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外源茉莉酸甲酯對靈芝多糖及靈芝酸含量的影響

2017-08-09 03:08辛燕花張鐵丹楊龍龍徐瀾梁彬孟悅
關鍵詞:菌絲體甲酯靈芝

辛燕花,張鐵丹,楊龍龍,徐瀾,梁彬,孟悅

(1.忻州師范學院,山西 忻州 034000; 2.廣州萬物生健康產業(yè)有限公司,廣東 廣州 510642)

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外源茉莉酸甲酯對靈芝多糖及靈芝酸含量的影響

辛燕花1,2,張鐵丹2,楊龍龍1,徐瀾1,梁彬1,孟悅1

(1.忻州師范學院,山西 忻州 034000; 2.廣州萬物生健康產業(yè)有限公司,廣東 廣州 510642)

[目的]探尋外源茉莉酸甲酯對靈芝多糖及靈芝酸含量的影響。[方法]用含有不同濃度的茉莉酸甲酯在不同的發(fā)酵時間對液體培養(yǎng)基中的靈芝進行誘導培養(yǎng)。[結果]在發(fā)酵培養(yǎng)的第4天,添加外源茉莉酸甲酯濃度為50 μmol·L-1時,靈芝菌絲體和菌液中靈芝多糖含量最高,菌絲體中靈芝多糖含量為398.98 mg·g-1,是對照的1.83倍;菌液中的靈芝多糖含量為4.20 g·L-1,是對照的1.56倍。添加外源茉莉酸甲酯濃度為100μmol·L-1時,靈芝菌絲體及菌液中靈芝酸含量最多,靈芝菌絲體中靈芝酸為50.02 mg·g-1,是對照的1.93倍;菌液中靈芝酸含量為7.10 mg·L-1,是對照的2.21倍。[結論]說明外源茉莉酸甲酯能夠有效的促進靈芝多糖和靈芝酸的合成。

靈芝; 茉莉酸甲酯; 多糖; 靈芝酸

靈芝(Ganodermalucidum)又稱靈芝草、神芝、芝草、仙草、瑞草[1],在分類系統(tǒng)上是隸屬于真菌門(Eumycota),擔子菌亞門(Basidiomycotina)、層擔子菌綱(Hymenomycetes),無隔擔子菌亞綱(Holobasidiomycetidae),非褶菌目(Aphyllophorales),靈芝菌科(Ganodermataceae),靈芝屬(Ganoderma)[2]。靈芝在我國已有久遠的藥用歷史,始載于《神農本草經》,醫(yī)書上一直將其列為上品,稱其含有補中益氣、滋陰強壯、扶正固本、延年益壽等功效。靈芝是《中國藥典》收錄的一種中藥材,是食藥同源的一種真菌,靈芝中的多糖、三萜、核苷、生物堿、氨基酸多肽、微量元素等活性物質和營養(yǎng)成分是其藥效物質基礎,其中三萜化合物和多糖是靈芝最主要的兩大活性成分。靈芝酸是一種三萜類物質,目前分離得到100種左右,現代藥理研究發(fā)現靈芝酸有保肝、抗腫瘤、抗 HIV-1及HIV-1蛋白酶活性、抗組織胺釋放、抑制血管緊張素、抗氧化等作用[3~6]。靈芝多糖具有較強的免疫調節(jié)、抗氧化、抗腫瘤、抗衰老以及調節(jié)血糖等生理功能[7~10]。

研究表明,茉莉酸甲酯(methyljasmonate,MeJA)作為一種信號分子,可以誘導許多植物的生理反應[11,12],在植物中,茉莉酸甲酯可以誘導單萜類生物堿和類異戊二烯的生物合成,通過激活活性氧或者依賴于鈣離子的蛋白激酶等手段進行防御反應等[13~16],在真菌中,茉莉酸甲酯參與調節(jié)隱球菌和青霉菌的生長[16],并且有研究者發(fā)現茉莉酸甲酯可以調控大型真菌靈芝中的三萜類合成代謝途徑[17]。本試驗在不同的發(fā)酵時間對靈芝液體培養(yǎng)基中添加不同濃度的茉莉酸甲酯進行誘導培養(yǎng),探討外源茉莉酸甲酯對靈芝多糖及靈芝酸含量的影響,為靈芝多糖和靈芝酸的提取提供新的理論基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌種

靈芝購于福建省農科院研究所。

1.1.2 培養(yǎng)基和菌株生長條件

PDA液體培養(yǎng)基:馬鈴薯(去皮)200 g,磷酸氫二鉀3 g,硫酸鎂2.0 g,葡萄糖20 g,25 ℃,180 r·min-1培養(yǎng)7 d。

1.1.3 主要試劑和儀器

茉莉酸甲酯購于Sigma公司;熊果酸標準品購于成都植標化純生物技術有限公司;其他試劑均為分析純。所用儀器:TYAIB 0.24/10高壓蒸汽滅菌鍋:寧波久興醫(yī)療器械有限公司;SW-CJ-2F 凈化工作臺:上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;752 N紫外可見光光度計:上海儀電分析儀器有限公司。

1.2 試驗方法

1.2.1 樣品處理

以乙醇為助劑(2 mL·L-1),在不同發(fā)酵時間(3,4,5,6 d)的培養(yǎng)基中分別加入茉莉酸甲酯,使茉莉酸甲酯的終濃度分別為0、20、50、100、150、200 μmol·L-1,在25 ℃恒溫室內的搖床上以180 r·min-1轉速進行振蕩發(fā)酵培養(yǎng)7 d,4 000 r·min-1離心10 min,收集菌液和菌絲體,菌絲體放入電熱鼓風干燥箱40 ℃烘干,研成粉末后,待測。

對靈芝菌絲體及發(fā)酵液中靈芝多糖和靈芝酸進行檢測。

1.2.2 靈芝多糖的測定

以葡萄糖為標準品,采用苯酚-硫酸法測定靈芝多糖含量,參照文獻[18]進行。

1.2.2.1 標準曲線制作

以0.1 g·L-1的葡萄糖標準液繪制標準曲線。參照文獻[18]進行。用紫外分光光度計在489 nm處,測吸光度。得標準曲線回歸方程為A=6.121 4C+0.007 7,R2=0.999 4。

1.2.2.2 靈芝多糖提取

靈芝多糖提取參照文獻進行[18],稍作改動:菌液中多糖的測定:取5.00 mL 菌液,加 15 mL 無水乙醇,混勻,靜置12 h 后4 000 r·min-1離心10 min,棄上清,在室溫下晾干沉淀,獲得胞外粗多糖;然后加20.00 mL 雙蒸水進行溶解后,對溶液進行脫色和脫蛋白處理后,測量吸光度,計算含量。 菌絲體中多糖的測定:精確稱量烘干后的菌絲體0.100 0 g于50 mL離心管中,加入10.00 mL雙蒸水,在微波爐中用中火(P50,1.3 kw)微波3 min后, 4 000 r·min-1離心10 min,取上清液5.00 mL于試管中,加15 mL 無水乙醇,靜置12 h沉淀多糖,離心,棄上清,在室溫下晾干沉淀,得到胞內粗多糖;在沉淀中加 10.00 mL 雙蒸水進行溶解后,對溶液進行脫色和脫蛋白處理,測量吸光度,計算含量。

1.2.3 靈芝酸測定

以熊果酸為標準品,采用香草醛-冰醋酸和高氯酸法測定靈芝總三萜含量[18]。

1.2.3.1 標準曲線的制作

制作熊果酸標準曲線[18],在 548 nm 波長下測定吸光度,得標準曲線回歸方程為A=3.446 4C+0.003,R2=0.999 4。

1.2.3.2 靈芝酸測定

靈芝酸測定參照文獻進行[18],稍作改動。菌液中靈芝酸的測定:吸取培養(yǎng)液2.00 mL,60 ℃水浴15 min 后,在冰水浴中加入5.00 mL冰醋酸立即搖勻,室溫靜置 15 min,測定吸光度,計算含量。菌絲體中靈芝酸的測定:精密稱取烘干后的菌絲體0.1 000 g于50 mL離心管,加入10.00 mL 95%乙醇,放入微波爐用中低火(P30)微波1.5 min,離心 (4 000 r·min-1,10 min),取上清液,向沉淀中加入 10.00 mL 95%乙醇,同上處理后,合并2 次提取液,取1 mL 提取液,步驟同上,測定吸光度,計算含量。

1.2.4 統(tǒng)計學分析

采用SPSS11.5軟件對數據進行處理和統(tǒng)計分析。

2 結果與分析

2.1 靈芝多糖含量的分析

2.1.1 靈芝菌絲體中多糖含量分析

從圖1中可以看出,靈芝菌絲體中多糖的含量與發(fā)酵時間和茉莉酸甲酯的濃度有關。在一定的發(fā)酵時間添加不同濃度的茉莉酸甲酯進行誘導培養(yǎng)后,菌絲體中多糖的含量基本上呈現出先升高后下降的趨勢,茉莉酸甲酯的濃度為20、50、100 μmol·L-1時可以促進菌絲體中多糖含量的積累,而添加高濃度的茉莉酸甲酯濃度150、200 μmol·L-1時,菌絲體中多糖的含量有所的降低。值得注意的是,在不同的發(fā)酵時間,茉莉酸甲酯的濃度為50 μmol·L-1時,多糖的積累都達到最大值。

圖1 不同發(fā)酵時間添加不同濃度茉莉酸甲酯對靈芝菌絲體中多糖含量的影響Fig.1 Effects of fermentation time and concentration of methyl jasmonate on Ganoderma lucidum mycelia polysaccharide 注:a: 發(fā)酵第3天;b:發(fā)酵第4天;c:發(fā)酵第5天;d:發(fā)酵第6天。圖2~圖4同Note: a: Fermentation on the third day; b: Fermentation on the fourth day; c: Fermentation on the fifth day; d: Fermentation on the sixth day. The same as in Fig.2~Fig.4

圖2 不同發(fā)酵時間添加不同濃度茉莉酸甲酯對靈芝發(fā)酵液中多糖含量的影響Fig.2 Effects of fermentation time and concentration of methyl jasmonate on Ganoderma lucidum broth polysaccharide

在發(fā)酵第3天、第4天、第5天、第6天添加茉莉酸甲酯濃度為50 μmol·L-1時,菌絲體中多糖含量分別是空白組含量的1.98、2.75、1.60、1.5倍。在酵液培養(yǎng)的第4天,添加外源莉酸甲酯的濃度為50 μmol·L-1時,靈芝菌絲體中多糖含量達到最大值,為398.98 mg·g-1。

2.1.2 發(fā)酵液中靈芝多糖含量分析

從圖2中可以看出,靈芝發(fā)酵液中多糖的含量受到發(fā)酵時間和茉莉酸甲酯的濃度影響。在一定的發(fā)酵時間添加濃度不同的茉莉酸甲酯進行誘導培養(yǎng)后,發(fā)酵液中多糖的含量基本上呈現出先升高后下降的趨勢。在不同的發(fā)酵時間,茉莉酸甲酯的濃度為50 μmol·L-1時,多糖的積累都達到最大值。

在發(fā)酵第3天、第4天、第5天、第6天添加茉莉酸甲酯濃度為50 μmol·L-1時,發(fā)酵液中多糖含量分別是空白組含量的1.42、2.00、1.62、1.48倍。發(fā)在酵液培養(yǎng)的第4天,添加外源莉酸甲酯的濃度為50 μmol·L-1時,靈芝發(fā)酵液中多糖含量達到最大值,為4.25 g·L-1。

2.2 靈芝酸含量的分析

2.2.1 靈芝菌絲體中靈芝酸的含量分析

從圖3中可以看出,靈芝菌絲體中靈芝酸的含量隨著不同的發(fā)酵時間和添加外源茉莉酸甲酯濃度的不同而變化。在一定的發(fā)酵時間添加不同濃度的茉莉酸甲酯進行誘導培養(yǎng)后,菌絲體中靈芝酸的含量基本上呈現出先升高后下降的趨勢。與對照相比,在不同的發(fā)酵時間培養(yǎng)的靈芝,低濃度的茉莉酸甲酯對靈芝酸的積累有促進的作用,高濃度的茉莉酸甲酯則有抑制的作用。當添加外源茉莉酸甲酯的濃度為100 μmol·L-1時,對靈芝菌絲體中靈芝酸的含量影響最顯著。在發(fā)酵第3天、第4天、第5天、第6天添加茉莉酸甲酯濃度為100 μmol·L-1時,靈芝酸的含量分別是空白組含量的1.79、4.00、1.89、1.65倍。發(fā)在酵液培養(yǎng)的第4天,添加外源莉酸甲酯的濃

度為100 μmol·L-1時,靈芝菌絲體中靈芝酸含量積累到最大值為50.02 mg·g-1。

2.2.2 靈芝發(fā)酵液中靈芝酸的含量分析

由圖4可以看出,靈芝發(fā)酵液中靈芝酸的含量隨著不同的發(fā)酵時間和添加不同濃度的外源茉莉酸甲酯而變化。在相同的發(fā)酵時間添加濃度不同的茉莉酸甲酯進行誘導培養(yǎng)后,發(fā)酵液中靈芝酸的含量基本上呈現出先升高后下降的趨勢。與對照相比,添加不同濃度的外源茉莉酸甲酯都能促進靈芝發(fā)酵液中靈芝酸的積累。在不同的發(fā)酵時間,添加外源茉莉酸甲酯的濃度為100 μmol·L-1時,對靈芝發(fā)酵液中靈芝酸的含量影響最顯著,添加外源茉莉酸甲酯濃度為100 μmol·L-1時,在發(fā)酵第3天、第4天、第5天、第6天發(fā)酵液中多糖含量分別是空白組含量的2.13、2.22、2.03、2.05倍。發(fā)在酵液培養(yǎng)的第4天,添加外源莉酸甲酯的濃度為100 μmol·L-1時,靈芝發(fā)酵液中靈芝酸含量積累到最大值,為7.10 mg·L-1。

圖3 不同發(fā)酵時間添加不同濃度茉莉酸甲酯對靈芝菌絲體中靈芝酸含量的影響Fig.3 Effects of fermentation time and concentration of methyl jasmonate on Ganoderma lucidum mycelia ganoderic acid

圖4 不同發(fā)酵時間添加不同濃度茉莉酸甲酯對靈芝發(fā)酵液中靈芝酸含量的影響Fig.4 Effects of fermentation time and concentration of methyl jasmonate on Ganoderma lucidum broth ganoderic acid

3 討論與結論

靈芝多糖和靈芝酸由于突出的藥用價值引發(fā)人們的極大關注。靈芝多糖和靈芝酸都是靈芝在生長發(fā)育過程中的次生代謝產物,次生代謝產物積累是一個重要的感應應急過程,取決于茉莉酸甲酯對多個基因的調節(jié)反應[19]。大量研究表明,不同時期的細胞對誘導子的反應靈敏度不同,當細胞達到一定生長周期才可以有效的接受誘導信號,此時,誘導子表現出最強的誘導活性。李陽等研究發(fā)現,在高山紅景天愈傷組織培養(yǎng)20天后加入一定濃度的茉莉酸甲酯后,高山紅景天中的多糖積累達到最大[20]。在本研究中,添加茉莉酸后靈芝多糖和靈芝酸的積累都是在靈芝發(fā)酵培養(yǎng)的第4天積累達到最大值,對其生長曲線的觀察,發(fā)現在發(fā)酵的第4天,靈芝菌株正處于穩(wěn)定期,當細胞處于穩(wěn)定期的時候,初級代謝基本完成,開始生產有用的次級代謝產物[21]。因此,在發(fā)酵培養(yǎng)的第4天添加適當濃度的茉莉酸甲酯,靈芝多糖和靈芝酸的含量都達到了最大值。這個結果與之前的文獻報道類似,當細胞處于穩(wěn)定期的時候,茉莉酸甲酯誘導的次生代謝物的積累達到最大值[22~24]。

外源茉莉酸甲酯的誘導效應除了與細胞的生長周期有關外,還與茉莉酸甲酯的濃度有一定的關系。有研究者發(fā)現低濃度的茉莉酸甲酯能夠促進葡萄懸浮細胞中酚性成分含量的增加[25],促進紅豆杉懸浮細胞中紫杉醇的積累[26],使長春花懸浮培養(yǎng)不定根中吲哚生物堿的含量增加[27],促進三七組苗中總皂苷的含量[28]。在本研究中也發(fā)現低濃度的茉莉酸甲酯可以有效促進靈芝中多糖和靈芝酸的積累,高濃度的茉莉酸甲酯有抑制的作用。外源茉莉酸的誘導促進靈芝次生代謝物質的產生和積累的機制,因次生代謝物類型的不同而不同,在本研究中,多糖的積累達到最大值時所需茉莉酸甲酯的濃度要低于靈芝酸所需要的濃度。高濃度的茉莉酸甲酯對靈芝中多糖和靈芝酸積累起到抑制的原因是否是因為高濃度的茉莉酸甲酯對靈芝產生了較強的氧化損傷,還是抑制了這些次級代謝物的關鍵酶的表達,還需要進一步的探究。

[1]趙巖,張瑩,初樂,等.靈芝多糖的研究進展[J].中國果菜,2014, 34(2):27-30.

[2]邵力平,沈瑞祥,張素軒,等.真菌分類學[M].北京:中國林業(yè)出版社,1983:1714-1749.

[3]Smina TP,Mathew J,Janardhanan KK,et al. Antioxidant activity and toxicity profile of total triterpenes isolated from Ganoderma lucidum (Fr.) P.Karst occurring in South India[J]. Environmental Toxicology and Pharmacology, 2011, 32(3):438-446.

[4]Ko HH, Hung CF,Wang JP,et al. Antiinflammatory triterpe-noids and steroids from Ganoderma lucidum and G.tsugae[J]. Phytochemistry, 2008, 69(1): 234-239.

[5]徐雪峰, 李桂娟, 閆浩,等. 赤靈芝多糖分離純化及體外抗氧化性研究[J]. 食品與機械, 2017,33(1):144-148.

[6]Xu JW,Zhao W,Zhong JJ. Biotechnological production and application of ganoderic acids[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2010, 87(2):457-466.

[7]Chan WK, Cheung CCH, Law HKW, et al.Ganodermalucidumpolysaccharides can induce human monocytic leukemia cells into dendritic cells with immuno-stimulatory function[J]. Journal of Hematology & Oncology, 2008, 1(1):4503-4508.

[8]時冉冉, 陳嬌, 宗自衛(wèi). 靈芝多糖抗腫瘤作用的免疫分子機制研究[J]. 生物技術世界, 2016(2):317.

[9]Meng J, Hu X, Shan F, et al. Analysis of maturation of murine dendritic cells (DCs) induced by purified Ganoderma lucidum polysaccharides (GLPs)[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2011, 49(4):693-699.

[10]Zhang M, Su L, Xiao Z, et al. Methyl jasmonate induces apoptosis and pro-apoptotic autophagy via the ROS pathway in human non-small cell lung cancer[J]. American Journal of Cancer Research, 2016, 6(2):187.

[11]Fedderwitz F, Nordlander G, Ninkovic V, et al. Effects of jasmonate-induced resistance in conifer plants on the feeding behaviour of a bark-chewing insect, Hylobius abietis[J]. Journal of Pest Science, 2016, 89(1):97-105.

[12]Creelman RA, Tierney ML, Mullet JE. Jasmonic acid/methyl jasmonate accumulate in wounded soybean hypocotyls and modulate wound gene expression[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1992, 89(11):4938-4941.

[13]Munemasa S, Murata Y, Hossain MA,et al. TheArabidopsiscalcium-dependent protein kinase, CPK6, functions as a positive regulator of methyl jasmonate signaling in guard cells[J]. Plant Physiology, 2011, 155(1): 553-561.

[14]Oh SY, Kim JH, Park MJ, et al. Induction of heat shock protein 72 in C6 glioma cells by methyl jasmonate through ROS-dependent heat shock factor 1 activation[J]. International Journal of Molecular Medicine, 2005, 16(5):833-839.

[15]Raina SK, Wankhede DP, Jaggi M, et al. CrMPK3, a mitogen activated protein kinase fromCatharanthusroseusand its possible role in stress induced biosynthesis of monoterpenoid indole alkaloids[J]. BMC Plant Biology, 2012, 12(1):134.

[16]Yao HJ, Tian SP. Effects of a biocontrol agent and methyl jasmonate on postharvest diseases of peach fruit and the possible mechanisms involved[J]. Journal of Applied Microbiology, 2005, 98(4): 941-950.

[17]Ren A, Qin L, Shi L, et al. Methyl jasmonate induces ganoderic acid biosynthesis in the basidiomycetous fungusGanodermalucidum[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(17):6785-6790.

[18]陳志玲,溫魯,賈智慧.幾種微量元素和維生素對靈芝多糖及靈芝酸含量的影響[J].安徽農業(yè)科學, 2009, 37(5): 2041-2043.

[19]Pauwels L, Inzé D, Goossens A. Jasmonate-inducible gene: what does it mean? [J]. Trends in Plant Science, 2009, 14(2):87-91.

[20]李陽, 廉美蘭, 邵春繪,等. 茉莉酸甲酯對高山紅景天愈傷組織中紅景天苷和多糖積累的影響[J]. 中國中藥雜志, 2014, 39(21):4252-4257.

[21]Hall RD, Holden MA, Yeoman MM. Immobilization of Higher Plant Cells [M]∥Y.P.S.Bajaj,MedicinalandAromaticPlantsI, Berlin Heidelberg, Springer 1988:136-156.

[22]Cusidó RM, Palazón J, Bonfill M, et al. Improved paclitaxel and baccatin III production in suspension cultures ofTaxusmedia[J]. Biotechnology Progress, 2002, 18(3):418-423.

[23]Expósito O,Bonfill M,Onrubia M,et al. Effect of taxol feeding on taxol and related taxane production inTaxusbaccatasuspension cultures[J]. New Biotechnology, 2009, 25(4):252-259.

[24]Srinivasan V, Ciddi V, Bringi V, et al. Metabolic inhibitors, elicitors, and precursors as tools for probing yield limitation in taxane production byTaxuschinensiscell cultures[J]. Biotechnology Progress, 1996,12(4):457-465.

[25]Claudio DO,Agnieszka C,Christopher D. Induction of secondary metabolism in grape cell cultures by jasmonates[J].Functional Plant Biology,2009,36:323-338.

[26]Qian ZG,Zhao ZJ,Tian WH,et al. Novel syntheticjasmonates as highly efficient elicitors for taxoid production bysuspension cultures ofTaxuschinensis[J]. Biotechnology and bioengineering,2004,86(5):595-599.

[27]uiz-May E,Galaz-Avalos RM,Loyola-Vargas VM.Differential secretion and accumulation of terpene indole alkaloids in hairy roots of Catharanthus roseus treated with methyljasmonate[J].Molecular Biotechnology,2009,41(3):278-285.

[28]朱宏濤, 李江, 李元,等. 茉莉酸甲酯對三七組培苗中總皂苷含量的影響[J]. 西部林業(yè)科學, 2014(2):72-78.

(編輯:馬榮博)

Effect of exogenous methyl jasmonate on contents of polysaccharide and acid ofganodermalucidum

Xin Yanhua1,2, Zhang Tiedan2, Yang Longlong1, Xu Lan1, Liang Bin1, Meng Yue1

(1.XinzhouTeachersUniversity,Xinzhou034000,China; 2.Guangzhoucreationhealthindustrylimitedcompany,Guangzhou510642,China)

[Objective]The study aimed to determine the effect of adding exogenous methyl jasmonate on contents of polysaccharide and acid ofganodermalucidumin liquid culture.[Methods]The contents of polysaccharide and acid ofG.lucidumin culture medium and mycelium were determined by adding different concentrations of exogenous methyl jasmonate on different fermentation days.[Results]TheG.lucidumpolysaccharide contents were the highest in culture solution adding 50 μmol·L-1on the fourth day, with 398.98 mg·g-1in mycelium, and 7.57 g·L-1in its culture medium, which were 2.82 and 6.56 times over that of blank control; TheG.lucidumacid content was the highest in culture solution adding 100 μmol·L-1on the fourth day, with 50.02 mg·g-1in mycelium, and 7.10 mg·L-1in its culture medium, which were 1.93 and 2.21 times over that of blank control.[Conclusion]The contents of polysaccharide and acid ofG.lucidumcould be significantly increased by appropriately adding exogenous methyl jasmonate on the appropriate fermentation day.

Ganodermalucidum, Methyl jasmonate, Polysaccharides, Triterpenoid

2016-11-17

2017-05-26

辛燕花(1986-),女(漢),山西忻州人,講師,博士研究生,研究方向:天然活性產物研發(fā)和分子代謝調控機理

Q93

A

1671-8151(2017)09-0656-07

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