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人參蛋白質不同提取方法及含量的比較

2018-05-14 08:59任雨賀劉淑瑩萬茜淋
安徽農(nóng)業(yè)科學 2018年11期
關鍵詞:提取方法

任雨賀 劉淑瑩 萬茜淋

摘要[目的]優(yōu)選人參蛋白質提取的最佳方法,并比較不同生長年份對人參蛋白質含量的影響。[方法]比較丙酮沉淀法、聚乙二醇6000沉淀法、聚乙二醇20000沉淀法、酚提取法、Trizol提取法5種人參蛋白質的提取方法,及不同生長年份的人參蛋白質,采用Bradford方法測定蛋白質含量,SDS-PAGE電泳鑒定蛋白。[結果]丙酮提取法得到的蛋白質純度最高,電泳條帶最清晰完整,且人參蛋白質的含量隨生長年份增加而升高。[結論]丙酮沉淀法是一種較好的適用于人參蛋白質提取的方法,5年生人參蛋白質含量最高。

關鍵詞 人參蛋白;提取方法;SDS-PAGE電泳

中圖分類號 S-3 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611(2018)11-0001-03

人參(Panax ginseng C.A.Mey)為五加科草本植物人參的干燥根和根莖,為我國的名貴中藥材,被譽為“百草之王”,具有大補元氣、復脈固脫、補脾益肺、生津養(yǎng)血、安神益智等功效。現(xiàn)代藥理研究表明,人參具有增強記憶力、抗衰老、抗腫瘤、增強免疫力、改善心血管等作用。人參中成分復雜,主要含有人參皂苷、多糖、氨基酸、多肽、蛋白質、有機酸、生物堿、黃酮、甾醇及木質素等化學成分,目前研究主要集中在人參皂苷上,其他成分的研究相對較少,尤其是其中的蛋白質成分。研究表明,人參蛋白質具有保護神經(jīng)細胞、抗腫瘤、抗病毒等藥理作用。

目前,提取人參蛋白質的方法主要有硫酸銨沉淀法、有機試劑沉淀法、膜過濾法、快速溶劑萃取法等,其中膜過濾法和快速溶劑萃取法需要特殊儀器,成本較高,而硫酸銨沉淀法操作過于繁瑣。筆者以蛋白質提取率、純度、電泳結果為考察指標,比較有機試劑沉淀法中的丙酮沉淀法、聚乙二醇6000沉淀法、聚乙二醇20000沉淀法,及借鑒其他植物根部蛋白質提取的酚提取法、Trizol提取法,以期對今后人參蛋白質的研究提供借鑒。

1材料與方法

1.1材料與試劑 人參:吉林省撫松縣3、4、5年生生曬參。試劑:牛血清白蛋白(BSA)購于TIANGEN公司;考馬斯亮藍G250購于TIANGEN公司;低分子量標準蛋白Marker購于Solarbio公司;其他試劑均為分析純。

1.2儀器與設備 超細小型中藥粉碎機,永康市紅太陽機電有限公司;磁力加熱攪拌器,天津賽得利斯實驗分析儀器制造廠;臺式高速大容量離心機,eppendorf公司;FDU-1100真空冷凍干燥機,EYELA公司;酶標儀,TECAN公司;EP600電泳儀,上海天能公司;水浴恒溫振蕩器,上海百典儀器設備有限公司。

1.3不同蛋白質提取方法的比較

1.3.1有機試劑沉淀法。

1.3.1.1人參蛋白質粗提液的制備。取3年生生曬參若干,粉碎機粉碎,稱取約6.0g粗粉,加入10倍量的10mmol/LTris-HCl(pH7.4)緩沖液攪拌均勻,在4℃下攪拌浸提18h。于4℃條件下,5000r/min離心30min,取上清液,于4℃保存。向沉淀中加入10倍量的10mmol/LTris-HCl(pH7.4),繼續(xù)攪拌浸提18h。于上述相同條件離心,取上清液,與第一次上清液合并,混勻,平均分成3份。

1.3.1.2丙酮沉淀法。向其中1份人參蛋白質粗提液中加入1.5倍體積的丙酮,-20℃下靜置過夜。于4℃條件下,5000r/min離心30min,棄去上清液,下層沉淀在-20℃下放置20min揮干丙酮,轉移至-80℃過夜。凍干,蛋白干粉于-80℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.1.3聚乙二醇6000沉淀法。向其中1份人參蛋白質粗提液中加入聚乙二醇6000,使其終濃度為20%,-20℃下靜置過夜。于4℃條件下,5000r/min離心30min,棄去上清液,下層沉淀轉移至-80℃過夜。凍干,蛋白干粉于-80℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.1.4聚乙二醇20000沉淀法。向其中1份人參蛋白質粗提液中加入聚乙二醇20000,使其終濃度為20%,-20℃下靜置過夜。于4℃條件下,5000r/min離心30min,棄去上清液,下層沉淀轉移至-80℃過夜。凍干,蛋白干粉于-80℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2酚提取法。參照郭廣芳等的小麥根蛋白提取方法,并略有改動。取3年生生曬參若干,粉碎機粉碎,稱取約2.0g粗粉,液氮研磨充分后加入20mL提取液(蔗糖250.6mmoL/L,Tris—HCl20mmoL/L,EDTA10mmol/L,PMSF1mmoL/L,DTrlmmoL/L和TritonX-100400mmoL/L)研磨15min。于4℃條件下,12000r/min離心15min,取上清液,加入三氯乙酸(TCA)使其終濃度為10%,一20℃沉淀過夜。以上述條件離心,棄上清,沉淀用預冷的丙酮(含0.2%DTT)洗4次,轉移至-80℃過夜。凍干,蛋白干粉于-80℃儲存。

1.3.3Trizol提取法。參照Kirkland等的蛋白質提取方法,并略有改動。取3年生生曬參若干,粉碎機粉碎,稱取約2.0g粗粉,液氮研磨充分后加入20mLTrizol溶液,充分混勻后,加入2mL氯仿,劇烈振蕩15min,室內(nèi)靜置5min。于4℃條件下,12000r/min離心15min,棄上層水相,加入3mL95%乙醇,振蕩混勻,離心取上清。上清液中加入4倍體積的異丙醇沉淀2~3h,離心,沉淀用20mL含0.3mol/L鹽酸胍的95%乙醇溶液洗3次。室溫放置20min,然后用95%乙醇洗2次。于4℃條件下,7000r/min離心10min,沉淀轉移至-80℃過夜。凍干,蛋白干粉于-80℃儲存。

1.4不同年份人參蛋白質含量的比較

1.4.1蛋白質粗提液的制備。采用“1.3.1.1”方法分別提取3、4、5年生生曬參蛋白質粗提液。

1.4.2不同年份人參蛋白質的提取。采用“1.3.1.2”丙酮沉淀法,分別提取3、4、5年生生曬參的蛋白質。

1.5蛋白質定量

1.5.1標準曲線的繪制。將0、2、4、6、8、10、12、14μL牛血清白蛋白(BSA)標準溶液(1mg/mL)分別加入到96孔板中,加入PBS溶液補足至20μL,分別向各孔中加入180μL考馬斯亮藍G250染液,混勻。用酶標儀在595nm處測定吸光度(A),以不含BSA的樣品吸光度為空白對照,以蛋白濃度(mg/mL)為橫坐標,吸光度(A)為縱坐標,繪制標準曲線。

1.5.2人參蛋白質含量測定。取不同提取方法的人參蛋白干粉分別配制成10mg/mL溶液,取2μL此溶液于96孔板中,加入18μLPBS溶液、180μL考馬斯亮藍G250染液,混勻,用酶標儀在595nm波長處測定吸光度(A),每個樣品做3次平行,測定人參蛋白質含量,計算提取率及純度。

提取率=總蛋白質量/人參粗粉質量×100%

純度=總蛋白質量/蛋白粗粉質量×100%

1.6SDS-PAGE電泳

1.6.1蛋白樣品制備。分別稱取不同提取方法提取的蛋白干粉約10.0mg,加入1mLPBS緩沖溶液使之溶解。取40μL樣品溶解液,加10μL5×蛋白上樣緩沖液,沸水中煮5min,置于冰上備用。

1.6.2凝膠灌制及電泳過程。按所需試劑比例,分別配制15%分離膠溶液和5%濃縮膠溶液。加入TEMED后,立即快速混勻,并迅速在兩玻璃板的間隙中灌注分離膠溶液,留出灌注濃縮膠所需空間,用少量異丙醇封層。待分離膠聚合完全后(約30min),傾出封層液體,并用濾紙條擦干。在已聚合的分離膠上層灌注加入TEMED后的濃縮膠,立即在濃縮膠中插入干凈的Teflon梳子,避免進入氣泡。當濃縮膠聚合完全后(約30min),小心移出Teflon梳子,將凝膠固定于電泳裝置上,內(nèi)外槽各加入電泳緩沖液,按預定順序上樣,每個樣品20μL。接上電源,調節(jié)電壓,濃縮膠電壓80V,分離膠電壓120V,待樣品遷移至凝膠邊緣處即可停止。

1.6.3凝膠染色及脫色。在甲醇:水:乙酸=50:40:10的混合溶液中溶解0.25g考馬斯亮藍R250,過濾去除沉淀,用染色液浸泡凝膠,置于水浴恒溫振蕩器上平緩振蕩30min。將凝膠浸泡于不加染料的脫色液中,于水浴恒溫振蕩器上振蕩,每2h更換一次脫色液,更換3~4次,直至背景清晰。

2結果與分析

2.1不同提取方法對人參蛋白質含量的影響

2.1.1標準曲線。蛋白定量標準曲線見圖1。曲線方程y=0.0702x+0.0238,R2=0.9957,說明此曲線方程可用于計算蛋白質含量。

2.1.2不同提取方法對人參蛋白質提取率及純度的影響。由圖2可知,聚乙二醇20000沉淀法提取得到的人參蛋白質提取率最高,為8.53%;而丙酮沉淀法提取得到的人參蛋白質純度最高,為61.05%。結合凍干后蛋白干粉的狀態(tài),初步認為聚乙二醇20000沉淀法提取的人參蛋白質中殘留有機溶劑較多,且不易去除,導致所提取蛋白質純度較低。而酚提取法及Trizol提取法得到的人參蛋白干粉復溶性極差,基本不溶,因此提取率及純度均極低。丙酮提取法得到的蛋白質也存在復溶性不好的問題,認為可能與丙酮揮干有關,可考慮延長揮干時間,以得到最佳的人參蛋白質提取方法。

2.1.3不同提取方法對人參蛋白質SDS-PAGE電泳的影響。由圖3可知,人參蛋白質分子量主要分布在15~70kD,主要包括分子量約為64、29、27、21、18、15kD的蛋白質,其中分子量27、29kD為主要蛋白質。丙酮沉淀法提取的人參蛋白質條帶最完整清晰,聚乙二醇20000沉淀法蛋白質電泳條帶上方出現(xiàn)大量空白,推測是其中殘留有機試劑較多,且與電泳凝膠發(fā)生反應。酚提取和Trlzol提取法提取的人參蛋白質因其復溶性極差,電泳條帶也較淺。

2.2不同生長年份對人參蛋白質含量的影響

2.2.1不同生長年份對人參蛋白質提取率及純度的影響。由圖4可知,5年生生曬參人參蛋白質的提取率最高,為3.67%,且其提取得到的人參蛋白質純度也最高,為86.80%。這表明不同生長年份對人參蛋白質含量有一定影響,且生長年份越長,其蛋白質含量越高。

2.2.2不同生長年份對人參蛋白質SDS-PAGE電泳的影響。由圖5可知,3、4、5年生人參蛋白質相比,其人參蛋白質種類并無變化,但5年生蛋白質含量明顯升高,尤其是分子量為29、27kD的蛋白質含量增加較多。這表明不同生長年份對人參蛋白質含量有一定影響,且隨著年份增長蛋白質含量逐漸升高。

3結論與討論

蛋白質是生命活動的物質基礎,是人類生命活動不可缺少的營養(yǎng)物質。植物蛋白一般分為2類:一類是完全蛋白,如大豆蛋白;另一類是不完全蛋白,絕大多數(shù)的植物蛋白屬于此類。但因蛋白質的結構復雜,物理和化學性質不穩(wěn)定,因此在植物蛋白質提取過程中要綜合考慮各種因素對其的影響。該研究對幾種不同人參蛋白質提取方法進行了對比,其中酚提取法是參考小麥根部蛋白質提取方法優(yōu)化,Trlzol提取法是參考嗜鹽蛋白質的提取方法優(yōu)化,而2種提取方法得到的蛋白質復溶性均較差,均不適用于人參蛋白質的提取。聚乙二醇20000沉淀法得到的人參蛋白質提取率最高,但其純度較低,推測是其中殘留有機試劑較多,并與電泳凝膠反應,且無法確定其含量及毒性,因此不是提取人參蛋白質的最佳方法;丙酮沉淀法雖然提取率不是最高,但其純度較高,提取過程中丙酮成分可以通過揮干的方法去除,且其電泳條帶最清晰完整。綜合考慮,人參蛋白質的最佳提取方法為丙酮沉淀法。

該研究采用丙酮提取法分別提取了3、4、5年生人參蛋白質,并進行了蛋白質含量的比較。結果發(fā)現(xiàn),3年生人參蛋白質含量最低,4年生人參蛋白質含量居中,而5年生人參蛋白質含量最高,分子量27、29kD的蛋白質含量增多最明顯。經(jīng)查閱文獻,分子量為27、29kD的人參蛋白質屬核糖核酸酶類,具有抗真菌、抗病毒和抑制增殖的活性。

綜上所述,經(jīng)過上述5種植物蛋白質提取方法比較得出,丙酮沉淀法是一種較好的適用于人參蛋白質提取的方法。經(jīng)過對不同生長年份人參蛋白質的對比,人參生長年份對其蛋白質含量有一定影響,隨著生長年份的增加,人參蛋白質含量逐漸升高,即3年生人參蛋白質含量最低,5年生人參蛋白質含量最高。

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