胡 孟 張海軍 王 晶 齊廣海 武書庚

(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院飼料研究所，農(nóng)業(yè)部飼料生物技術(shù)重點開放試驗室，生物飼料開發(fā)國家工程研究中心，北京100081)

L-組氨酸對肉雞生長性能、肌肉品質(zhì)、血漿抗氧化能力和肌肉咪唑二肽含量的影響

胡 孟 張海軍*王 晶 齊廣海 武書庚*

(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院飼料研究所，農(nóng)業(yè)部飼料生物技術(shù)重點開放試驗室，生物飼料開發(fā)國家工程研究中心，北京100081)

本試驗旨在研究飼糧添加L-組氨酸對肉雞生長性能、肌肉品質(zhì)、血漿抗氧化能力和肌肉咪唑二肽含量的影響。選取體重相近、健康的1日齡愛拔益加(AA)肉仔雞公雛300只，隨機分為5組，每組6個重復(fù)，每個重復(fù)10只雞。對照組飼喂基礎(chǔ)飼糧，試驗組飼喂在基礎(chǔ)飼糧中分別添加250、500、1 000、2 000 mg/kgL-組氨酸的試驗飼糧。試驗期42 d。結(jié)果表明：1)L-組氨酸降低了肉雞生長后期(22～42日齡)的料重比，250和2 000 mg/kg添加組顯著低于對照組(P<0.05)。2)L-組氨酸對肌肉全凈膛率、胸肌率、腿肌率、腹脂率、滴水損失、剪切力和pH無顯著影響(P>0.05)。3)L-組氨酸線性提高了42日齡血漿總抗氧化能力及谷胱甘肽過氧化物酶、總超氧化物歧化酶的活性(P<0.05)。4)L-組氨酸增加了42日齡肌肉中肌肽和鵝肌肽含量，500、1 000和2 000 mg/kg添加組肌肽含量分別較對照組升高了40.58%、42.75%、33.70%(P<0.05)，1 000 mg/kg添加組鵝肌肽含量較對照組增加了37.80%(P<0.05)；對肌肉中肌肽和鵝肌肽含量進行二次曲線方程擬合表明，L-組氨酸添加量為1 276 mg/kg時，肌肉咪唑二肽含量最高。可見，飼糧添加L-組氨酸可提高肉雞的飼料轉(zhuǎn)化率，改善血漿抗氧化能力，增加肌肉中咪唑二肽含量。本試驗條件下，飼糧添加1 000～2 000 mg/kgL-組氨酸較佳。從增加肌肉咪唑二肽含量考慮，飼糧L-組氨酸適宜添加量為1 276 mg/kg

L-組氨酸；肉品質(zhì)；抗氧化能力；咪唑二肽

隨著社會快速發(fā)展，人民生活水平不斷提高，消費者對肉制品的要求不僅局限于營養(yǎng)價值，對肉品的健康特性如抗氧化、抗衰老、維護人體健康等方面提出了更高的要求。因此，發(fā)展功能性肉制品受到廣泛關(guān)注。咪唑二肽(肌肽和鵝肌肽)是動物體內(nèi)的一類內(nèi)源活性物質(zhì)，在抗氧化、抗衰老、增強肌肉緩沖力、維持機體pH穩(wěn)定、抗疲勞等方面具有重要作用[1-3]，且最新研究表明肌肽在預(yù)防和治療神經(jīng)性疾病方面(老年癡呆、帕金森綜合征等)也具有一定的藥理學(xué)作用[4]。肌肽作為一種功能性二肽，可富集在肌肉中，因此，生產(chǎn)富含肌肽等二肽肉制品具有廣泛的應(yīng)用前景。

L-組氨酸是動物體內(nèi)的一種半必需氨基酸，而在家禽生產(chǎn)中，L-組氨酸作為一種必需氨基酸，參與機體組成，是體內(nèi)肌源活性肽生成的主要前體物質(zhì)，在體內(nèi)主要以肌肽形式發(fā)揮作用。L-組氨酸肉雞營養(yǎng)需要量為：前期(1～21日齡)0.35%，后期(22～42日齡)0.32%[NRC(1994)]。由于在飼料原料中的含量較高(玉米0.23%，豆粕1.1%)，常規(guī)玉米-豆粕飼糧中L-組氨酸一般不易缺乏。但為提高功能性活性肽在肌肉中的含量，飼糧仍需額外添加L-組氨酸。研究表明，適量添加L-組氨酸可改善魚類生長性能[5-6]、增加肌肉肌肽含量[7-8]、提高機體抗氧化能力[9]，但在肉雞生產(chǎn)中的研究較少。因此，本試驗旨在研究飼糧添加不同水平L-組氨酸對肉雞生長性能、肌肉品質(zhì)、血漿抗氧化能力和肌肉咪唑二肽含量的影響，以期為其更好地在生產(chǎn)中應(yīng)用提供參考。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

愛拔益加(AA)肉仔雞：購于北京華都肉雞公司；L-組氨酸：純度≥99%，購于河北和美氨基酸有限公司。

1.2 試驗設(shè)計與試驗飼糧

采用單因子試驗設(shè)計，選取300只體重相近、健康的1日齡AA肉仔雞公雛，隨機分為5組(每組6個重復(fù)，每個重復(fù)10只雞)，分別飼喂在基礎(chǔ)飼糧中添加0、250、500、1 000、2 000 mg/kgL-組氨酸的試驗飼糧，各組1～21日齡飼糧組氨酸含量實測值分別為0.49%、0.52%、0.58%、0.62%和0.70%，22～42日齡分別為0.46%、0.50%、0.52%、0.56%和0.70%?；A(chǔ)飼糧參照美國NRC(1994)和我國《雞飼養(yǎng)標準》(NY/T 33—2004)，結(jié)合《AA肉仔雞飼養(yǎng)手冊》配制，其組成及營養(yǎng)水平見表1。試驗期42 d。

表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎(chǔ))

1)維生素預(yù)混料為每千克飼糧提供 Vitamin premix provided the following per kg of diets:VA 12 500 IU，VD32 500 IU，VK32.65 mg，VB12 mg，VB26 mg，VB120.025 mg，VE 30 IU，生物素 biotin 0.35 mg，葉酸 folic acid 1.25 mg，泛酸鈣 calcium pantothenate 12 mg，煙酸 niacin 50 mg。

2)礦物質(zhì)預(yù)混料為每千克飼糧提供 Mineral premix provided the following per kg of diets: Cu(as copper suloile)8 mg，Zn(as zinc suloile)75 mg，F(xiàn)e(as ferros suloile)80 mg，Mn(as manganese suloile)100 mg，Se(as sodium selenite)0.15 mg，I(as potassium iodide)0.35 mg。

3)營養(yǎng)水平為計算值，括號內(nèi)為實測值。Nutritent levels were calculated values, while the values in the parentheses were measured values.

1.3 飼養(yǎng)管理

試驗期間自由飲食、飲水，24 h光照。試驗前3天室溫33 ℃，此后每周降低2 ℃，直到24 ℃，并維持24 ℃。按照《AA肉仔雞飼養(yǎng)管理指南》操作，正常防疫和消毒，試驗雞舍良好通風。試驗過程中，每天08:30和14:30分別記錄雞舍溫度和濕度，清掃衛(wèi)生。

1.4 指標測定與方法

1.4.1 生長性能

分別于21和42日齡，以重復(fù)為單位，空腹稱重雞只，記錄末體重，計算平均日增重(ADG)；試驗期間以重復(fù)為單位記錄耗料量，計算試驗1～21日齡、22～42日齡、1～42日齡的平均日采食量(ADFI)、料重比(F/G)。

1.4.2 屠宰性能和肌肉品質(zhì)

分別于21和42日齡，每重復(fù)選取1只接近平均體重試雞，記錄活重，頸靜脈放血致死，稱重全凈膛、胸肌、腿肌和腹脂。

于42日齡末，每重復(fù)選取1只接近平均體重的試雞，頸靜脈放血致死，完全剝離右側(cè)胸肌，稱重，測定肌肉滴水損失、剪切力和pH。

滴水損失：屠宰后45 min內(nèi)，稱取剪切紋理相似、形狀規(guī)則的胸肌約30 g，稱重(m1)，放置于自封袋中，充入氮氣使之膨脹，減少肉樣與自封袋內(nèi)壁的接觸，用尼龍繩懸吊于4 ℃冰箱內(nèi)，宰后24 h，取出肉樣用濾紙輕輕拭干表面水分再稱重(m2)。按以下公式計算滴水損失率：

滴水損失率(%)=[(m1-m2)/m1]×100。

剪切力：將煮熟的肉樣，按肌纖維走向修成2塊條形肉樣(2 cm×2 cm×1 cm)，測定過程中肌纖維走向與刀口垂直。采用TMS-Pro嫩度分析儀(弗吉尼亞食品技術(shù)有限公司，美國)，參數(shù)設(shè)置為傳感器最大負荷100 N，垂直位移速度150 mm/min，跨度6 mm。每個肉樣測試3次，取2塊肉樣6次測定值的平均值為最終剪切力。

pH測定：分別于屠宰后的45 min和24 h(4 ℃存放)，利用pH計(CyberScan pH310防水筆型，EUTECH公司，新加坡)，將探針刺入待測胸肌約1 cm深處，測定pH，分別計為pH45 min和pH24 h。測定時，電極頭完全包埋在肉樣中，每個樣品測定3次，取其平均值。

1.4.3 血漿抗氧化能力

血漿總抗氧化能力(T-AOC)，谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、總超氧化物歧化酶(T-SOD)活性，丙二醛(MDA)含量均采用試劑盒測定，試劑盒購于南京建成生物工程研究所，操作步驟嚴格按照說明書進行。

1.4.4 肌肉咪唑二肽含量

儀器與試劑：高效液相色譜儀(美國Agilent LC-15)，肌肽標準品(98%，美國Sigma)，鵝肌肽標準品(98%，美國Sigma)，勻漿機(海門其林貝爾；QL-901/QL-861)，高速冷凍離心機(湖南赫西儀器裝備有限公司)，甲醇(優(yōu)級純)。肌肽標準品的配備：準確稱量10 mg肌肽，用超純水溶解定容至10 mL容量瓶，此時濃度是1 mg/mL，為儲備液，將此儲備液用超純水稀釋成為濃度10、20、50、80、100 μg/mL的標準工作液；鵝肌肽標準品的配備：準確稱量10 mg鵝肌肽，用超純水溶解定容至10 mL容量瓶，此時濃度是1 mg/mL，為儲備液，將此儲備液用超純水稀釋成為濃度10、20、50、80、100 μg/mL的標準工作液。預(yù)處理：于42日齡，每重復(fù)選取1只接近該重復(fù)平均體重的肉雞，屠宰分離取胸肉，-20 ℃保存。稱取胸肉0.5 g，剪碎后加入4.5 mL蒸餾水，4 000 r/min離心10 min，取上清液，加入3倍體積的甲醇，-20 ℃冷凍15 min，11 000 r/min離心，取上清液，稀釋10倍留用。液相色譜條件：以40 mmol/L磷酸氫二鉀(pH=6.3)為無機相，甲醇為有機相，有機相比例為34%，流速0.5 mL/min，上樣量10 μL，檢測波長210 nm，在Aglient NH2(250 mm×4.6 mm，填料直徑5 μm)色譜柱上分離肌肽和鵝肌肽，肌肽在13.1 min出峰，鵝肌肽在14.3 min出峰[10]。

1.5 數(shù)據(jù)分析

數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0軟件的one-way ANOVA先進行方差檢驗，再進行F檢驗和Duncan氏法多重比較，以P<0.05為差異顯著。

2 結(jié) 果

2.1L-組氨酸對肉雞生長性能的影響

表2為飼糧添加L-組氨酸對肉雞生長性能的影響。由表可知，生長前期(1～21日齡)，飼糧添加L-組氨酸對肉雞的末體重、平均日增重、平均日采食量和料重比均無顯著影響(P>0.05)。生長后期(22～42日齡)，L-組氨酸可降低肉雞的料重比，250、2 000 mg/kg添加組顯著低于對照組(P<0.05)，且隨L-組氨酸添加水平的增加，料重比線性降低(P<0.05)，L-組氨酸對末體重、平均日增重和平均日采食量無顯著影響(P>0.05)。生長全期(1～42日齡)，L-組氨酸對肉雞的平均日增重、平均日采食量和料重比均無顯著影響(P>0.05)。

表2 L-組氨酸對肉雞生長性能的影響

同行數(shù)據(jù)肩標無字母或相同字母表示差異不顯著(P>0.05)，不同字母表示差異顯著(P<0.05)。下表同。

In the same row, values with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.

2.2L-組氨酸對肉雞屠宰性能的影響

表3為飼糧添加L-組氨酸對肉雞屠宰性能的影響。由表可知，L-組氨酸對肉雞21和42日齡全凈膛率、胸肌率、腿肌率、腹脂率均無顯著影響(P>0.05)。

表3 L-組氨酸對肉雞屠宰性能的影響

2.3L-組氨酸對肉雞肌肉品質(zhì)的影響

表4為飼糧添加L-組氨酸對肉雞肌肉品質(zhì)的影響。由表可知，L-組氨酸對肉雞42日齡肌肉的滴水損失、剪切力和pH無顯著影響(P>0.05)，但隨L-組氨酸添加水平提高，肌肉剪切力呈線性降低趨勢(P=0.061)。

表4 L-組氨酸對肉雞肌肉品質(zhì)的影響

2.4L-組氨酸對肉雞血漿抗氧化能力的影響

表5為飼糧添加L-組氨酸對肉雞血漿抗氧化能力的影響。由表可知，21日齡時，L-組氨酸線性和二次降低了肉雞血漿T-AOC(P<0.05)；對血漿GSH-Px、T-SOD、MDA含量無顯著影響(P>0.05)。42日齡時，L-組氨酸線性提高了肉雞血漿T-AOC、GSH-Px和T-SOD含量(P<0.05)；對血漿MDA含量無顯著影響(P>0.05)，隨L-組氨酸添加水平增加，數(shù)值上均有所降低。

表5 L-組氨酸對肉雞血漿抗氧化能力的影響

2.5L-組氨酸對肉雞肌肉肌肽、鵝肌肽含量的影響

表6為飼糧添加L-組氨酸對肉雞肌肉肌肽、鵝肌肽含量的影響。由表可知，L-組氨酸增加了肉雞42日齡肌肉中肌肽和鵝肌肽含量，500、1 000和2 000 mg/kg添加組肌肽含量分別升高了40.58%、42.75%、33.70%(P<0.05)，1 000 mg/kg添加組鵝肌肽含量增加了37.80%(P<0.05)。在本試驗條件下，飼糧L-組氨酸添加水平為1 284 mg/kg時，肌肉中肌肽含量可達最高，添加水平為1 271 mg/kg時，胸肌中鵝肌肽含量可最大化，添加水平為1 276 mg/kg時，咪唑二肽(肌肽和鵝肌肽之和)含量可最大化，3個最佳添加量接近。

2.6 飼料效益

表7為飼料添加L-組氨酸對肉雞生產(chǎn)成本的影響。由表可知，隨L-組氨酸添加水平的升高，對照組和250、500、1 000和2 000 mg/kg添加組增重成本分別為4.13、4.18、4.34、4.69、5.21 RMB/kg。

3 討 論

3.1L-組氨酸對肉雞生長性能的影響

表6 L-組氨酸對肉雞肌肉肌肽和鵝肌肽含量的影響

3.2L-組氨酸對肉雞屠宰性能的影響

當前關(guān)于L-組氨酸對肉雞屠宰性能影響的文獻較少。Kralik等[18]在飼糧添加不同水平L-組氨酸(0.1%、0.2%、0.3%)未發(fā)現(xiàn)肉雞的屠體、胸肌和腿肌重產(chǎn)生顯著變化。Hu等[19]在肉雞1～21日齡飼糧中添加0.5%肌肽顯著提高胸肌和腿肌重。有研究表明，L-組氨酸可通過抑制促炎因子的表達改善胰島素抗性[20]，胰島素在調(diào)節(jié)肉雞蛋白質(zhì)代謝具有重要作用[21]，因此飼糧添加L-組氨酸可能通過影響胰島素分泌而調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)合成和肌肉發(fā)育。本試驗發(fā)現(xiàn)，L-組氨酸未顯著影響屠宰性能，與Kralik等[18]研究結(jié)果一致。

3.3L-組氨酸對肉雞肉品質(zhì)及血漿抗氧化能力的影響

肉品質(zhì)為肉雞生產(chǎn)經(jīng)濟效益的重要指標，良好的肉品質(zhì)不僅可提高消費者的接受度，還可延長肉制品的貨架期和儲存時間。剪切力是反映肌肉嫩度的指標，剪切力越小，肌肉越嫩。有研究發(fā)現(xiàn)，不同水平L-組氨酸對肉雞肌肉的滴水損失、蒸煮損失、剪切力、pH均無顯著影響[16]。Thornton等[22]研究表明，過瘤胃L-組氨酸添加對牛肉的剪切力無顯著影響。鈣蛋白酶和鈣蛋白酶抑制酶是一對拮抗酶，兩者通過調(diào)節(jié)肌肉中蛋白質(zhì)的水解改變肌肉的嫩度，其中鈣蛋白酶是一種鈣依賴性蛋白酶，鈣可激活該酶活性，增加肌肉嫩度。Rowe等[23]發(fā)現(xiàn)，體內(nèi)氧化可抑制鈣蛋白酶活化，激活鈣蛋白酶抑制酶活性。L-組氨酸參與體內(nèi)氧化還原反應(yīng)，通過調(diào)節(jié)鈣蛋白酶活性調(diào)節(jié)肌肉嫩度。肌肽具有調(diào)節(jié)細胞鈣離子通道的作用，組氨酸也可通過肌肽作用間接調(diào)節(jié)肌肉嫩度。本試驗研究表明，飼糧添加L-組氨酸對肌肉剪切力無顯著影響，但試驗組剪切力在數(shù)值上均小于對照組，可能是L-組氨酸通過調(diào)節(jié)體內(nèi)鈣蛋白酶活性起到了一定作用。

表7 L-組氨酸對肉雞生產(chǎn)成本的影響

飼料單價為根據(jù)原料市場價格得出計算值。

Feed price were calculated values according to market prices of ingredients.

3.4L-組氨酸對肉雞肌肉肌肽、鵝肌肽含量的影響

依據(jù)飼糧L-組氨酸添加水平和肌肉組氨酸二肽含量的的回歸關(guān)系，為提高肌肉二肽含量，飼糧添加適量L-組氨酸是必要的，低劑量添加時，隨添加水平提高，二肽含量升高。當添加過量時，并不能達到滿意的效果，且可能抑制動物采食，降低生長性能。Amend等[32]報道飼糧缺乏組氨酸時可降低公雞肌肉和腿肉中肌肽含量，對鵝肌肽含量無影響,可知肉雞體內(nèi)肌肽和鵝肌肽合成規(guī)律相似，但分解規(guī)律不同，肌肽分解對體內(nèi)組氨酸含量的變化比鵝肌肽更敏感，因此為生產(chǎn)高含量肌肽肉品，在飼糧中額外添加L-組氨酸是必要的。Drozak等[33]發(fā)現(xiàn)肉雞的肌肽合成酶和肌肽氮甲基轉(zhuǎn)移酶等基因可影響體內(nèi)肌肽的合成和含量變化。L-組氨酸可通過提高肌肽合成酶基因的表達增加肌肉中肌肽的含量，但其確切的分子機制尚不清楚，有待于進一步深入研究。

4 結(jié) 論

① 飼糧添加L-組氨酸可提高肉雞的飼料轉(zhuǎn)化率，改善血漿抗氧化能力，增加肌肉中咪唑二肽含量。

② 本試驗條件下，飼糧添加1 000～2 000 mg/kgL-組氨酸較佳。

③ 從增加肌肉咪唑二肽含量考慮，飼糧L-組氨酸適宜添加量為1 276 mg/kg。

[1] 周宏博,申峰,鄒朝霞,等.蛋白質(zhì)氧化羰基化和肌肽的保護作用[J].中國老年學(xué)雜志,2003,23(5):310-311.

[2] 劉麗,傅偉龍,李文清,等.肌肽的生理功能及其應(yīng)用[C]//全國反芻動物營養(yǎng)生理生化第三次學(xué)術(shù)會議論文摘要匯編.長春:中國畜牧獸醫(yī)學(xué)會,2004:2.

[3] GUIOTTO A,CALDERAN A,RUZZA P,et al.Carnosine and carnosine-related antioxidants:a review[J].Current Medicinal Chemistry,2005,12(20):2293-2315.

[4] PAVLIN M,ROSSETTI G,DE VIVO M,et al.Carnosine and homocarnosine degradation mechanisms by the human carnosinase enzyme CN1:insights from multiscale simulations[J].Biochemistry,2016,55(19):2772-2784.

[5] HAN Y Z,KOSHIO S,ISHIKAWA M,et al.Interactive effects of dietary arginine and histidine on the performances of Japanese flounderParalichthysolivaceusjuveniles[J].Aquaculture,2013,414-415:173-182.

[6] MICHELATO M,ZAMINHAN M,BOSCOLO W R,et al.Dietary histidine requirement of Nile tilapia juveniles based on growth performance,expression of muscle-growth-related genes and haematological responses[J].Aquaculture,2016,467:63-70.

[7] WON P S,HO K C,NYUN N,et al.Effects of dietary supplementation of histidine,β-alanine,magnesium oxide,and blood meal on carnosine and anserine concentrations of broiler breast meat[J].The Journal of Poultry Science,2013,50(3):251-256.

[10] 曹永梅.營養(yǎng)型雞精中肌肽、鵝肌肽含量的檢測[J].食品工業(yè),2013,34(2):183-185.

[11] HAUG A,R?DBOTTEN R,MYDLAND L T,et al.Increased broiler muscle carnosine and anserine following histidine supplementation of commercial broiler feed concentrate[J].Acta Agriculturae Scandinavica,Section A:Animal Science,2008,58(2):71-77.

[12] JOONGHYUCK A,NYUN N,KWANGSUK S,et al.Effects of supplementary blood meal on the content of carnosine and anserine in broiler meat[J].The Journal of Poultry Science,2010,47(4):302-309.

[13] ZHAO B,FENG L,LIU Y,et al.Effects of dietary histidine levels on growth performance,body composition and intestinal enzymes activities of juvenile Jian carp(Cyprinuscarpiovar. Jian)[J].Aquaculture Nutrition,2012,18(2):220-232.

[14] FARHAT,KHAN M A.Effects of varying levels of dietaryL-histidine on growth,feed conversion,protein gain,histidine retention,hematological and body composition in fingerling stinging catfishHeteropneustesfossilis(Bloch)[J].Aquaculture,2013,404-405:130-138.

[15] KRIENGSINYOS W,RAFII M,WYKES L J,et al.Long-term effects of histidine depletion on whole-body protein metabolism in healthy adults[J].The Journal of Nutrition,2002,132(11):3340-3348.

[16] KASAOKA S,TSUBOYAMA-KASAOKA N,KAWAHARA Y,et al.Histidine supplementation suppresses food intake and fat accumulation in rats[J].Nutrition,2004,20(11/12):991-996.

[17] SON D O,SATSU H,SHIMIZU M.Histidine inhibits oxidative stress- and TNF-α-induced interleukin-8 secretion in intestinal epithelial cells[J].FEBS Letters,2005,579(21):4671-4677.

[18] KRALIK G,KRALIK Z,DJURKIN KUEC I,et al.Influence of dietary histidine,hybrid line and gender on chicken meat quality and carnosine concentration[J].The Journal of Poultry Science,2015,52(4):295-303.

[19] HU X X,HONGTRAKUL K,JI C,et al.Effect of carnosine on growth performance,carcass characteristics,meat quality and oxidative stability in broiler chickens[J].The Journal of Poultry Science,2009,46(4):296-302.

[20] FENG R N,NIU Y C,SUN X W,et al.Histidine supplementation improves insulin resistance through suppressed inflammation in obese women with the metabolic syndrome:a randomised controlled trial[J].Diabetologia,2013,56(5):985-994.

[22] THORNTON K J,RICHARD R P,COLLE M J,et al.Effects of dietary potato by-product and rumen-protected histidine on growth,carcass characteristics and quality attributes of beef[J].Meat Science,2015,107:64-74.

[23] ROWE L J,MADDOCK K R,LONERGAN S M,et al.Oxidative environments decrease tenderization of beef steaks through inactivation of μ-calpain[J].Journal of Animal Science,2004,82(11):3254-3266.

[24] WADE A M,TUCKER H N.Antioxidant characteristics ofL-histidine[J].The Journal of Nutritional Biochemistry,1998,9(6):308-315.

[26] TANSINI C M,DURIGON K,TESTA C G,et al.Effects of histidine and imidazolelactic acid on various parameters of the oxidative stress in cerebral cortex of young rats[J].International Journal of Developmental Neuroscience,2004,22(2):67-72.

[27] VAN WOUWE J P,VELDHUIZEN M.Growth characteristics in laboratory animals fed zinc-deficient,copper-deficient,or histidine-supplemented diets[J].Biological Trace Element Research,1996,55(1/2):71-77.

[28] SUIDASARI S,STAUTEMAS J,URAGAMI S,et al.Carnosine content in skeletal muscle is dependent on vitamin B6 status in rats[J].Frontiers in Nutrition,2016,2:39.

[29] PIERRO F D,BERTUCCIOLI A,BRESSAN A,et al.Carnosine-based supplement[J].Nutrafoods,2011,10(2/3):43-47.

[30] KAI S,WATANABE G,KUBOTA M,et al.Effect of dietary histidine on contents of carnosine and anserine in muscles of broilers[J].Animal Science Journal,2015,86(5):541-546.

[31] OGATA H Y.Muscle buffering capacity of yellowtail fed diets supplemented with crystalline histidine[J].Journal of Fish Biology,2002,61(6):1504-1512.

[32] AMEND J F,STRUMEYER D H,FISHER H.Effect of dietary histidine on tissue concentrations of histidine-containing dipeptides in adult cockerels[J].The Journal of Nutrition,1979,109(10):1779-1786.

[33] DROZAK J,CHROBOK L,POLESZAK O,et al.Molecular identification of carnosine N-methyltransferase as chicken histamine N-methyltransferase-like protein (HNMT-Like)[J].PLoS One,2013,8(5):e64805.

*Corresponding authors: ZHANG Haijun, associate professor, E-mail: fowlfeed@163.com； WU Shugeng, professor， E-mail: wushugeng@caas.cn

(責任編輯 王智航)

Effects ofL-Histidine on Growth Performance, Meat Quality,
Plasma Antioxidant Capacity and Meat Imidazole Dipeptide Content of Broilers

HU Meng ZHANG Haijun*WANG Jing QI Guanghai WU Shugeng*

(KeyLaboratoryofFeedBiotechnologyofMinistryofAgriculture,NationalEngineeringResearchCenterofBiologicalFeed,FeedResearchInstitute,ChineseAcademyofAgriculturalScience,Beijing100081,China)

This experiment was conducted to study the effects of dietary supplementation ofL-histidine on growth performance, meat quality, plasma antioxidant capacity and meat imidazole dipeptide content of broilers. A total of 300 one-day-old male Arbor Acres (AA) broilers were randomly allotted into 5 groups with 6 replicates per group and 10 broilers per replicate. The control group was fed a basal diet, and the experimental groups were fed the basal diet supplemented with 250, 500, 1 000, 2 000 mg/kgL-histidine, respectively. The trial lasted for 42 days. The results showed as follows: 1) feed to gain ratio was decreased byL-histidine of boilers at late growing phase (22 to 42 days of age), and 250 and 2 000 mg/kg groups were significantly lower than the control group (P<0.05). 2) DietaryL-histidine supplementation had no significant effects on dressing percentage, breast muscle rate, leg muscle rate, abdominal fat rate, drip loss, shear force and pH of muscle (P>0.05). 3) At 42 days of age, total antioxidant capacity, the activities of the glutathione peroxidase and total superoxide dismutase in plasma were increased linearly with the supplemental level ofL-histidine in diets (P<0.05). 4) At 42 days of age, the contents of carnosine and anserine of muscle were increased byL-histidine supplementation, the content of carnosine was increased by 40.58%, 42.75% and 33.70% in 500, 1 000 and 2 000 mg/kg groups (P<0.05), respectively, and the content of anserine was increased by 37.80% in 1 000 mg/kg group (P<0.05)； imidazole dipeptide contents reached the highest when the supplemental level ofL-histidine was 1 276 mg/kg according to quadratic formulas between them. In conclusion, dietaryL-histidine supplementation can increase feed conversion rate, improve plasma antioxidant capacity and increase contents of imidazole dipeptides of muscle in broilers, and the proper supplemental level in diet ofL-histidine in diet is 1 000 to 2 000 mg/kg under the conditions in the current study. Considering imidazole dipeptide content in muscle, the optimal supplemental level in diet is 1 276 mg/kg.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2017, 29(8)：2697-2706]

L-histidine; meat quality; antioxidant capacity; imidazole dipeptide

10.3969/j.issn.1006-267x.2017.08.012

2017-02-01

家禽產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系北京市創(chuàng)新團隊(CARS-PSTP)

胡 孟(1992—)，男，河南南陽人，碩士研究生，從事單胃動物營養(yǎng)研究。E-mail: 18511602275@163.com

*通信作者:張海軍，副研究員，碩士生導(dǎo)師，E-mail: fowlfeed@163.com；武書庚，研究員，碩士生導(dǎo)師，E-mail: wushugeng@caas.cn

S816

A

1006-267X(2017)08-2697-10