼和鈣的濃度,發(fā)現(xiàn)花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)所需的最佳鈣和硼濃度是一致的,表明二者是協(xié)同促進(jìn)花粉萌發(fā)。

鈣離子參與花粉管生長(zhǎng)過(guò)程中的許多調(diào)節(jié)過(guò)程,外源鈣濃度可能通過(guò)花粉管上的鈣通道調(diào)節(jié)花粉管內(nèi)的鈣動(dòng)態(tài)影響花粉管的生長(zhǎng),尤其是在花粉管的極性、頂端的定向生長(zhǎng)過(guò)程中,鈣過(guò)高,牽拉型的鈣通道受到傷害,致使花粉管生長(zhǎng)受到抑制[3,15]。筆者通過(guò)采用一些常用的鈣通道抑制劑處理花粉,觀察它們對(duì)花粉萌發(fā)率的影響不是很明顯,表明在藍(lán)豬耳花粉中存在足夠的鈣作用于花粉萌發(fā)過(guò)程。然而,花粉培養(yǎng)3 h后,觀察發(fā)現(xiàn)抑制劑對(duì)花粉管的生長(zhǎng)產(chǎn)生了強(qiáng)烈抑制作用。據(jù)此推測(cè),在藍(lán)豬耳花粉管生長(zhǎng)過(guò)程中,外援鈣主要通過(guò)對(duì)這些抑制劑敏感的鈣通道進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),由于這些抑制劑主要作用于電壓依賴(lài)的鈣通道,所以電壓依賴(lài)鈣通道很可能是花粉管生長(zhǎng)中從體外環(huán)境中吸收鈣離子的重要途徑。Véry等[16]在研究擬南芥根毛伸長(zhǎng)生長(zhǎng)過(guò)程中參與鈣離子內(nèi)流的鈣通道時(shí)指出,鈣離子是通過(guò)超級(jí)化激活的電壓依賴(lài)型鈣通道進(jìn)入根毛細(xì)胞內(nèi)部的。根毛的生長(zhǎng)與花粉管存在相似之處,因此推測(cè)在花粉管生長(zhǎng)的過(guò)程中,類(lèi)似的鈣通道很可能同樣發(fā)揮重要作用。該試驗(yàn)結(jié)果表明,鈣通道對(duì)2種無(wú)機(jī)抑制劑氯化鋁和氯化鑭較為敏感,尤其對(duì)L-型鈣通道抑制劑硝苯吡啶表現(xiàn)出更高的敏感性。因此,推測(cè)藍(lán)豬耳花粉管生長(zhǎng)過(guò)程中,參與鈣離子吸收的鈣通道可能和根毛的類(lèi)似。

該試驗(yàn)結(jié)果表明,藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)對(duì)培養(yǎng)基的滲透壓有特殊的要求,主要靠蔗糖來(lái)調(diào)節(jié)滲透壓;硼是藍(lán)豬耳花粉萌發(fā)中必不可少的微量元素;鈣對(duì)花粉管生長(zhǎng)起著非常重要的調(diào)節(jié)作用,并推測(cè)鈣離子主要是通過(guò)電壓依賴(lài)型鈣通道進(jìn)入花粉管內(nèi)部。

參考文獻(xiàn)

[1] QIN Y,YANG Z B.Rapid tip growth:Insights from pollen tubes [J].Seminars in cell & developmental biology,2011,22(8):816-824.

[2] STEINHORST L,KUDLA J.Calciuma central regulator of pollen germination and tube growth [J].Biochimica et biophys actamolecular cell research,2013,1833(7):1573-1581.

[3] FEIJ J A,MALH R,OBERMEYER G.Ion dynamics and its possible role during in vitro pollen germination and tube growth[J].Protoplasma,1995,187(1):155-167.

[4] 尚忠林,王永飛,錢(qián)洪,等.百合花粉細(xì)胞中鈣離子的熒光測(cè)定法[J].植物生理學(xué)通訊,2001,37(4):319-322.

[5] 徐國(guó)華,張紹鈴,張超英,等.梨自花與異花授粉后花粉胞內(nèi)游離Ca2+分布的變化[J].植物生理與分子生物學(xué)學(xué)報(bào),2003,29(2):97-103.

[6] HOLDAWAYCLARKE T L,F(xiàn)EIJ J A,HACKETT G R,et al.Pollen tube growth and the intracellular cytosolic calcium gradient oscillate in phase while extracellular calcium influx is delayed [J].Plant cell,1997,9(11):1999-2010.

[7] IWANO M,SHIBA H,MIWA T,et al.Ca2+ dynamics in a pollen grain and papilla cell during pollination of Arabidopsis[J].Plant physiology,2004,136(3):3562-3571.

[8] PIESON E S,MILLER D D,CALLAHAM D A,et al.Tiplocalized calcium entry fluctuates during pollen tube growth [J].Dev Biol,1996,174(1):160-173.

[9] BLEVINS D G,LUKASZEWSKI K M.Boron in plant structure and function [J].Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,1998,49:481-500.

[10] LI Y Q,CHEN F,LINSKENS H F,et al.Distribution of unesterified and esterified pectins in cell walls of pollen tubes of flowering plants [J].Sex Plant Reprod,1994,7(3):145-152.

[11] 楊曉冬,孫素琴,李一勤.硼缺乏導(dǎo)致花粉管細(xì)胞壁多糖分布的改變[J].植物學(xué)報(bào),1999,41(11):1169-1176.

[12] HIGASHIYAMA T,YABE S,SASAKI N,et al.Pollen tube attraction by the synergid cell [J].Science,2001,293(5534):1480-1483.

[13] 胡適宜.被子植物生殖生物學(xué)[M].北京:高等教育出版社,2005:46,106,143-148.

[14] 沈捷,祝晨辰,徐進(jìn),等.硼、鈣離子對(duì)杉木花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)影響[J].林業(yè)科技開(kāi)發(fā),2010,24(6):57-59.

[15] MALH R,TREWAVAS A J.Localized apical increases of cytosolic free calcium contro pollen tube orientation [J].Plant cell,1996,8(11):1935-1949.

[16] VRY A A,DAVIS J M.Hyperpolarizationactivated calcium channels at the tip of Arabidoosis root hairs [J].Proc Natl Acad Sci USA,2000,97(17):9801-9806.