陳麗燕++鄧麗青++陳金花++鐘郁++劉佳
摘 要:為優(yōu)化骨髓間充質(zhì)干細胞的分離和培養(yǎng)方法,采用改良的骨髓沖洗法分離骨髓干細胞,細胞接種后,比較不同體積分數(shù)胎牛血清(5%,10%,20%)、不同的DMEM/F12、H-DMEM和L-DMEM培養(yǎng)基,進行細胞培養(yǎng),比較細胞生命狀態(tài)。結(jié)果顯示不使用篩網(wǎng)細胞分離細胞,應(yīng)用含體積分數(shù)為10%胎牛血清的DMEM/F12M培養(yǎng)基培養(yǎng),能夠提高培養(yǎng)效率。
關(guān)鍵詞:間充質(zhì)干細胞;骨髓;培養(yǎng)
中圖分類號:R329 文獻標識碼:A 文章編號:1671-2064(2017)19-0200-02
骨髓間充質(zhì)干細胞(Bone marrow mesenchymalstem cells,BMSCs)是指存在于骨髓基質(zhì)中的非造血組織的間充質(zhì)干細胞,在體內(nèi)分布于多種組織和器官,并具有多向分化潛能。它有著廣泛的來源,包括骨髓,骨骼肌,軟骨,骨,肌腱等[1]。故在干細胞研究領(lǐng)域中具有突出的優(yōu)勢。本實驗對小鼠BMSCs的生物學(xué)性進行研究,旨在建立體外分離培養(yǎng)BMSCs的方法,培養(yǎng)出生長狀態(tài)良好,足夠數(shù)量的骨髓間充質(zhì)干細胞是應(yīng)用的前提,進一步為組織工程、細胞治療和基因治療研究提供實驗依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 實驗材料
實驗動物:6-8周齡SPF級昆明小鼠20只,體重30-40g (雌雄不拘),購自斯萊克景達公司,在本校標準化實驗動物中心常規(guī)飼養(yǎng)。
主要試劑:DMEM/F12(Biological Industries公司)、H-DMEM培養(yǎng)基及L-DMEM 培養(yǎng)基(Sangon Biotech公司)、胎牛血清(FBS)(Sigma公司)、胰酶(GENVIEW公司)。
1.2 細胞分離方式
小鼠脫頸處死,置于75%無水乙醇的燒杯中浸泡5min,在無菌條件下取后腿股骨,清除表面肌肉組織。刺穿股骨,分別用DMEM/F12、H-DMEM或L-DMDM培養(yǎng)液(含10% FBS)沖洗骨髓,200目篩網(wǎng)過濾后,用1ml注射器注入細胞培養(yǎng)瓶,37℃,CO2培養(yǎng)。常規(guī)培養(yǎng)3~4天后用PBS沖洗兩遍,全量換液去除非貼壁細胞。當細胞生長至約80%融合時,用0.25%胰酶和0.01%EDTA消化,計數(shù),傳代。
1.3 細胞培養(yǎng)體系比較
(1)不同血清含量的比較:分離后的單個核細胞以1×106接種至6孔板中,用DMEM/F12培養(yǎng)液含5%,10%,20%FBS進行培養(yǎng),比較細胞生長情況。
(2)不同類型培基比較:分離后的單個核細胞以1×106接種至6孔板中,用10%胎牛血清DMEM/F12、H-DMEM和L-DMEM分別培養(yǎng),比較細胞貼壁與生長情況。
2 結(jié)果
2.1 細胞分離方式
使用篩網(wǎng)細胞殘留少,培養(yǎng)時細胞密度過低,難以存活,BMSCs數(shù)量少(圖1);不使用篩網(wǎng),可獲取更多細胞,能使BMSCs貼壁與伸展,存活率明顯高些(圖2)。
2.2 細胞培養(yǎng)情況
2.2.1 不同血清濃度
用DMEM/F12培養(yǎng)液含5%,10%,20%FBS進行培養(yǎng)時,最佳的血清濃度是10%,細胞增殖旺盛,形態(tài)均一,易于傳代。過高的血清濃度>15%時,會導(dǎo)致細胞出現(xiàn)分化的現(xiàn)象,傳代較難。過低的血清會<10%時,導(dǎo)致細胞的增殖速度下降,未能增值傳代。
2.2.2 不同類型培基
10%胎牛血清的DMEM/F12細胞培養(yǎng)按照1:1比例混合效果最佳,營養(yǎng)成分豐富,呈長棱形成纖維細胞樣的細胞。(圖3)10%胎牛血清的H-DMEM細胞培養(yǎng),可見數(shù)個成纖維細胞樣,細胞輪廓增強,細胞折光性變?nèi)?,細胞胞質(zhì)中出現(xiàn)空泡、脂滴和其他顆粒狀物質(zhì)。(圖4)。含10%胎牛血清的L-DMEM培養(yǎng),僅見個別成纖維細胞樣,細胞形態(tài)出現(xiàn)多樣性,貼壁細胞浮起。(圖5)
3 討論
間充質(zhì)干細胞來源于中胚層,具有很強的自我復(fù)制能力和多向分化潛能,它分布于全身各結(jié)締組織,尤以骨髓中含量最多,但即使是在骨髓中,BMSCs的豐度也不高,每105-106個單核細胞中大約含一個BMSCs,并且隨著年齡的增長,BMSCs含量逐漸減少[1]。BMSCs具有支持造血,促進造血干細胞移植后造血功能恢復(fù)、預(yù)防和減輕移植后的移植物抗宿主病的潛能[2,4]。因此,建立一個體外適宜BMSCs生長培養(yǎng)體系是顯得至關(guān)重要。
MSCs的分離技術(shù)和方法主要有4種:貼壁法、流式細胞儀分離法、密度梯度離心法和免疫磁珠法。應(yīng)用流式細胞儀分離法或免疫磁珠法,雖可以得到純度較高的細胞,但成本昂貴,在分離過程對細胞的活性影響較大,甚至導(dǎo)致細胞完全失去活性。使用percol1分離液梯度離心的方法,能有效地將紅細胞、白細胞,和間充質(zhì)干細胞分離開來,同時操作簡單,快速,對細胞的活性影響較小,但要是血管中細胞量少,分離得到的單個核細胞數(shù)量更少,不利于細胞的生長。貼壁法是骨髓間充質(zhì)干細胞最初的分離培養(yǎng)方法,至今仍是一種得到廣泛應(yīng)用的經(jīng)典途徑[3,5]。本實驗采用貼壁培養(yǎng)法,并經(jīng)過體外貼壁培養(yǎng)一段時間,通過換液去除懸浮生長的造血細胞,從而獲得BMSCs。
在原代分離時,細胞分離方式中是否使用篩網(wǎng)對BMSCs的生長有一定影響,使用篩網(wǎng)細胞的密度過低,存活率難,BMSCs數(shù)量少;而無使用篩網(wǎng)細胞,能使BMSCs貼壁與伸展,存活率高,可獲取更多細胞。最佳的血清濃度是10%,生長最為旺盛:血清濃度<10%,不利于細胞生長;血清濃度>15%時,易引起細胞分化而影響增值。應(yīng)用L-DMEM培基未能獲得可增殖傳代的間充質(zhì)干細胞,H-DMEM培基獲得少量可增值傳代細胞,而DMEM/F12和得到了均一的、可傳代的間充質(zhì)干細胞。
本實驗對其分離、培養(yǎng)條件進行優(yōu)化,結(jié)果顯示不使用篩網(wǎng)細胞,應(yīng)用含體積分數(shù)為10%胎牛血清的DMEM/F12M培養(yǎng)基培養(yǎng),能夠提高培養(yǎng)效率。
參考文獻
[1]張怡,趙連三,唐紅,等.小鼠骨髓間充質(zhì)干細胞的分離與培養(yǎng)[J].生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)雜志,2004,21(5):746-748,765.
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