胡永艷,孔申申
(北京大學(xué)第一醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,北京 100034)
輔助生殖技術(shù)(assisted reproductive technology,ART)已廣泛應(yīng)用于人類不育治療及家畜優(yōu)良種質(zhì)資源高效利用。體外受精(invitrofertilization,IVF)是一種關(guān)鍵的輔助生殖技術(shù)。在實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科學(xué)研究中,IVF技術(shù)常用于基因修飾小鼠的制作、冷凍保種、生物凈化以及快速擴(kuò)大繁殖等操作,通過使用IVF技術(shù)能夠大大提高基因修飾小鼠的繁殖效率和品系保存質(zhì)量,保持遺傳背景的穩(wěn)定性。IVF后代同正常受精后代小鼠在遺傳物質(zhì)上幾乎無差異,但目前動(dòng)物實(shí)驗(yàn)相關(guān)證據(jù)表明,IVF后代同正常受精鼠后代在生長(zhǎng)發(fā)育、器官組織生理特性、代謝等不同層面存在差異。本文通過分析綜述IVF對(duì)性別、生長(zhǎng)發(fā)育、行為學(xué)、壽命、器官和組織代謝以及分子表型等的影響,以期對(duì)IVF技術(shù)在基因修飾小鼠快速繁殖、凈化、保種等應(yīng)用中可能出現(xiàn)的問題提供一定的指導(dǎo)意義。
IVF小鼠同自然繁育后代小鼠相比,從植入前到產(chǎn)前階段有顯著的性別差異,IVF小鼠雄性增多。在植入前階段,雌性IVF胚胎似乎更容易受到IVF誘導(dǎo)的影響,包括凋亡百分比顯著增加,經(jīng)典的性別相關(guān)基因的表達(dá)異常(Xist、Hprt、Pgk1和Hsp70)。在妊娠中期,胚胎第13.5天(E13.5)IVF雄性胎兒的生存率高于IVF雌性胎兒(雄∶雌=1.33∶1),伴有雌性偏倚的妊娠丟失。妊娠晚期,E19.5 IVF雄性胎鼠性別比高(雄∶雌=1.48∶1)。出生后,IVF雄性鼠的生長(zhǎng)速度比其體內(nèi)胚胎雄性對(duì)照鼠高,而IVF雌性與體內(nèi)胚胎雌性呈現(xiàn)相似的生長(zhǎng)模式[1]。
性別比是生殖健康的一個(gè)重要指標(biāo),其性別失衡反映了胚胎發(fā)育的缺陷。IVF引發(fā)的表觀修飾錯(cuò)誤可能是造成性別失衡的主要原因。小鼠IVF后代的性別比例失衡是由于圍植入期雌性胚胎傾向性的發(fā)育異常所致。有研究發(fā)現(xiàn)雌性IVF附植前胚胎存在Xist表達(dá)抑制和印跡X染色體失活(imprinted X-chromosome inactivation,iXCI)異常的表觀修飾錯(cuò)誤,并發(fā)現(xiàn)在胚胎體外培養(yǎng)液中適時(shí)添加適量的視黃酸可以校正IVF引發(fā)的iXCI不足問題,并有效地校正出生性別比例[2]。
胚胎發(fā)育早期的環(huán)境應(yīng)激能夠影響出生后表型,這些生理表型可能出現(xiàn)于成年后。小鼠受精卵在營(yíng)養(yǎng)不充足的培養(yǎng)基中發(fā)育10 h即可改變出生體重和出生后的生長(zhǎng)[3]。Le等[4]以小鼠為研究對(duì)象,應(yīng)用常規(guī)的IVF技術(shù)建立小鼠模型。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,IVF組出生率明顯低于對(duì)照組;IVF組出生體重明顯高于對(duì)照組,而在第2周及第3周時(shí),出現(xiàn)了相反的結(jié)果,IVF組體重明顯低于對(duì)照組,第4周后直到性成熟期(8~10周)兩組之間又表現(xiàn)為差異無顯著性,表明IVF技術(shù)對(duì)小鼠的早期生長(zhǎng)發(fā)育具有一定的影響,而隨著生長(zhǎng)發(fā)育這些影響逐漸減少,應(yīng)加強(qiáng)對(duì)IVF子代早期生長(zhǎng)發(fā)育的監(jiān)督及評(píng)估。另一項(xiàng)研究同樣發(fā)現(xiàn)IVF小鼠出生體重增加[5],而對(duì)胎鼠的體重研究發(fā)現(xiàn)[6],ART小鼠在E18.5導(dǎo)致胎兒重量減少和胎盤過度生長(zhǎng)。ART鼠胎盤在E18.5表現(xiàn)出胎盤層分離和糖原細(xì)胞遷移缺陷的組織形態(tài)學(xué)改變,ART操作導(dǎo)致大部分胎盤營(yíng)養(yǎng)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的下調(diào)和胎盤效率的降低。ART胎盤改變與H19、KvDMR1的印跡控制區(qū)的甲基化水平升高相關(guān),并且破壞了E18.5對(duì)于胎盤發(fā)育和功能重要的絕大多數(shù)印記基因的表達(dá)。小鼠模型的結(jié)果顯示了ART操作可以通過破壞胎盤發(fā)育和功能來影響胎兒生長(zhǎng)的第一個(gè)證據(jù),表明由胚胎操作引起的基因組印記的改變可能導(dǎo)致這些問題出現(xiàn)。
體重是生長(zhǎng)發(fā)育的重要指標(biāo),文獻(xiàn)分析發(fā)現(xiàn)由于ART操作導(dǎo)致胎盤效率降低,IVF組在E18.5胎鼠重量減少,而IVF小鼠出生體重增加有表觀遺傳調(diào)控的參與,自胚胎末期至出生體重結(jié)果的變異目前分析可能是由于不同的研究體外培養(yǎng)條件有差異,具體原因有待進(jìn)一步研究。
IVF是否會(huì)影響小鼠壽命方面的研究存在爭(zhēng)議,有研究發(fā)現(xiàn)正常飲食的小鼠壽命沒有差異[7],也有研究發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,飼喂高脂飲食的ART小鼠的壽命縮短約25%,且表觀遺傳改變導(dǎo)致了這些問題的出現(xiàn)[8]。
多個(gè)研究發(fā)現(xiàn)IVF操作與小鼠的行為和焦慮水平相關(guān)[9-10]。研究人員起初發(fā)現(xiàn)IVF操作會(huì)引起后代的行為學(xué)異常[9, 11],這些研究表明IVF出生的小鼠分窩前行為學(xué)表型較少改變,但是成年后在焦慮、自主運(yùn)動(dòng)、空間和內(nèi)隱記憶等方面改變明顯。例如,IVF小鼠在高架十字迷宮的開放臂中停留更多的時(shí)間,表明其焦慮水平降低,這一行為差異在雄性小鼠中尤為明顯,并伴隨在焦慮相關(guān)的皮質(zhì)和皮質(zhì)下結(jié)構(gòu)以及小腦中的單胺氧化酶A基因、促皮質(zhì)素釋放因子和γ-丁胺酸表達(dá)改變[10],這三個(gè)基因已被證明是焦慮和恐懼行為的調(diào)控因子[12],它們與其相關(guān)受體和轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的改變與焦慮水平的變化相關(guān)[13]。
ART小鼠老年時(shí)期的肝臟重量顯著增加,且添加了胎牛血清(fetal calf serum,F(xiàn)CS)的培養(yǎng)液體外培養(yǎng)過的雌鼠肝臟脂肪變性,雄性和對(duì)照很少出現(xiàn)脂肪變性[9]。研究發(fā)現(xiàn)了膽汁酸代謝、蛋白質(zhì)泛素化、線粒體功能障礙和氧化磷酸化的變化轉(zhuǎn)錄證據(jù),以及可能反映細(xì)胞對(duì)治療反應(yīng)差異的基因錯(cuò)誤表達(dá)[14]。代謝組學(xué)數(shù)據(jù)顯示了改變蛋白水解作用和蛋白質(zhì)泛素化證據(jù)——二肽濃度顯著增加,活化蛋白激酶的變化,三磷酸腺苷和三磷酸鳥苷-需能反應(yīng)(增加嘌呤代謝物如腺苷酸、鳥苷酸和鳥苷)和減少膽汁酸儲(chǔ)存量。損害膽汁酸的合成以致膽汁酸儲(chǔ)存量減少,最終明顯減少能量消耗,導(dǎo)致肥胖和糖尿病的發(fā)生[9, 15]。此外,研究還發(fā)現(xiàn)IVF鼠的肝臟中葡萄糖代謝物的含量降低,而糖原中間體的含量增加,谷氨酰胺減少,長(zhǎng)鏈脂肪酸減少,這反映出線粒體功能的改變。在另一項(xiàng)研究中,IVFKAA(使用具有氨基酸和5% O2的KSOM優(yōu)化培養(yǎng)基)和自然懷孕胎鼠肝臟的脂類組學(xué)分析顯示增加了幾個(gè)與葡萄糖代謝及血管功能異常相關(guān)的磷脂,包括溶血磷脂酰膽堿、磷脂酸和溶血磷脂酰乙醇胺,它們可能導(dǎo)致IVF小鼠出生后某些可能的代謝異常[16]。
IVF普遍導(dǎo)致胎盤脂質(zhì)代謝及其代謝調(diào)控網(wǎng)絡(luò)基因表達(dá)異常,IVF所致的與脂質(zhì)代謝相關(guān)的印記基因印記紊亂以及印記維持關(guān)鍵基因表達(dá)水平異常可追溯到植入前胚胎。植入前期是重新編碼的時(shí)期,可能容易受到破壞。有研究發(fā)現(xiàn)IVF出生的小鼠早期生理表型正常,但是成年后會(huì)出現(xiàn)脂肪組織顯著增加。研究表明IVFKAA雌鼠成年后更容易脂肪沉積[15]。轉(zhuǎn)錄發(fā)生變化的基因多與脂類代謝、能量生成(如糖異生、三羧酸循環(huán))以及胰島素受體信號(hào)通路、白介素-1信號(hào)通路和類視黃醇X受體/肝X受體和類視黃醇X受體/法尼酯X受體的異二聚體的激活相關(guān)。雄性和雌性性腺脂肪的代謝組學(xué)研究發(fā)現(xiàn)與脂肪生成有關(guān)的促炎性和活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)代謝產(chǎn)物雌性特異地增加[17-19]。
脂肪是代謝異常的主要驅(qū)動(dòng),所以IVF小鼠脂肪組織性別差異可能導(dǎo)致性別特異的代謝表型。兩種性別的IVFKAA小鼠皆保有脂肪特有的存在,與其他成年組織相比,IVF囊胚中的轉(zhuǎn)錄變化,包括糖皮質(zhì)激素受體(glucocorticoid receptor,GR)和硫氧環(huán)蛋白相互作用蛋白增加[20]。這些數(shù)據(jù)提示脂肪組織可能是IVF小鼠性別和組織特異性變化的作用場(chǎng)所。
IVF小鼠成年期通常有較高的空腹血糖并伴有葡萄糖不耐受[14],IVFKAA動(dòng)物表現(xiàn)出低胰島素生成指數(shù)(葡萄糖耐量試驗(yàn)中前30 min的血漿胰島素水平變化除以葡萄糖水平變化)[21],表明由于β細(xì)胞對(duì)葡萄糖不敏感,IVF小鼠應(yīng)對(duì)葡萄糖分泌胰島素的能力降低[5]。進(jìn)一步的研究表明,與對(duì)照組相比,IVF雌鼠在29周的時(shí)間內(nèi)體重標(biāo)準(zhǔn)化的胰腺重量較低。與其他胰島素敏感組織相比,胰島的芯片分析在基因表達(dá)上的變化更少,最顯著的變化是甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)表達(dá)的顯著下調(diào),GAPDH的減少、ROS的增加是糖尿病周圍組織和β細(xì)胞引起細(xì)胞損傷的關(guān)鍵通路[22]。β細(xì)胞功能障礙隨年齡的增加而增加,有研究表明12周齡的IVF雌鼠在葡萄糖刺激下胰島素分泌正常,但是29周時(shí),IVF小鼠胰島表現(xiàn)出基礎(chǔ)胰島素分泌增加,并且應(yīng)對(duì)高糖刺激引起的胰島素分泌增加不明顯[21]。ART小鼠出生后葡萄糖體內(nèi)平衡可能具有性別二態(tài)性[22]。有研究對(duì)斷奶后IVF小鼠高脂喂養(yǎng)8周,發(fā)現(xiàn)它們空腹血糖水平升高,葡萄糖耐量受損以及胰島素刺激引起的Akt磷酸化減少[23]。
Rexhaj等發(fā)現(xiàn)IVF出生的FVB雄鼠脈管系統(tǒng)的內(nèi)皮功能紊亂、硬度增加,伴隨雄性隔代遺傳的動(dòng)脈高血壓[8]。血管表型能夠跨代遺傳顯示表觀遺傳在其中發(fā)揮作用,但有待進(jìn)一步證實(shí)。研究者進(jìn)行了定向分析,并發(fā)現(xiàn)動(dòng)脈中內(nèi)皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)基因啟動(dòng)子甲基化改變,及血管中eNOS表達(dá)和一氧化氮(nitric oxide,NO)合成降低。另一個(gè)關(guān)于血壓的評(píng)估同樣發(fā)現(xiàn)IVF出生的CF1×B6D2F1雄鼠收縮壓降低、舒張壓與自然生產(chǎn)對(duì)照鼠一樣[5]。但是,另一個(gè)研究結(jié)果表明胚胎培養(yǎng)后收縮壓升高[24]。結(jié)果差異的復(fù)雜性與小鼠品系、血壓測(cè)量方法和實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)(例如在Rexhaj等[8]的研究中沒有對(duì)每窩的產(chǎn)仔數(shù)進(jìn)行控制)相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)由ART產(chǎn)生的小鼠的脈管系統(tǒng)顯示內(nèi)皮功能障礙和血管硬度增加,其在體內(nèi)轉(zhuǎn)化為動(dòng)脈高血壓。雄性ART小鼠的后代也顯示血管功能障礙,這表明ART鼠的遺傳物質(zhì)受到了表觀遺傳修飾。給予ART小鼠脫乙酰酶抑制劑后血管基因甲基化和功能恢復(fù)正常,以致子代小鼠沒有血管功能障礙。ART相關(guān)血管和表觀遺傳改變的誘因似乎與胚胎環(huán)境有關(guān),這些改變可能通過伴隨ART的激素刺激排卵來促進(jìn)[8]。
小鼠在妊娠期間營(yíng)養(yǎng)不良可通過表觀遺傳機(jī)制引起后代的肺血管功能障礙,而IVF即可能會(huì)造成小鼠胚胎早期的營(yíng)養(yǎng)不良。在大鼠中,懷孕期間的限制性飲食(restrictive diet during pregnancy,RDP)增加了胎盤中的氧化應(yīng)激。氧化物誘導(dǎo)表觀遺傳改變,并且可能穿過胎盤屏障,所以一項(xiàng)研究檢測(cè)了缺氧2周后RDP和對(duì)照小鼠后代的肺血管功能和肺DNA甲基化,發(fā)現(xiàn)體外內(nèi)皮依賴性肺動(dòng)脈血管舒張受損,體內(nèi)低氧誘導(dǎo)的肺動(dòng)脈高壓和右心室肥大在RDP后代中更加顯著。給予組蛋白脫乙酰酶抑制劑丁酸鹽和曲古抑菌素A后RDP后代的肺DNA甲基化和血管功能恢復(fù)正常。最后,在RDP期間向孕鼠施用氮氧化物tempol可防止后代的血管功能障礙和異位甲基化[25]。
與對(duì)照組相比,封閉群IVFWM雄鼠的血壓偏低,但是超聲心動(dòng)圖結(jié)果顯示它們心臟收縮末期和舒張末期的體積增大[24]。超聲心動(dòng)圖分析還發(fā)現(xiàn)IVF和胞質(zhì)內(nèi)精子注射的幼鼠左心室肥大[26]。另一個(gè)研究表明培養(yǎng)條件的差異能夠顯著影響出生后心臟重量,體外培養(yǎng)時(shí)加入FCS的小鼠在20月齡時(shí)心臟重量顯著增加[9]。盡管大部分心臟幾何形態(tài)參數(shù)在各個(gè)研究組中是可以比較的,IVF后代在校正了年齡、性別、體表面積和心率后,其左心室相對(duì)壁厚、左心室質(zhì)量指數(shù)和左室重構(gòu)指數(shù)顯著升高。
許多研究小組報(bào)告了一系列與IVF和胚胎培養(yǎng)有關(guān)的出生后代謝和分子表型。但是考慮到小鼠品系和體外培養(yǎng)條件的差異,很難將多個(gè)研究聯(lián)系到一個(gè)全面的解釋,即植入前的體外暴露如何影響成年表型。有研究組采用多組學(xué)方法,因?yàn)閮H芯片并不總能捕獲所有的基因轉(zhuǎn)錄本或組織/胚胎言行,代謝組學(xué)提供了細(xì)胞過程和轉(zhuǎn)錄改變潛在結(jié)果的實(shí)時(shí)概覽。芯片分析發(fā)現(xiàn)1361個(gè)基因錯(cuò)誤表達(dá),但是只有16個(gè)基因的表達(dá)差異在兩倍以上,其中包括Ccl7、Ccl19、Chd7、Cnnm2、Il17ra、Il1rb、Gfpt2和Ngf,主要集中在炎癥反應(yīng)信號(hào)通路、細(xì)胞組裝和組織、癌癥、細(xì)胞間的信號(hào)傳遞、相互作用和運(yùn)動(dòng)等[27]。值得注意的是,相似的結(jié)果在自然出生和ART出生的兒童的心臟功能分析中有報(bào)道[28]。芯片研究結(jié)果顯示超過35個(gè)錯(cuò)誤表達(dá)基因反映了GR信號(hào)上調(diào),這是值得注意的,因?yàn)椴贿m當(dāng)?shù)奶瞧べ|(zhì)激素信號(hào)可以影響生長(zhǎng)、對(duì)慢性疾病的易感性,以及誘導(dǎo)應(yīng)激反應(yīng)。糖皮質(zhì)激素的升高也與心血管疾病和糖尿病的易感有關(guān)[29]。IVF轉(zhuǎn)錄信號(hào)豐富的其他信號(hào)通路包括細(xì)胞間通信和運(yùn)動(dòng),也包括NO和ROS的產(chǎn)生[28]。
比較E3.5、E7.5和E10.5三個(gè)重要發(fā)育階段的體內(nèi)胚胎和IVF胚胎的microRNA-seq數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)失調(diào)的microRNAs主要參與調(diào)控與癌癥發(fā)生、遺傳信息加工、葡萄糖代謝、細(xì)胞骨架組成及神經(jīng)發(fā)生等過程相關(guān)的基因,進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)IVF組胚胎中僅有miR-199 a-5p從E3.5到E10.5持續(xù)低表達(dá)。通過功能性缺失與補(bǔ)償性實(shí)驗(yàn),證實(shí)IVF引發(fā)的miR-199 a-5p低表達(dá)是造成IVF胚胎糖酵解率高、發(fā)育潛能降低、附植后胚胎存活率低的主要原因[2]。
綜上所述,ART小鼠可能在性別比例、生長(zhǎng)發(fā)育、行為、某些器官與組織代謝以及分子等表型方面存在某些異常,對(duì)于這些異常,尤其是性別比例和生長(zhǎng)發(fā)育相關(guān)的異常,研究結(jié)果存在一些多樣性,仍然需要更多的研究來驗(yàn)證它們,以排除不同研究者觀察的IVF小鼠樣本量的大小、動(dòng)物健康及飼養(yǎng)管理水平等非IVF因素等帶來的干擾。而且這些異常大部分出現(xiàn)在進(jìn)行了胚胎體外操作出生的那一代小鼠,針對(duì)IVF后代可能出現(xiàn)的一些健康問題,仍需要大量研究探索,進(jìn)而根據(jù)具體情況合理使用該技術(shù),或者提出針對(duì)性的解決方案,最終實(shí)現(xiàn)ART更加安全有效的應(yīng)用。盡管有一些瑕疵,但是ART技術(shù)現(xiàn)在并且以后仍然會(huì)在基因修飾小鼠制作、冷凍保種、生物凈化等方面對(duì)生命科學(xué)的發(fā)展發(fā)揮非常重要的作用。
[1] Tan K, Wang Z, Zhang Z, et al. IVF affects embryonic development in a sex-biased manner in mice [J]. Reproduction, 2016, 151(4): 443-453.
[2] Tan K, An L, Miao K, et al. Impaired imprinted X chromosome inactivation is responsible for the skewed sex ratio followinginvitrofertilization [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2016, 113(12): 3197-3202.
[3] Banrezes B, Sainte-Beuve T, Canon E, et al. Adult body weight is programmed by a redox-regulated and energy-dependent process during the pronuclear stage in mouse [J]. PLoS One, 2011, 6(12): e29388.
[4] Le F, Wang LY, Wang N, et al.Invitrofertilization alters growth and expression of Igf2/H19 and their epigenetic mechanisms in the liver and skeletal muscle of newborn and elder mice [J]. Biol Reprod, 2013, 88(3): 75.
[5] Donjacour A, Liu X, Lin W, et al.Invitrofertilization affects growth and glucose metabolism in a sex-specific manner in an outbred mouse model [J]. Biol Reprod, 2014, 90(4): 80.
[6] Chen S, Sun FZ, Huang X, et al. Corrigendum: Assisted reproduction causes placental maldevelopment and dysfunction linked to reduced fetal weight in mice [J]. Sci Rep, 2016, 6: 29150.
[7] Sommovilla J, Bilker WB, Abel T, et al. Embryo culture does not affect the longevity of offspring in mice [J]. Reproduction, 2005, 130(5): 599-601.
[8] Rexhaj E, Paoloni-Giacobino A, Rimoldi SF, et al. Mice generated byinvitrofertilization exhibit vascular dysfunction and shortened life span [J]. J Clin Invest, 2013, 123(12): 5052-5060.
[9] Fernández-Gonzalez R, Moreira P, Bilbao A, et al. Long-term effect ofinvitroculture of mouse embryos with serum on mRNA expression of imprinting genes, development, and behavior [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004, 101(16): 5880-5885.
[10] Strata F, Giritharan G, Sebastiano FD, et al. Behavior and brain gene expression changes in mice exposed to preimplantation and prenatal stress [J]. Reprod Sci, 2015, 22(1): 23-30.
[11] Ecker DJ, Stein P, Xu Z, et al. Long-term effects of culture of preimplantation mouse embryos on behavior [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004, 101(6): 1595-1600.
[12] Millan MJ. The neurobiology and control of anxious states [J]. Prog Neurobiol, 2003, 70(2): 83-244.
[13] van Ameringen M, Mancini C, Farvolden P, et al. Drugs in development for social anxiety disorder: more to social anxiety than meets the SSRI [J]. Expert Opin Investig Drugs, 2000, 9(10): 2215-2231.
[14] Feuer SK, Liu X, Donjacour A, et al. Use of a mouseinvitrofertilization model to understand the developmental origins of health and disease hypothesis [J]. Endocrinology, 2014, 155(5): 1956-1969.
[15] Watanabe M, Horai Y, Houten SM, et al. Lowering bile acid pool size with a synthetic farnesoid X receptor (FXR) agonist induces obesity and diabetes through reduced energy expenditure [J]. J Biol Chem, 2011, 286(30): 26913-26920.
[16] Li B, Xiao X, Chen S, et al. Changes of phospholipids in fetal liver of mice conceived byinvitrofertilization [J]. Biol Reprod, 2016, 94(5): 105.
[17] Feuer SK, Donjacour A, Simbulan RK, et al. Sexually dimorphic effect ofinvitrofertilization (IVF) on adult mouse fat and liver metabolomes [J]. Endocrinology, 2014, 155(11): 4554-4567.
[18] Imhoff BR, Hansen JM. Differential redox potential profiles during adipogenesis and osteogenesis [J]. Cell Mol Biol Lett, 2011, 16(1): 149-161.
[19] Vigilanza P, Aquilano K, Baldelli S, et al. Modulation of intracellular glutathione affects adipogenesis in 3T3-L1 cells [J]. J Cell Physiol, 2011, 226(8): 2016-2024.
[20] Simbulan RK, Liu X, Feuer SK, et al. Adult male mice conceived byinvitrofertilization exhibit increased glucocorticoid receptor expression in fat tissue [J]. J Dev Orig Health Dis, 2016, 7(1): 73-82.
[21] Sone H, Kagawa Y. Pancreatic beta cell senescence contributes to the pathogenesis of type 2 diabetes in high-fat diet-induced diabetic mice [J]. Diabetologia, 2005, 48(1): 58-67.
[22] Brownlee M. The pathobiology of diabetic complications: a unifying mechanism [J]. Diabetes, 2005, 54(6): 1615-1625.
[23] Chen M, Wu L, Zhao J, et al. Altered glucose metabolism in mouse and humans conceived by IVF [J]. Diabetes, 2014, 63(10): 3189-3198.
[24] Watkins AJ, Platt D, Papenbrock T, et al. Mouse embryo culture induces changes in postnatal phenotype including raised systolic blood pressure [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2007, 104(13): 5449-5454.
[25] Rexhaj E, Bloch J, Jayet PY, et al. Fetal programming of pulmonary vascular dysfunction in mice: role of epigenetic mechanisms [J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2011, 301(1): H247-H252.
[26] Valenzuela-Alcaraz B, Crispi F, Bijnens B, et al. Assisted reproductive technologies are associated with cardiovascular remodeling in utero that persists postnatally [J]. Circulation, 2013, 128(13): 1442-1450.
[27] Feuer S, Liu X, Donjacour A, et al. Common and specific transcriptional signatures in mouse embryos and adult tissues induced byinvitroprocedures [J]. Reproduction, 2017, 153: 107-122.
[28] Zhou J, Liu H, Gu HT, et al. Association of cardiac development with assisted reproductive technology in childhood: a prospective single-blind pilot study [J]. Cell Physiol Biochem, 2014, 34(3): 988-1000.
[29] Jaddoe VW, Witteman JC. Hypotheses on the fetal origins of adult diseases: contributions of epidemiological studies [J]. Eur J Epidemiol, 2006, 21(2): 91-102.