楊 光，李玲玉，黃明麗，楊凡昌 ，張鳳魁，徐榮臣 ，顏冬云*

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山梨醇對(duì)植株抗逆性作用的研究進(jìn)展①

楊 光1，李玲玉1，黃明麗1，楊凡昌1，張鳳魁2，徐榮臣2，顏冬云1*

(1 青島大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院，山東青島 266071；2魯化好陽(yáng)光生態(tài)肥業(yè)有限公司，山東滕州 277527)

山梨醇作為一種重要的植物內(nèi)源物質(zhì)，廣泛參與調(diào)控植株防御反應(yīng)和形態(tài)發(fā)育相關(guān)的多種生物學(xué)過(guò)程，應(yīng)對(duì)各種環(huán)境脅迫的應(yīng)激反應(yīng)，因此山梨醇使植株獲得抗性的研究受到廣泛關(guān)注。本文綜述了近年來(lái)山梨醇在植株抗逆性研究中取得的進(jìn)展，包括植物在遭受環(huán)境脅迫時(shí)植株體內(nèi)山梨醇含量的變化，以及外源山梨醇在促進(jìn)植株對(duì)營(yíng)養(yǎng)元素的吸收和提高愈傷組織誘導(dǎo)率等方面的應(yīng)用研究，提出了當(dāng)前山梨醇研究中存在的問(wèn)題，并對(duì)山梨醇提高植株抗逆性在我國(guó)高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)高效農(nóng)業(yè)發(fā)展中所起的作用進(jìn)行了展望。

山梨醇；非生物脅迫；植株；抗逆性

山梨醇(sorbitol)是一種用途廣泛的化工原料，在日化、食品、醫(yī)藥等行業(yè)作用顯著。隨著社會(huì)經(jīng)濟(jì)的飛速發(fā)展，其應(yīng)用范圍不斷擴(kuò)展，農(nóng)用研究作為新興領(lǐng)域值得關(guān)注。山梨醇是許多薔薇科植物中光合作用的主要產(chǎn)物，不僅在薔薇科植物自身生長(zhǎng)發(fā)育中具有重要作用，而且與生物和非生物逆境下的抗性密切相關(guān)，因此對(duì)植物中的山梨醇開(kāi)展研究具有重要意義[1-2]。

近年來(lái)，中國(guó)耕地?cái)?shù)量持續(xù)減少，2×107hm2鹽堿荒地尚待開(kāi)發(fā)；我國(guó)淡水資源短缺，每年因干旱糧食減產(chǎn)達(dá)1×107~ 1.5×107t。這無(wú)疑給中國(guó)的糧食生產(chǎn)提出了嚴(yán)峻的挑戰(zhàn)[3-4]。大量研究表明，當(dāng)植物遭遇逆境時(shí)山梨醇可作為小分子滲透物質(zhì)在植株體內(nèi)積累，山梨醇對(duì)提高植物抗旱、抗鹽堿、抵御低溫、抗火疫病、清除活性氧等能力具有重要作用。此外，外源性山梨醇的應(yīng)用對(duì)提高植物的抗逆性也有重要的作用，如提高植物的抗旱性[5]、耐鹽性[6]、耐寒性[7]、促進(jìn)養(yǎng)分吸收[8-9]，改善植物品質(zhì)[10]，提高愈傷組織誘導(dǎo)率[11]等作用。

1 山梨醇與植物抗逆性研究

1.1 植物對(duì)非生物脅迫的響應(yīng)

常見(jiàn)的非生物脅迫因子有鹽害、干旱、高/低溫、重金屬污染等[12]。大量研究表明，植物在各種非生物脅迫下，會(huì)積累大量小分子有機(jī)物質(zhì)來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)滲透壓，維持蛋白質(zhì)的穩(wěn)定，從而減少逆境對(duì)植物造成的傷害[13-16]。滲透勢(shì)的減小是由于細(xì)胞內(nèi)可溶性糖積累的結(jié)果，這種滲透勢(shì)的調(diào)節(jié)對(duì)植物的生存是非常關(guān)鍵的[17]。山梨醇與植物對(duì)多種非生物脅迫的抗逆性反應(yīng)有著十分密切的聯(lián)系[18]。山梨醇能在葉綠體和細(xì)胞基質(zhì)中合成和分解。在細(xì)胞基質(zhì)中，通過(guò)山梨醇磷酸脫氫酶合成的山梨醇將被用于韌皮部的承載，并從源器官轉(zhuǎn)移到庫(kù)器官；其功能主要用來(lái)維持山梨醇在葉綠體和細(xì)胞基質(zhì)中的濃度。山梨醇含有多個(gè)羥基，親水能力強(qiáng)，能有效維持細(xì)胞膨壓，進(jìn)而有效抵抗環(huán)境脅迫下的滲透脫水。非生物脅迫下誘導(dǎo)山梨醇的積累，也證實(shí)了山梨醇作為一種滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)幫助植株維持不利生長(zhǎng)條件下的滲透平衡[19]。有研究表明非生物脅迫引起的細(xì)胞滲透壓的變化提高了醛糖還原酶轉(zhuǎn)錄的能力，使其mRNA和蛋白質(zhì)含量升高，進(jìn)而導(dǎo)致山梨醇的積累[20]。

植物體內(nèi)山梨醇含量與植物環(huán)境耐受性的潛在關(guān)系已有報(bào)道。部分研究表明，蘋(píng)果[21]、車(chē)前草[22]等植物在遇到逆境脅迫時(shí)，也會(huì)在體內(nèi)大量積累山梨醇，其和甘露醇一樣作為一種小分子滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)來(lái)緩解逆境脅迫對(duì)植物的傷害[23]。

1.2 山梨醇對(duì)植物抗旱性的影響

據(jù)統(tǒng)計(jì)干旱導(dǎo)致作物減產(chǎn)達(dá)50% ~ 73%[24-26]。干旱脅迫下，植物經(jīng)歷氧化刺激誘導(dǎo)活性氧的產(chǎn)生(過(guò)氧化物、羥基自由基、過(guò)氧化氫等)來(lái)反映干旱強(qiáng)度[27]。植物已經(jīng)發(fā)展了幾種自適應(yīng)策略，以應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫[28]。但這種適應(yīng)策略需要經(jīng)歷一定的過(guò)程[29]。在這個(gè)過(guò)程中，植物減少細(xì)胞滲透勢(shì)，合成一些有助于細(xì)胞保持水合狀態(tài)的低分子量化合物，如山梨醇、甘露醇等，維持細(xì)胞內(nèi)的膨壓，抵抗干旱和細(xì)胞脫水[30-31]；另一方面，植物也會(huì)通過(guò)提高抗氧化酶的活性來(lái)適應(yīng)干旱環(huán)境。

國(guó)內(nèi)外學(xué)者通過(guò)水分脅迫試驗(yàn)對(duì)植物體內(nèi)山梨醇含量的變化進(jìn)行了研究。山梨醇可能有助于植物脫水耐性[32]。Ranney等[33]分析了水分脅迫下櫻桃樹(shù)葉片內(nèi)可溶性碳水化合物的含量，其中山梨醇的濃度最高，結(jié)果表明總可溶性碳水化合物的增加主要是由于山梨醇的增加導(dǎo)致的。后期對(duì)山杏的研究也證實(shí)了這一點(diǎn)[34]。Wang和Stutte[35]利用溫室盆栽2年生蘋(píng)果樹(shù)()進(jìn)行試驗(yàn)，測(cè)定了不同水分脅迫下成熟葉片中可溶性糖的含量，表明山梨醇濃度會(huì)隨著脅迫的發(fā)展而升高。后來(lái)學(xué)者Jie等[36]利用溫室盆栽1年生蘋(píng)果樹(shù)()進(jìn)行試驗(yàn)，發(fā)現(xiàn)干旱脅迫不僅影響植株對(duì)氮、磷的吸收且葉片內(nèi)的山梨醇長(zhǎng)時(shí)間維持一個(gè)較高的濃度水平。這表明山梨醇含量是與果樹(shù)抗旱性密切相關(guān)的生理指標(biāo)。Kobashi等[37]認(rèn)為水分脅迫下赤霉素(ABA)加速糖類(lèi)物質(zhì)的積累是由激活山梨醇代謝開(kāi)始的。在水分脅迫下，桃樹(shù)體內(nèi)山梨醇代謝發(fā)生改變，首先是莖尖(庫(kù)器官)內(nèi)山梨醇脫氫酶(降解山梨醇的酶)活性降低，從而莖尖中山梨醇的降解量減少，進(jìn)而引起莖尖內(nèi)山梨醇積累使庫(kù)強(qiáng)降低，導(dǎo)致從成熟葉片中輸送的山梨醇量減少，最終成熟葉片中山梨醇積累，使山梨醇-6-磷酸脫氫酶(合成山梨醇的酶)的活性下降[38]。其他試驗(yàn)也觀察到了同樣的現(xiàn)象[39]。且水分脅迫抑制了山梨醇和葡萄糖向淀粉的轉(zhuǎn)化，表明山梨醇是衡量水分脅迫后溶質(zhì)變化的有效指標(biāo)[40]。山梨醇轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(SOT)是山梨醇運(yùn)轉(zhuǎn)的重要載體，研究表明，SOT也參與了植物脅迫響應(yīng)進(jìn)程，如干旱脅迫時(shí)蘋(píng)果根、韌皮部及葉片等源器官內(nèi)山梨醇含量上升，同時(shí)3和5在上述部位的表達(dá)量也顯著上升[41]。也有報(bào)道認(rèn)為，環(huán)境脅迫下山梨醇含量的增加是因?yàn)?基因在逆境條件下的表達(dá)量升高，從而促進(jìn)了山梨醇的合成，其他幾個(gè)試驗(yàn)也觀察到了同樣的現(xiàn)象[42-44]。Alcobendas等[45]研究結(jié)果表明，和充分灌溉相比，調(diào)虧灌溉桃樹(shù)果實(shí)中含有更多的山梨醇，與Dietrich等[46]研究未灌溉果樹(shù)的水果汁中山梨醇含量增加結(jié)果相符。張釗[47]分析了蘋(píng)果樹(shù)在短期干旱脅迫下山梨醇含量變化，結(jié)果表明干旱脅迫下山梨醇合成的增加改變了蘋(píng)果樹(shù)葉片中的糖平衡，引起了糖代謝模式的改變，以適應(yīng)蘋(píng)果樹(shù)葉片中碳流的改變和植物存活對(duì)碳的需要；為進(jìn)一步探明山梨醇在蘋(píng)果樹(shù)抗旱性中的作用，該研究分析了山梨醇合成受抑制的基因，發(fā)現(xiàn)山梨醇不僅作為滲透調(diào)節(jié)劑調(diào)控著葉片的水勢(shì)和保水力，影響植物抗旱性，同時(shí)山梨醇也調(diào)控著植物葉片氣孔保衛(wèi)細(xì)胞的開(kāi)張度，山梨醇合成的降低使干旱條件下保衛(wèi)細(xì)胞的開(kāi)張度較大，增加了水分散失。這些研究表明山梨醇在因水分脅迫而引起的滲透調(diào)節(jié)中可能起主要作用，從而提高了抗性[48-49]。有證據(jù)表明，外源山梨醇的施加能增強(qiáng)植株的耐旱性。孟艷玲等[5]測(cè)定了干旱脅迫下，外源噴施一定濃度的山梨醇后平邑甜茶生理生化指標(biāo)的變化，結(jié)果表明葉片噴施山梨醇可以改善受脅迫植株的光合狀況，減緩葉片水勢(shì)下降，減少新梢生長(zhǎng)受抑，提高植株耐旱性。因此，缺水脅迫下山梨醇(內(nèi)源與外源)有助于植物生長(zhǎng)。另有試驗(yàn)表明，山梨醇亦可加強(qiáng)哺乳動(dòng)物細(xì)胞對(duì)干燥過(guò)程的耐受力[50]。

1.3 山梨醇對(duì)植物耐鹽性的影響

鹽脅迫是目前限制農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的主要非生物因素之一。鹽分通過(guò)滲透脅迫和離子平衡的破壞影響植物的性能，從而導(dǎo)致代謝紊亂，生物量下降，影響植物體正常的生長(zhǎng)發(fā)育[51-52]。其對(duì)滲透壓的影響主要是增加體內(nèi)過(guò)氧化氫(H2O2)等活性氧的含量，破壞大分子如脂類(lèi)、蛋白質(zhì)和核酸的結(jié)構(gòu)[53-54]。山梨醇已被證實(shí)參與應(yīng)對(duì)鹽脅迫的響應(yīng)。

將6-磷酸山梨醇脫氫酶基因()導(dǎo)入植物，6的表達(dá)可使轉(zhuǎn)基因植株產(chǎn)生山梨醇[55-56]；Gao等[57]利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)葉盤(pán)轉(zhuǎn)化法將6基因cDNA 導(dǎo)入柿中，獲得了耐鹽能力明顯提高的轉(zhuǎn)基因植株，且在一定范圍內(nèi)轉(zhuǎn)基因植株內(nèi)的山梨醇的含量同抗脅迫能力呈正相關(guān)。陳述[58]將基因轉(zhuǎn)入毛白楊植株中，與對(duì)照相比，轉(zhuǎn)基因植株耐鹽性明顯提高，轉(zhuǎn)基因植株能夠在150 mmol/L NaCl 脅迫下存活生長(zhǎng)，而對(duì)照只能在75 mmol/L NaCl 脅迫下存活。這些結(jié)果均表明山梨醇與植物的耐鹽能力有關(guān)。王慧中和黃大年[59]及劉俊君等[60]的研究也得出了類(lèi)似的結(jié)果。此時(shí)山梨醇含量的增加是因?yàn)榛蛟谀婢硹l件下的表達(dá)升高，從而促進(jìn)山梨醇的積累。他們認(rèn)為胞液間的不平衡引起了山梨醇的積累，而山梨醇的積累又促進(jìn)了植物的光合作用，進(jìn)而提高植物耐鹽性。這種效應(yīng)在其他植物上的效果也很顯著。在鹽脅迫下，番茄葉片中醛糖還原酶活性和山梨醇含量升高可使植株抗鹽性提高[61]。Pommerrenig等[62]分析鹽脅迫下大車(chē)前植物葉片中山梨醇和蔗糖的含量，發(fā)現(xiàn)在維管束富集的組織和葉片的韌皮部汁液中都檢測(cè)到了山梨醇的積累，而葉片中蔗糖的含量則很少；NaCl 處理的試驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)，在韌皮部汁液中山梨醇/蔗糖的比值增加，這表明山梨醇是響應(yīng)鹽脅迫十分敏感的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)。因此推測(cè)鹽脅迫下山梨醇的合成能增強(qiáng)植物抵抗鹽脅迫的能力。楊洪兵和楊世平[63]研究發(fā)現(xiàn)適當(dāng)濃度的山梨醇處理可顯著促進(jìn)鹽脅迫下蕎麥種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)，增加幼苗根系活力，改善鹽脅迫下蕎麥幼苗的生理特性[64]，與趙京剛和張蒼梅[65]研究結(jié)果相似。汪鑫[66]研究結(jié)果表明，鹽脅迫下一定濃度的山梨醇-硼酸復(fù)合物能減輕脅迫條件小麥幼苗對(duì)水吸收的抑制作用，顯著提高超氧化物歧化酶(SOD)的活性和降低丙二醛(MDA)的含量，并參與多種代謝調(diào)節(jié)，從而提高耐鹽性，減輕鹽脅迫下對(duì)小麥幼苗生長(zhǎng)發(fā)育的影響。楊艷華等[6]研究表明外源噴施一定濃度的山梨醇對(duì)兩優(yōu)培九和武運(yùn)粳7 號(hào)抵抗鹽脅迫具有一定的緩解作用。Theerakulpisut和Gunnula[67]探究了山梨醇作為滲透調(diào)節(jié)劑對(duì)兩個(gè)水稻品種(鹽敏感型：KDML105和耐鹽型：PK)生長(zhǎng)和生理特性的影響，結(jié)果表明，鹽脅迫下外源山梨醇可以緩解KDML105生長(zhǎng)抑制，同時(shí)減少體內(nèi)H2O2和MDA的含量來(lái)減緩鹽害對(duì)其的影響。Jain等[68]研究表明外源山梨醇能增加滲透脅迫下玉米幼苗的干重，這也證實(shí)了Theerakulpisut和Gunnula[67]的研究結(jié)果。

1.4 山梨醇對(duì)植物耐寒性的影響

低溫是影響溫帶植物生長(zhǎng)的重要非生物脅迫因子之一。山梨醇與植物抗寒性關(guān)系密切[69]。在植物越冬期間，溫帶植物通過(guò)代謝促進(jìn)糖醇(山梨醇、甘露醇等)、可溶性糖(蔗糖、海藻糖等)、低分子量含氮化合物(脯氨酸、甜菜堿等)等冷凍保護(hù)劑的合成，來(lái)提高自身的耐寒性[29]。Hirai等[70]研究發(fā)現(xiàn)，枇杷葉片中山梨醇含量冬季約為夏季的2倍，到春季下降；研究蘋(píng)果幼樹(shù)休眠前后可溶性糖的成分、分布及變化發(fā)現(xiàn)，秋、冬樹(shù)體內(nèi)的糖分主要為山梨醇，占60% ~ 80%，春季儲(chǔ)藏器官中山梨醇含量下降[71]。結(jié)合低溫對(duì)6及其基因表達(dá)的影響，以上研究表明逆境下山梨醇濃度的增加主要是因?yàn)?基因在轉(zhuǎn)錄水平的增加引起的。推測(cè)植物中的山梨醇具有抵御冷害的作用，類(lèi)似于甘露醇起到清除活性氧的作用[38]。有證據(jù)表明，山梨醇可以顯著增加過(guò)氧化物酶(POD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)的活性，降低葉片MDA的含量[63]。推測(cè)山梨醇的施加可能通過(guò)酶活性的增加清除自由基，減緩積累傷害，提高植物自身低溫適應(yīng)能力，和外源甜菜堿作用機(jī)理相似[72]。

在生長(zhǎng)季節(jié)，光合作用光反應(yīng)強(qiáng)，過(guò)多的煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)不能透過(guò)葉綠體的膜疏散到細(xì)胞質(zhì)，過(guò)多的同化力會(huì)對(duì)葉綠體的結(jié)構(gòu)造成損傷。而山梨醇的合成可以利用部分NADPH，緩解對(duì)其葉綠體結(jié)構(gòu)造成的損傷。在非生長(zhǎng)季，根據(jù)山梨醇的含量在植物體內(nèi)季節(jié)性的變化，它被認(rèn)為是薔薇科植物抗凍性起作用的一種儲(chǔ)藏物質(zhì)。Chen等[73]探討糖醇和蛋白質(zhì)在冷凍干燥過(guò)程中對(duì)保加利亞乳桿菌(LB6)生存的影響，結(jié)果表明山梨醇和蛋白質(zhì)的組合對(duì)其成活率有積極的作用效果，并為進(jìn)一步研究糖醇和蛋白質(zhì)組合作為L(zhǎng)B6的凍干保護(hù)劑提供了依據(jù)。徐剛標(biāo)等[74]研究表明山梨醇作為冷凍保護(hù)劑對(duì)銀杏愈傷組織的保護(hù)有良好的效果。謝玉明等[75]研究荔枝胚性懸浮細(xì)胞玻璃化法超低溫保存的一些因素，建立了玻璃化法超低溫保存荔枝胚性懸浮細(xì)胞的凍存程序，證明0.4 mol/L山梨醇預(yù)培養(yǎng)2 d的胚性懸浮細(xì)胞適合作為超低溫保存的材料。在杏愈傷組織和原生質(zhì)體的超低溫保存中，一定濃度的二甲基亞砜(DMSO)和山梨醇作為冰凍保護(hù)劑，可使杏的原生質(zhì)體和愈傷組織在–40℃下保存[76-77]。后續(xù)的研究也證明了這種冰凍保護(hù)劑的保存效果[78]。劉一盛等[79]探索了山梨醇對(duì)馬鈴薯試管苗低溫保存的影響，結(jié)果表明山梨醇能顯著延緩馬鈴薯試管苗的生長(zhǎng)，這與吳京姬等[80]的研究相符。楊波等[81]研究低溫保護(hù)劑與其分子結(jié)構(gòu)的關(guān)系，表明添加山梨醇的低溫保護(hù)液后，低溫保護(hù)效果最好。另有試驗(yàn)表明，越冬昆蟲(chóng)體內(nèi)聚集山梨醇等小分子抗凍保護(hù)劑，有助提高昆蟲(chóng)機(jī)體的耐寒性[82]。

1.5 山梨醇對(duì)其他脅迫的影響

隨著全球環(huán)境的變化，各氣候要素也發(fā)生改變，其中高溫現(xiàn)象持續(xù)的時(shí)間越來(lái)越長(zhǎng)且愈加頻發(fā)，成為影響干旱半干旱地區(qū)植物生長(zhǎng)最主要的因素之一。太陽(yáng)輻射可以對(duì)植物生物大分子產(chǎn)生直接傷害，同時(shí)又激發(fā)植物體活性氧的產(chǎn)生而引起氧化傷害[83]。植物生長(zhǎng)在根本上取決于光合作用強(qiáng)度的大小，其作為一個(gè)高熱敏感性生理過(guò)程能被高溫脅迫顯著抑制[84-86]。高溫和高輻射對(duì)果實(shí)品質(zhì)也有很大影響，比如在果實(shí)硬度、果實(shí)可溶性固形物含量及外表色澤的發(fā)展等方面[87-88]。有研究表明，山梨醇可能起到一種抗氧化劑的作用，可清除活性氧，在抗氧化酶系統(tǒng)(SOD、POD、CAT)的協(xié)同作用下精密調(diào)控活性氧的平衡[89]。同時(shí)國(guó)內(nèi)的一些學(xué)者也證實(shí)了山梨醇可顯著增加抗氧化酶系統(tǒng)的活性[63]。這可能是解決光照引起的對(duì)水果高輻射和表皮高溫問(wèn)題的關(guān)鍵。Muizzuddin等[90]研究了表皮角質(zhì)細(xì)胞在添加外源山梨醇后能否避免高滲透脅迫，通過(guò)評(píng)估含有山梨醇制劑在干旱和濕潤(rùn)地區(qū)的使用效果，結(jié)果發(fā)現(xiàn)山梨醇表現(xiàn)出顯著的皮膚屏障修復(fù)和保濕能力。Chae等[91]研究表明外源山梨醇可被用來(lái)生產(chǎn)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)(海藻糖)或者直接作為能源物質(zhì)(葡萄糖)。另有試驗(yàn)表明，在高溫脅迫下，昆蟲(chóng)可能通過(guò)合成小分子物質(zhì)來(lái)抵御高溫傷害[92]。山梨醇與植物抗火疫病的能力密切相關(guān)。Suleman和Steiner[93]在研究了蘋(píng)果不同葉齡的葉片與火疫病發(fā)生強(qiáng)度的關(guān)系后發(fā)現(xiàn)，成熟葉片比幼葉有更強(qiáng)的抗病能力，他們認(rèn)為這是由于成熟葉片中山梨醇的含量更高，這些葉片中的細(xì)胞進(jìn)而有更高的滲透調(diào)節(jié)能力去抵御火疫病的發(fā)生。

2 山梨醇對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育的影響

2.1 對(duì)植物養(yǎng)分吸收及品質(zhì)提升的影響

營(yíng)養(yǎng)缺乏將嚴(yán)重干擾植物正常的生長(zhǎng)發(fā)育。有證據(jù)表明，山梨醇能提高植物對(duì)硼的利用效率[94]。在植物體內(nèi)，硼是一種可重復(fù)利用元素，老葉中的硼能夠向新葉中轉(zhuǎn)移[95]。研究發(fā)現(xiàn)山梨醇能與硼形成復(fù)合體，使硼在韌皮部中的運(yùn)輸能力增強(qiáng)，從而提高植物對(duì)硼虧缺的抵抗力[96-97]。Brown等[96]利用轉(zhuǎn)基因手段再次證明了山梨醇可以促進(jìn)植物體內(nèi)硼的吸收利用。Ohta等[98]發(fā)現(xiàn)分解山梨醇的酶廣泛分布在番茄的不同組織器官內(nèi)，認(rèn)為番茄內(nèi)山梨醇與硼的轉(zhuǎn)運(yùn)有關(guān)。另外外源添加14C標(biāo)記山梨醇的結(jié)果表明，山梨醇可以通過(guò)主動(dòng)運(yùn)輸很快進(jìn)入韌皮部[99]。因此，山梨醇分子量小、溶解度高、性質(zhì)比較穩(wěn)定很難被代謝消耗的特點(diǎn)使其作為薔薇科植物主要的運(yùn)輸物質(zhì)形式，從合成部位運(yùn)輸?shù)酱x或儲(chǔ)存部位?；舻萚9]探究了棉花葉片噴施山梨醇和硼混合樣，結(jié)果表明，植株吸硼量比單純施硼提高了38%，生殖器官的硼吸收量提高了23.28%，山梨醇顯著提高了棉花體內(nèi)硼的再分配與利用效率。

國(guó)內(nèi)的學(xué)者探究了外源山梨醇與植物養(yǎng)分吸收的關(guān)系，并取得了一些成果。研究表明，對(duì)蘋(píng)果果面噴施2% 山梨醇，可在一定程度上提高果實(shí)內(nèi)在品質(zhì)[100]。研究發(fā)現(xiàn)[10,101]外源山梨醇可提高發(fā)育期果實(shí)的山梨醇脫氫酶(SDH)和山梨醇氧化酶(SOX)的活性，在果實(shí)發(fā)育后期，新紅星蘋(píng)果果實(shí)的果糖和葡萄糖積累較為顯著。這可能是輸入山梨醇轉(zhuǎn)化的結(jié)果[102]。其他試驗(yàn)也觀察到了同樣的現(xiàn)象[103-104]。總糖含量被認(rèn)為是反映果實(shí)品質(zhì)重要的指標(biāo)[105]。周平等[106]采用外源山梨醇200 mg/L噴施樹(shù)體，結(jié)果表明，其能顯著提高大久保桃果實(shí)中的蔗糖含量，影響了其他糖組分的平衡；這表明外源山梨醇可以作為一種栽培措施促進(jìn)果實(shí)中特定糖的積累，改善果實(shí)口感。于會(huì)麗等[8]研究表明葉片噴施一定濃度的山梨醇能有效提高小油菜對(duì)氮、磷、鉀養(yǎng)分的吸收，促進(jìn)其生長(zhǎng)。丁雙雙等[107]也證實(shí)了葉面噴施糖醇能有效增加小白菜的生物量，促進(jìn)其對(duì)中微量元素的吸收，提升白菜品質(zhì)，沈欣等[108]的研究結(jié)果與上述兩例相似。綜合以上研究結(jié)果可以看出，配合外源施加山梨醇不僅可提高肥料的利用率，而且對(duì)作物的生長(zhǎng)、品質(zhì)及抗逆性方面具有良好的效果。除此之外，山梨醇良好的保濕和保鮮的特性，有利于延長(zhǎng)成熟后的果品保存期，另外山梨醇進(jìn)入人體后能在肝臟中轉(zhuǎn)化為果糖被代謝吸收的特性亦有助于提高作物品質(zhì)[109]。

2.2 可以作為組織培養(yǎng)的優(yōu)質(zhì)碳源

目前，組織培養(yǎng)多以蔗糖作為碳源物質(zhì)。但是，對(duì)于某些薔薇科植物來(lái)說(shuō)，山梨醇也許是一種更好的碳源。目前，已有大量研究表明，通過(guò)添加山梨醇可以顯著提高植物愈傷組織生長(zhǎng)及分化再生的能力。Feng等[110]學(xué)者研究表明，山梨醇促進(jìn)水稻愈傷組織植株再生頻率的同時(shí)也作為一種化學(xué)信號(hào)來(lái)直接或間接地改變基因表達(dá)。山梨醇可作為蘋(píng)果[111]和砧木、杏[112]和梨[113]等果樹(shù)愈傷組織生長(zhǎng)的適宜碳源，既可以得到較高的增殖倍數(shù)，又有利于芽的生長(zhǎng)。Ahmad和Ali[114]以桃砧木GF677試管苗為材料，探討山梨醇和蔗糖作為培養(yǎng)基碳源對(duì)其不定芽增殖和生根的影響，結(jié)果表明山梨醇的效果更好。對(duì)蘋(píng)果砧木M9和M26的研究發(fā)現(xiàn)，山梨醇是莖尖快繁適宜的碳源[115]。王亞琴等[11]研究發(fā)現(xiàn)，山梨醇不僅可以提高愈傷組織的誘導(dǎo)率，而且對(duì)植株生長(zhǎng)有顯著的促進(jìn)作用。Geng等[116]以4個(gè)水稻品種的成熟胚為材料，在愈傷組織的誘導(dǎo)、繼代和分化3個(gè)培養(yǎng)階段添加不同濃度的山梨醇觀察分化效果，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，一定濃度的山梨醇可以顯著提高愈傷組織分化率，與前人的研究相符[117]。Markovic等[118]通過(guò)體外培養(yǎng)探究不同濃度的山梨醇對(duì)處于增殖期中華石竹生長(zhǎng)發(fā)育的影響，得到的結(jié)果表明，山梨醇對(duì)其生長(zhǎng)發(fā)育有積極的影響；同時(shí)其也可作為中華石竹體外培養(yǎng)的一種能源。林順權(quán)和陳振光[119]發(fā)現(xiàn)，枇杷原生質(zhì)體起源的愈傷組織，只有轉(zhuǎn)入3% 或5% 的山梨醇為碳源的培養(yǎng)基中，才能分化莖原基并進(jìn)而再生植株。以上這些研究證明山梨醇在愈傷組織繼代培養(yǎng)中促進(jìn)愈傷組織生長(zhǎng)，提高其適應(yīng)環(huán)境脅迫的能力[120]。

3 展望

山梨醇合成相對(duì)簡(jiǎn)單，可以?xún)?nèi)源產(chǎn)生山梨醇的植物多屬于薔薇科木本植物，但產(chǎn)生的山梨醇的濃度有限，所以外源山梨醇對(duì)保護(hù)植物在脅迫條件下的生長(zhǎng)具有重要意義。外源山梨醇提高抗逆性的研究已取得很大進(jìn)展，但在機(jī)理上和農(nóng)業(yè)應(yīng)用上仍然存在一些問(wèn)題需要深入探究。

1)前人對(duì)山梨醇的研究，多集中于山梨醇含量及相關(guān)酶含量變化規(guī)律等方面，對(duì)分子機(jī)制方面的研究尚不深入。因此研究山梨醇及其代謝相關(guān)酶的調(diào)節(jié)機(jī)理，尤其是增強(qiáng)植物耐受各種非生物脅迫的機(jī)制方面，以及將基因工程和常規(guī)育種結(jié)合起來(lái)發(fā)展新的耐逆品種將成為今后研究的方向。

2)當(dāng)前研究大多建立在局部的形態(tài)指標(biāo)或生理生化指標(biāo)的基礎(chǔ)上，主要針對(duì)作物的萌發(fā)期或幼苗時(shí)期等短期環(huán)境脅迫，在實(shí)際應(yīng)用上還有一定的局限性。并且已有的文獻(xiàn)資料更多專(zhuān)注于單一環(huán)境因子脅迫研究，但實(shí)際環(huán)境的脅迫是復(fù)雜的、交互的。結(jié)合作物在不同的生長(zhǎng)發(fā)育階段、各種環(huán)境因子的共同作用下可能具有不同的響應(yīng)方式，以及對(duì)長(zhǎng)期環(huán)境脅迫下添加外源山梨醇的作用效果研究，尤其是復(fù)雜環(huán)境脅迫下植物的抗脅迫生理機(jī)制和提高其適應(yīng)機(jī)制的研究和探討還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不足，應(yīng)進(jìn)一步加強(qiáng)。

3)我國(guó)農(nóng)業(yè)當(dāng)前面臨的一重大問(wèn)題是肥料利用率低下，這嚴(yán)重制約綠色環(huán)保農(nóng)業(yè)的發(fā)展，如何充分利用山梨醇在植物韌皮部運(yùn)輸?shù)奶攸c(diǎn)(山梨醇可與多種金屬元素形成螯合物，不容易被植株韌皮部堿性環(huán)境所固定，提高營(yíng)養(yǎng)元素的有效性)，結(jié)合合理施肥方式，促進(jìn)肥料的吸收利用亦是今后農(nóng)業(yè)科學(xué)家要面對(duì)的重要課題。

[1] Liu D F, Ni J B, Wu R Y, et al. High temperature alters sorbitol metabolism in pyrus pyrifolia leaves and fruit flesh during late stages of fruit enlargement[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 2013, 138(6): 443–451

[2] 肖艷. 我國(guó)新型水溶性微量元素肥料應(yīng)用現(xiàn)狀與展望[C]∥第七屆全國(guó)新型肥料學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集. 大連: 中國(guó)植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)會(huì), 2016: 152–159

[3] 潘欣. 轉(zhuǎn)4、7基因耐鹽堿水稻的篩選與抗性分析[D]. 哈爾濱: 東北農(nóng)業(yè)大學(xué), 2010

[4] 王利彬. 大豆對(duì)干旱脅迫響應(yīng)及復(fù)水效應(yīng)的研究[D]. 哈爾濱: 東北農(nóng)業(yè)大學(xué), 2013

[5] 孟艷玲, 劉林, 白濤, 等. 干旱脅迫下外源山梨醇對(duì)平邑甜茶耐旱性影響[J]. 北方園藝, 2009(5): 69–70

[6] 楊艷華, 陳國(guó)祥, 劉少華, 等. 外源山梨醇對(duì)鹽脅迫下兩優(yōu)培九和武運(yùn)粳7號(hào)光合特性及類(lèi)囊體膜多肽組分的影響[J]. 中國(guó)水稻科學(xué), 2004, 18(3): 234–238

[7] 陳合, 張建華, 秦濤, 等. 山梨醇、甘露醇及甜菜堿等對(duì)兩歧雙歧桿菌凍干的影響[J]. 食品科技, 2014, 39(1): 19–23

[8] 于會(huì)麗, 林治安, 李燕婷, 等. 噴施小分子有機(jī)物對(duì)小油菜生長(zhǎng)發(fā)育和養(yǎng)分吸收的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2014, 20(6): 1560–1568

[9] 虎凈, 危常州, 馬小娟, 等. 不同施硼方法對(duì)棉花硼素吸收與轉(zhuǎn)運(yùn)的影響[J]. 石河子大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2015, 33(3): 270–274

[10] 葉成榮, 劉更森, 王永章, 等. 外源糖對(duì)蘋(píng)果果實(shí)山梨醇代謝相關(guān)酶活性的影響[J]. 天津農(nóng)業(yè)科學(xué), 2011, 17(3): 5–8

[11] 王亞琴, 梁承鄴. 秈稻不育系中A完善再生系統(tǒng)的研究[J]. 中山大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2006, 45(5): 81–84

[12] Sreenivasulu U N, Sopory S K, Kavi Kishor P B. Deciphering the regulatory mechanisms of abiotic stress tolerance in plants by genomic approaches[J]. Gene, 2007, 388(1/2): 1–13

[13] Santos H, Costa M S D. Compatible solutes of organisms that live in hot saline environments[J]. Environmental Microbiology, 2002, 4(9): 501–509

[14] 杜金友, 陳曉陽(yáng), 李偉, 等. 干旱脅迫誘導(dǎo)下植物基因的表達(dá)與調(diào)控[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2004(2): 10–14

[15] 張任凡, 樊美麗, 魏凌云, 等. 水分條件對(duì)陜西安康地區(qū)枇杷幼果期生理的影響[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2015, 42(4): 778–784

[16] Macchi F, Eisenkolb M, Kiefer H, et al. The effect of osmolytes on protein fibrillation[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2012, 13(3): 3801–19

[17] Chaves M M, Maroco J P, Pereira J S. Understanding plant responses to drought - from genes to the whole plant[J]. Functional Plant Biology, 2003, 30(3): 239–264

[18] Kanayama Y. Physiological roles of polyols in horticultural crops[J]. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 2009, 78(2): 158–168

[19] Liang D, Cui M, Wu S, et al. Genomic structure, sub-cellular localization, and promoter analysis of the gene encoding sorbitol-6-phosphate dehydrogenase from apple[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 2012, 30(4): 904–914

[20] Burg M B, Ferraris J D, Dmitrieva N I. Cellular response to hyperosmotic stresses [J]. Physiological Reviews, 2007, 87(4):1441–1474

[21] Loescher W H. Physiology and metabolism of sugar alcohols in higher plants[J]. Physiologia Plantarum. 1987, 70(3): 553–557

[22] Ahmad I, Larher F, Stewart G R. Sorbitol, a compatible osmotic solute in plantagomaritima[J]. New Phytologist, 1979, 82(3): 671–678

[23] Pharr D M, Stoop J M H, Williamson J D, et al. The dual role of mannitol as osmoprotectant and photoassimilate in celery[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 1995, 30(6): 1182–1188

[24] Nazar R, Umar S, Khan N A, et al. Salicylic acid supplementation improves photosynthesis and growth in mustard through changes in proline accumulation and ethylene formation under drought stress[J]. South African Journal of Botany, 2015, 98: 84–94

[25] Xu Z Z, Zhou G S, Shimizu H. Plant responses to drought and rewatering[J]. Plant Signaling & Behavior, 2010, 5(6): 649–654

[26] Langridge P, Reynolds M P. Genomic tools to assist breeding for drought tolerance[J]. Current Opinion in Biotechnology, 2015, 32: 130–135

[27] Apel K, Hirt H. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology, 2004, 55(1): 728–749

[28] Zahed H, Mohammad-Zaman N, Setsuko K. Plant cell organelle proteomics in response to abiotic stress[J]. Journal of Proteome Research, 2012, 11(1): 37–48

[29] Janska A, Marsik P, Zelenkova S, et al. Cold stress and acclimation-what is important for metabolic adjustment?[J]. Plant Biology, 2010, 12(3): 395–405

[30] Hoekstra F A, Golovina E A, Buitink J. Mechanisms of plant desiccation tolerance[J]. Trends in Plant Science, 2001, 6(9): 431–438

[31] Ramanjulu S, Bartels D. Drought-and desiccation-induced modulation of gene expression in plants[J]. Plant Cell & Environment, 2002, 25(2): 141–151

[32] Sairam R K, Tyagi A. Physiology and molecular biology of salinity stress tolerance in plants[J]. Current Science, 2004, 86(3): 407–421

[33] Ranney T, Bassuk N L, Whitlow T H. Osmotic adjustment and solute constituents in leaves and roots of water-stressed cherry trees[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 1991, 116(1): 684–688

[34] 杜金偉. 水分脅迫對(duì)山杏抗旱生理指標(biāo)及解剖構(gòu)造的影響[D]. 呼和浩特: 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009

[35] Wang Z C, Stutte G W. The role of carbohydrates in active osmotic adjustment in apple under water stress[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 1992, 117(5): 816–823

[36] Jie Z, Yao Y C, Streeter J G, et al. Influence of soil drought stress on photosynthesis, carbohydrates and the nitrogen and phophorus absorb in different section of leaves and stem of Fugi/M.9EML, a young apple seedling[J]. African Journal of Biotechnology, 2010, 9(33): 5320–5325

[37] Kobashi K, Gemma H, Iwahori S. Abscisic acid content and sugar metabolism of peaches grown under water stress[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 2000, 125(4): 425–428

[38] Bianco R L, Rieger M, Sung S J S. Effect of drought on sorbitol and sucrose metabolism in sinks and sources of peach[J]. Physiologia Plantarum, 2000, 108(1): 71–78

[39] 柴成林, 李紹華, 徐迎春. 水分脅迫期間及脅迫解除后桃樹(shù)葉片中的碳水化合物代謝[J]. 植物生理學(xué)通訊, 2001, 37(6): 495–498

[40] 李天紅, 李紹華. 水分脅迫對(duì)蘋(píng)果苗非結(jié)構(gòu)性碳水化合物組分及含量的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2002, 18(4): 35–39

[41] Li F, Lei H, Zhao X, et al. Characterization of three sorbitol transporter genes in micropropagated apple plants grown under drought stress[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 2012, 30(1): 123–130

[42] Jie Z. Influence of soil drought stress on photosynthesis, carbohydrates and the nitrogen and phosphorus absorb in different section of leaves and stem of Fugi/M.9EML, a young apple seedling[J]. African Journal of Biotechnology, 2010, 9(33): 5320–5325

[43] 徐迎春, 李紹華, 柴成林, 等. 水分脅迫期間及脅迫解除后蘋(píng)果樹(shù)源葉碳同化物代謝規(guī)律的研究[J]. 果樹(shù)學(xué)報(bào), 2001, 18(1): 1–6

[44] 王有年, 杜方, 于同泉, 等. 水分脅迫對(duì)桃葉片碳水化合物及其相關(guān)酶活性的影響[J]. 北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào), 2001, 16(4): 9–14

[45] Alcobendas R, Mirás-Avalos J M, Alarcón J J, et al. Effects of irrigation and fruit position on size, colour, firmness and sugar contents of fruits in a mid-late maturing peach cultivar[J]. Scientia Horticulturae, 2013, 164(164): 340–347

[46] Dietrich H, Krüger-Steden E, Patz C D, et al. Increase of sorbitol in pear and apple juice by water stress, a consequence of climatic change?[J]. Fruit Processing Journal for the Fruit Processing & Juice Producing European & Overseas Industry, 2007, 17: 348–355

[47] 張釗. 山梨醇和蔗糖在蘋(píng)果抵抗干旱脅迫中的作用研究[D]. 陜西咸陽(yáng): 西北農(nóng)林科技大學(xué), 2016

[48] Li T H, Li S H. Leaf responses of micropropagated apple plants to water stress: nonstructural carbohydrate composition and regulatory role of metabolic enzymes[J]. Tree Physiology, 2005, 25(4): 495–504

[49] 張潔, 高琛稀, 宋春暉, 等. 干旱脅迫對(duì)不同蘋(píng)果砧穗組合根系形態(tài)與生理特性的影響[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2015, 24(12): 92–98

[50] Sitaula R, Fowler A M, Bhowmick S. A study of the effect of sorbitol on osmotic tolerance during partial desiccation of bovine sperm[J]. Cryobiology, 2010, 60(3): 331–336

[51] Mahajan S, Tuteja N. Cold, salinity and drought stresses: An overview[J]. Archives of Biochemistry Biophysics, 2005, 444(2): 139–158

[52] 崔云玲, 王生錄, 陳炳東, 等. 不同品種油葵對(duì)鹽脅迫響應(yīng)研究[J]. 土壤學(xué)報(bào), 2011, 48(5): 1051–1058

[53] Mudgal V, Madaan N, Mudgal A. Biochemical mechanisms of salt tolerance in plants: a review[J]. International Journal of Botany, 2010, 6(2): 136–143

[54] Parihar P, Singh S, Singh R, et al. Effect of salinity stress on plants and its tolerance strategies: A review[J]. Environmental Science & Pollution Research, 2015, 22(6): 4056–4075

[55] 劉巖, 王國(guó)英, 劉俊君, 等. 大腸桿菌gutD基因轉(zhuǎn)入玉米及耐鹽轉(zhuǎn)基因植株的獲得[J]. 中國(guó)科學(xué): 生命科學(xué), 1998, 28(6): 542–547

[56] Tao R, Uratsu S L, Dandekar A M. Sorbitol synthesis in transgenic tobacco with apple cDNA encoding NADP-dependent sorbitol-6-phosphate dehydrogenase[J]. Plant & Cell Physiology, 1995, 36(3): 525–532

[57] Gao M, Tao R, Miura K, et al. Transformation of Japanese persimmon (.) with apple cDNA encoding NADP-dependent sorbitol-6-phosphate dehydro-genase[J]. Plant Science, 2001, 160(5): 837–845

[58] 陳述. 轉(zhuǎn)雙價(jià)基因毛白楊大田耐鹽性研究[D]. 北京: 北京林業(yè)大學(xué), 2010

[59] 王慧中, 黃大年. 轉(zhuǎn)雙價(jià)基因水稻的耐鹽性[J].科學(xué)通報(bào), 2000, 45(7): 724–729

[60] 劉俊君, 黃紹興, 彭學(xué)賢, 等. 高度耐鹽雙價(jià)轉(zhuǎn)基因煙草的研究[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 1995, 11(4): 381–384

[61] Tari I, Kiss G, Deer A K, et al. Salicylic acid increased aldose reductase activity and sorbitol accumulation in tomato plants under salt stress[J]. Biologia Plantarum, 2010, 54 (4): 677–683

[62] Pommerrenig B, Papiniterzi F S, Sauer N. Differential regulation of sorbitol and sucrose loading into the phloem of plantago major in response to salt stress[J]. Plant Physiology, 2007, 144(2): 1029–1038

[63] 楊洪兵, 楊世平. 甘露醇和山梨醇對(duì)蕎麥幼苗耐鹽性的效應(yīng)[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué), 2014, 53(2): 274–276

[64] 楊洪兵. 外源多元醇對(duì)鹽脅迫下蕎麥種子萌發(fā)及幼苗生理特性的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào), 2013, 28(4): 98–104

[65] 趙京剛, 張蒼梅. 山梨醇浸種對(duì)鹽脅迫下無(wú)花果發(fā)芽及幼苗生長(zhǎng)的影響[J]. 中國(guó)果菜, 2016, 36(7): 19–22

[66] 汪鑫. 不同形態(tài)硼對(duì)小麥幼苗的生理生化作用研究[D]. 揚(yáng)州: 揚(yáng)州大學(xué), 2008

[67] Theerakulpisut P, Gunnula W. Exogenous sorbitol and trehalose mitigated salt stress damage in salt-sensitive but not salt-tolerant rice seedlings[J]. Asian Journal of Crop Science, 2012, 4(4): 165–170

[68] Jain M, Tiwary S, Gadre R. Sorbitol-induced changes in various growth and biochemical parameters in maize[J]. Plant Soil & Environment, 2010, 56(6): 263–267

[69] Whetter J M, Taper C D. Seasonal occurrence of sorbitol (D-glucitol) in buds and leaves of malus[J]. Canadian Journal of Botany, 2011, 41(1): 175–177

[70] Hirai M. Seasonal change in sorbitol-6-phosphate dehydrogenase in loquat leaf[J]. Plant Cell Physiology, 1983, 24(5): 925–931

[71] 夏國(guó)海, 宋尚偉, 張大鵬, 等. 蘋(píng)果幼樹(shù)休眠前后可溶性糖和氨基酸的變化[J]. 園藝學(xué)報(bào), 1998, 25(2): 129–132

[72] 何麗丹, 劉廣明, 楊勁松, 等. 根施甜菜堿緩解黑麥草幼苗鹽脅迫效應(yīng)研究[J]. 土壤學(xué)報(bào), 2013, 50(5): 1054–1059

[73] Chen H, Chen S W, Chen H L, et al. Effects of sugar alcohol and proteins on the survival of Lactobacillus bulgaricus LB6 during freeze drying[J]. Acta Scientiarum Polonorum, 2015, 14(2): 117–124

[74] 徐剛標(biāo), 易文, 李美娥, 等. 銀杏愈傷組織超低溫保存的研究[J]. 林業(yè)科學(xué), 2001, 37(3): 30–34

[75] 謝玉明, 曾繼吾, 張秋明, 等. 玻璃化法超低溫保存荔枝胚性懸浮細(xì)胞[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào), 2008, 29(5): 622–625

[76] 馬鋒旺, 李嘉瑞. 杏原生質(zhì)體的超低溫保存[J]. 園藝學(xué)報(bào), 1998, 25(4): 329–332

[77] 馬鋒旺, 李嘉瑞. 杏愈傷組織的超低溫保存[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 1999, 19(1): 67–70

[78] 楊宇, 李東, 段麗曼, 等. 杏愈傷組織超低溫保存技術(shù)的研究[J]. 中國(guó)果樹(shù), 2011(3): 17–20

[79] 劉一盛, 何衛(wèi), 王西瑤, 等. 山梨醇延長(zhǎng)馬鈴薯試管苗低溫保存的效應(yīng)研究[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2015, 28(3): 1038–1041

[80] 吳京姬, 康哲秀, 郎賢波, 等. 利用山梨醇長(zhǎng)期保存馬鈴薯試管苗[J]. 馬鈴薯雜志, 2014, 28(1): 14–17

[81] 楊波, 劉寶林, 李娟. 低溫保護(hù)劑與其分子中羥基排列的關(guān)系[J]. 制冷學(xué)報(bào), 2015, 36(3): 114–118

[82] Yu Z J, Lu Y L, Yang X L, et al. Cold hardiness and biochemical response to low temperature of the unfed bush tick(Acari: Ixodidae)[J]. Parasi-tes & Vectors, 2014, 7(1): 1–7

[83] 靳月華, 杜英君, 劉桂珍. 遠(yuǎn)紫外輻射誘導(dǎo)紫杉產(chǎn)生的活性氧[J]. 植物學(xué)報(bào), 2001, 43(4): 380–384

[84] 白文波, 李品芳, 李保國(guó). NaCl和NaHCO3脅迫下馬藺生長(zhǎng)與光合特性的反應(yīng)[J]. 土壤學(xué)報(bào), 2008, 45(2): 328– 335

[85] Wang X, Cai J, Jiang D, et al. Pre-anthesis high-temperature acclimation alleviates damage to the flag leaf caused by post-anthesis heat stress in wheat[J]. Plant Physiology, 2011, 168(6): 585–593

[86] 張蓓蓓, 張輝, 甘卓亭, 等. 干旱高溫脅迫對(duì)小麥生長(zhǎng)及木聚糖含量的影響[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究, 2016, 34(1): 186–192

[87] Racsko J, Szabo Z, Nyeki J. Importance of the supraoptimal radiance supply and sunburn effects on the apple fruit quality[J]. Acta Biologica Szegediensis, 2005, 49(1/2): 111–114

[88] Schrader L E, Zhang J G, Sun J S, et al. Postharvest changes in internal fruit quality in apples with sunburn browning[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science, 2009, 134(1): 148–155

[89] Smirnoff N, Cumbes Q J. Hydroxyl radical scavenging activity of compatible solutes[J]. Phytochemistry, 1989, 28(4): 1057–1060

[90] Muizzuddin N, Ingrassia M, Marenus K D, et al. Effect of seasonal and geographical differences on skin and effect of treatment with an osmoprotectant: Sorbitol[J]. Journal of Cosmetic Science, 2013, 64(3): 165–174

[91] Chae Y K, Kim S H. Searching for Growth Conditions for Optimized Expression of Recombinant Proteins in Escherichia coli by Using Two-Dimensional NMR Spectroscopy[J]. Bulletin of the Korean Chemical Society, 2015, 36(1): 66–73

[92] 姜姍, 李帥, 張彬, 等. 極端高溫對(duì)西花薊馬存活、繁殖特性及體內(nèi)海藻糖、山梨醇含量的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2016, 49(12): 2310–2321

[93] Suleman P, Steiner P W. Relationship between sorbitol and solute potential in apple shoots relative to fire blight symptom development after infection by Erwinia amylovora[J]. Phytopathology, 1994, 84(10): 1244–1250

[94] Bellaloui N, Dandekar A, Brown P. Manipulation of in vivo sorbitol production alters boron uptake and transport in tobacco[J]. Plant Physiology, 1999, 119(2): 735–742

[95] Brown P H, Shelp B J. Boron mobility in plants[J]. Plant and Soil, 1997, 193: 85–101

[96] Brown P H, Bellaloui N, Hu H, et al. Transgenically enhanced sorbitol synthesis facilitates phloem boron transport and increases tolerance of tobacco to boron deficiency[J]. Plant Physiology, 1999, 119(1): 17–20

[97] 夏金嬋, 何奕騉. 植物對(duì)硼元素的吸收轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制[J]. 中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào), 2009, 25(8): 702–707

[98] Ohta K, Moriguchi R, Kanahama K, et al. Molecular evidence of sorbitol dehydrogenase in tomato, a non-Rosaceae plant[J]. Phytochemistry, 2005, 66(66): 2822–2828

[99] 周睿, 束懷瑞. 高等植物中的山梨醇及其代謝[J]. 植物生理學(xué)通訊, 1993, 29(5): 384–390

[100]高文勝. 有袋栽培體系下蘋(píng)果果實(shí)品質(zhì)發(fā)育及其相關(guān)因子研究[D]. 沈陽(yáng): 沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009

[101]王德孚, 楊志軍, 孫江妹, 等. 梨不同品種果實(shí)可溶性糖積累差異及代謝相關(guān)酶活性[J]. 果樹(shù)學(xué)報(bào), 2014(1): 30–38

[102]郭雪峰, 李紹華, 劉國(guó)杰, 等. 桃果實(shí)和葉片中糖分的季節(jié)變化及其與碳代謝酶活性的關(guān)系研究[J]. 果樹(shù)學(xué)報(bào), 2004, 21(3): 196–200

[103]楊?lèi)?ài)珍, 張志毅, 孟海玲, 等. 桃果實(shí)發(fā)育過(guò)程中山梨醇及酶活性變化[J]. 林業(yè)科學(xué), 2009, 45(5): 143–147

[104]鄧麗莉, 生吉萍. 蘋(píng)果果實(shí)糖代謝過(guò)程及其調(diào)控研究進(jìn)展[J]. 保鮮與加工, 2012, 12(1): 1–5

[105]Dugalic K, Sudar R, Viljevac M, et al. Sorbitol and sugar composition in plum fruits influenced by climatic conditions[J]. Journal of Agricultural Science & Technology, 2014, 16(5): 1145–1155

[106]周平, 郭瑞, 廖汝玉, 等. 噴施外源山梨醇對(duì)桃果實(shí)可溶性糖含量的影響[J]. 中國(guó)南方果樹(shù), 2015, 45(2): 119–121

[107]丁雙雙, 李燕婷, 袁亮, 等. 糖醇和氨基酸對(duì)小白菜鈣營(yíng)養(yǎng)及生長(zhǎng)、品質(zhì)的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2016, 22(3): 744–751

[108]沈欣, 袁亮, 李燕婷, 等. 小分子有機(jī)物質(zhì)螯合鈣肥的應(yīng)用效果[J]. 中國(guó)土壤與肥料, 2016(3): 87–92

[109]Makinen K K. Effect of long-term, peroral administration of sugar alcohols on man[J]. Swedish Dental Journal, 1984, 8(3): 113–124

[110]Feng X, Zhao P, Hao J, et al. Effects of sorbitol on expression of genes involved in regeneration of upland rice (L.)[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2011, 106(3): 455–463

[111]馬鋒旺, 王飛. 山梨醇作碳源對(duì)蘋(píng)果微體繁殖的效應(yīng)[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 1996, 24(4): 102–104

[112]Marino G, Bertazza G, Magnanini E, et al. Comparative effects of sorbitol and sucrose as main carbon energy sources in micropropagation of apricot[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 1993, 34(3): 235–244

[113]Kadota M, Imizu K, Hirano T. Double-phase in vitro culture using sorbitol increases shoot proliferation and reduces hyperhydricity in Japanese pear[J]. Scientia Horticulturae, 2001, 89(3): 207–215

[114]Ahmad T, Ali A. Comparison of sucrose and sorbitol as main carbon energy sources in micropropagation of peach rootstock GF-677[J]. Pakistan Journal of Botany, 2007, 39(4): 1269–1275

[115]Yaseen M, Ahmed T, Abbasi N A, et al. In vitro shoot proliferation competence of apple rootstocks M. 9 and M. 26 on different carbon sources[J]. Pakistan Journal of Botany, 2009, 41(4): 1781–1795

[116]Geng P P, La H G, Wang H Q, et al. Effect of sorbitol concentration on regeneration of embryogenic calli in upland rice varieties (L.)[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2008, 92(3): 303–313

[117]Cho J H, Lee J Y, Yong W K. Improvement of shoot regeneration from scutella-derived callus in rice[J]. Korean Journal of Crop Science, 2004, 49(1): 52–60

[118]Markovic M, Grbic M, Dukic M. Effect of sugar alcohol sorbitol on in vitro shoot development ofWaldst. et Kit[J]. Bulletin of the Faculty of Forestry, 2014, (109): 113–124

[119]林順權(quán), 陳振光. 山梨醇對(duì)枇杷原生質(zhì)體分離和培養(yǎng)的效應(yīng)[J]. 福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 1997, 26(4): 401–406

[120]郝建琴, 許語(yǔ)輝, 黃敏, 等. 山梨醇對(duì)栽培稻成熟胚愈傷組織分化的影響[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2014, 22(8): 983–991

Progresses in Study on Sorbitol Effect on Plants Resistance

YANG Guang1, LI Lingyu1, HUANG Mingli1, YANG Fanchang1, ZHANG Fengkui2, XU Rongchen2, YAN Dongyun1*

(1College of Environmental Science and Technology, Qingdao University, Qingdao, Shandong 266071, China; 2 Luhua Well Sunshine Ecotypic Fertilizer Co., Ltd., Tengzhou, Shandong 277527, China)

Sorbitol is an important plant endogenous compound, it has obtained wide and extensive attentions because it plays significant roles in regulating biological processes in plants on the defense and growth to resist various environmental stresses successfully. This paper reviewed the study advances in the changes of sorbitol contents in plants, the effects of exogenous sorbitol on enhancing plant uptake of nutrients under various stresses including drought, saline, low temperature and nutrition deficiency, and on improving the induction percentage of callus tissues, etc. The problems existed in current studies were also analyzed, which indicates that the study on the function mechanism of sorbitol should be emphasized in the future. This review is expected to provide some new insights in understanding the relationship between sorbitol and high efficiency agriculture.

Sorbitol;Abiotic stress; Plants; Stress tolerance

山東省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(2017GNC11116)，國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31400371；41705098)和產(chǎn)學(xué)研橫向課題(2016006)資助。

(yandongyun666@hotmail.com)

楊光(1993—)，男，山東滕州人，碩士研究生，研究方向?yàn)橥寥拉h(huán)境化學(xué)。E-mail：yangguang20152015@126.com

10.13758/j.cnki.tr.2018.03.002

Q945.78

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