国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

生存素小分子干擾RNA對皮膚鱗狀細胞癌A431細胞生存素基因表達及生物學功能的影響

2018-05-15 07:28:10魏明師廣勇劉佳龔艷杰陳河濤梁穎紅涂玲
中華皮膚科雜志 2018年4期
關鍵詞:小室抑制率細胞周期

魏明 師廣勇 劉佳 龔艷杰 陳河濤 梁穎紅 涂玲

450052鄭州大學第五附屬醫(yī)院檢驗科

生存素是凋亡抑制蛋白家族的成員之一,參與細胞周期調(diào)控,與腫瘤發(fā)生、發(fā)展和預后密切相關[1?2]。因此,針對生存素的靶向治療有可能最大程度降低對正常組織的損傷,獲得良好的抗腫瘤效果。RNA干擾是一項基因阻斷技術,采用與靶基因同源的小分子干擾RNA(siRNA)轉(zhuǎn)染靶細胞,誘導靶基因mRNA特異性降解,從而抑制目的基因表達,有望成為腫瘤基因治療的新方向。為此,我們將生存素基因序列特異性siRNA轉(zhuǎn)染至皮膚鱗狀細胞癌A431細胞,探討體外轉(zhuǎn)錄siRNA能否有效介導腫瘤細胞出現(xiàn)RNA沉默,進而影響A431細胞增殖和凋亡,探索治療皮膚鱗狀細胞癌靶基因。

一、材料與方法

1.主要試劑及材料:A431細胞來自中國科學院典型培養(yǎng)物保藏委員會細胞庫。RNA提取試劑Trizol(美國Invitrogen公司),MTT、二甲基亞砜(DMSO)(美國Sigma公司),改良Eagle培養(yǎng)基(DMEM)及胎牛血清(美國Gibco公司),細胞侵襲和遷移實驗試劑(美國Corning公司),細胞凋亡試劑和細胞周期檢測試劑(美國BD公司),兔抗人生存素多克隆抗體一抗及內(nèi)參β肌動蛋白抗體、鼠抗兔二抗(北京科瑞生物科技有限公司)。

2.siRNA的設計與合成:通過siRNA分子庫技術,設計并合成15種序列,從中篩選出1種高效生存素siRNA,其正義鏈序列:5′?GCAGATCTTGCTTCGCGATGTACGGGCC?3′,反義鏈序列:5′?CGTCGCGAGGGCTATGAACTAATGACCC?3′;無關序列siRNA的正義鏈:5′?AAGGCUAAGGGGCCGAU GACG?3′,反義鏈:5′?TUUCCGAUUCCCCGGCUACUGC?3′。生存素siRNA、無關序列siRNA均由北京漢博生物技術有限公司合成。本實驗使用前期工作中研究的脂質(zhì)體包裹siRNA,達到傳輸目的。包裹方法采用預制囊泡法,按陽離子脂質(zhì)∶二硬脂酰磷脂酰膽堿∶膽固醇∶聚乙二醇(400)二甲基丙烯酸酯=40∶10∶40∶10(摩爾比)的比例制備成預制囊泡。將50.0 nmol/L生存素siRNA、無關序列siRNA和預制囊泡分別溫浴于35~40℃5 ml乙醇溶液(300 ml/L)中10 min。將生存素siRNA和無關序列siRNA分別加入到預制囊泡中,形成包封生存素siRNA陽性脂質(zhì)體和無關序列siRNA陰性脂質(zhì)體。包封、濃縮,除菌后備用。

3.細胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染:用含10%胎牛血清、10 U/ml青霉素、100 U/ml鏈霉素的DMEM高糖培養(yǎng)基于37℃、100%濕度、5%CO2孵箱中單層傳代培養(yǎng)A431細胞。每隔24~48 h更換1次培養(yǎng)基。再將A431細胞鋪于無抗生素的6孔培養(yǎng)板中,培養(yǎng)24 h,細胞密度為2×105個/孔。實驗分為生存素siRNA組(用陽性脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染)、陰性對照組(用陰性脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染)及空白對照組(只加預制囊泡),37℃培養(yǎng)4~6 h后加入含血清的RPMI 1640培養(yǎng)液,37℃繼續(xù)培養(yǎng),根據(jù)需要收集轉(zhuǎn)染后不同時間細胞進行檢測。

4.實時定量反轉(zhuǎn)錄(RT)?PCR檢測生存素mRNA表達水平:收集轉(zhuǎn)染后48 h的A431細胞,提取、純化總RNA,RT?PCR檢測靶基因生存素mRNA表達水平,β肌動蛋白為內(nèi)參。生存素基因:正向引物5′?ACGACCCCATAGAGGAACAT?3′,反向引物5′?TCCGCAGTTTCCTCAAATTC?3′,長度386 bp;β肌動蛋白基因:正向引物5′?GAAGTGAAGGGTCGGAGTC?3′,反向引物5′?GAAGATGGTGATGGGATTTC?3′,長度257 bp。按試劑盒說明書進行操作,采用實時定量RT?PCR檢測,2-△△Ct法計算mRNA相對表達量。

5.Western印跡法檢測A431細胞生存素蛋白表達水平:收集轉(zhuǎn)染后48 h的A431細胞,按照說明書提取總蛋白。取40 μg蛋白質(zhì)進行12%十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳,將產(chǎn)物轉(zhuǎn)至二氟化樹脂膜上,室溫封閉2 h,加入兔抗人生存素,4℃過夜,TBST洗膜,加入鼠抗兔IgG標記辣根過氧化物酶,37℃孵育1 h。加入顯色底物,顯色2 min,曝光后X線片通過HPIAS?1000圖像分析系統(tǒng)半定量分析。

6.MTT法檢測A431細胞增殖:將細胞鋪入96孔板,每孔100 μl,細胞密度為5 × 104個/ml,待細胞貼壁后,按上述分組方法處理,常規(guī)孵育24、48、72、96 h,每孔加入質(zhì)量濃度5 g/L MTT溶液20 μl,培養(yǎng)4 h。終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)液體。每孔加入150 μl DMSO,置搖床上低速振蕩10 min。每組細胞設3個平行孔。酶標儀570 nm波長處測量各孔吸光度(A值),計算細胞增殖抑制率(%),即[1-(A生存素siRNA組-A空白對照組)/(A陰性對照組-A空白對照組)]×100%。

7.流式細胞儀檢測A431細胞周期:將上述轉(zhuǎn)染后48 h的各組細胞消化、離心,用預冷PBS混懸,沖洗2次,加入預冷75%乙醇3 ml,收集細胞,按照說明書用RNA酶處理細胞后,加入碘化丙啶(PI),4℃避光孵育30 min,流式細胞儀檢測A431細胞周期變化。

8.生存素siRNA對A431細胞遷移的影響:按上述方法處理各組細胞,轉(zhuǎn)染后24 h收集細胞,制備單細胞懸液,細胞密度為1×106個/ml。取細胞懸液100 μl放入3個細胞小室,細胞小室的下室加入500 μl含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,培養(yǎng)10 h后取出細胞小室,PBS浸泡洗滌,用預冷的80%乙醇固定,PBS浸泡洗滌,伊紅染色,PBS快速洗滌。取出小室放入盛有3 ml PBS的6孔板中。倒置熒光顯微鏡下隨機取6個視野計數(shù)(200倍),取平均值。

9.Transwell實驗檢測A431細胞侵襲力:取稀釋的Matrigel膠(40 μl Matrigel+80 μl無血清培養(yǎng)基)30 μl加入細胞小室上室,覆蓋整個聚碳酯膜,37℃30 min后取出培養(yǎng)板,將小室四周多余的稀釋Matrigel膠吸掉,再放入37℃中使Matrigel膠聚合成膠備用。拿出已鋪上Matrigel膠的細胞小室,加入對應分組稀釋后的細胞懸液100 μl;細胞小室的下室加入500 μl 10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,置培養(yǎng)箱24 h后取出固定后并染色。倒置熒光顯微鏡下隨機取6個視野(200倍)計數(shù)細胞。

10.流式細胞儀AnnexinⅤ/PI雙染法檢測細胞凋亡:按上述方法處理各組細胞,每組設3個平行孔。轉(zhuǎn)染后24 h,PBS洗滌,胰酶消化。冷培養(yǎng)基中止消化后移入EP管。1 000×g離心5 min,棄上清液。冷PBS清洗細胞,1 000×g離心5 min,棄上清液。每管加入1×結(jié)合緩沖液200 μl懸浮細胞(細胞密度為1×106個/ml)。避光下每管加入3 μl AnnexinⅤ結(jié)合物FITC,然后再加入2 μl PI,混勻,室溫避光孵育15 min,置于冰上。流式細胞儀檢測細胞凋亡。

11.統(tǒng)計學處理:采用SPSS13.0軟件進行處理。計量資料以±s表示,實驗數(shù)據(jù)經(jīng)正態(tài)性檢驗,多組間數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD?t檢驗,細胞增殖數(shù)據(jù)采用重復測量方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

二、結(jié)果

1.生存素siRNA對A431細胞生存素mRNA及蛋白表達的影響:見表1。生存素siRNA轉(zhuǎn)染后48 h,3組間生存素mRNA及蛋白相對表達量差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.001),而陰性對照組與空白對照組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖1、2。生存素siRNA組生存素mRNA顯著低于陰性對照組和空白對照組(LSD?t=12.34、15.36,P=0.002、0.002),見圖1,而生存素蛋白表達亦顯著低于陰性對照組和空白對照組(LSD?t=17.28、21.33,P=0.002、0.001)。

2.生存素siRNA對抑制A431細胞增殖的影響:見圖3。重復測量方差分析顯示,轉(zhuǎn)染生存素siRNA能明顯抑制A431細胞增殖(F=13.19,P=0.004)。組間兩兩比較顯示,生存素siRNA組A431細胞增殖抑制率明顯高于陰性對照組和空白對照組(均P<0.05),而陰性對照組與空白對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。各組A431細胞增殖抑制率有隨時間變化的趨勢(F=23.43,P=0.003)。分組與培養(yǎng)時間因素之間不存在交互作用(F=1.29,P=0.260)。

3.生存素siRNA對A431細胞凋亡的影響:見表1。生存素siRNA組、陰性對照組、空白對照組A431細胞凋亡率差異有統(tǒng)計學意義(P=0.002)。生存素siRNA組顯著高于陰性對照組和空白對照組(LSD?t=11.28、10.25,均P< 0.05),而陰性對照組與空白對照組間差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖4。

表1 生存素小分子干擾RNA(siRNA)對A431細胞生存素mRNA及蛋白表達和細胞增殖、凋亡、遷移、侵襲力的影響(±s)

表1 生存素小分子干擾RNA(siRNA)對A431細胞生存素mRNA及蛋白表達和細胞增殖、凋亡、遷移、侵襲力的影響(±s)

注:n=3

組別生存素siRNA組陰性對照組空白對照組F值P值生存素mRNA 0.56±0.15 0.88±0.37 0.90±0.43 276.67<0.001生存素蛋白0.59±0.04 0.86±0.05 0.91±0.07 243.61<0.001細胞凋亡率(%)21.45±2.39 8.91±1.34 9.22±1.48 83.97 0.002 G2/M期細胞比例(%)17.38±3.68 7.75±1.45 5.26±2.12 65.29 0.002細胞遷移數(shù)39.96±6.83 83.14±7.68 85.26±9.20 368.48<0.01細胞侵襲數(shù)24.67±5.94 46.23±6.37 48.26±7.45 296.34<0.01

4.生存素siRNA對A431細胞周期的影響:見表1。轉(zhuǎn)染生存素siRNA后48 h,A431細胞周期發(fā)生明顯變化,3組間G2/M期細胞比例差異有統(tǒng)計學意義(F=65.29,P=0.002)。生存素siRNA組G2/M期細胞比例高于陰性對照組和空白對照組(LSD?t=9.47、11.92,均P< 0.05),而陰性對照組與空白對照組間差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖5。

5.生存素siRNA對A431細胞遷移及侵襲能力的影響:見表1。3組間A431細胞遷移數(shù)及侵襲數(shù)差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.01)。兩兩多重比較顯示,轉(zhuǎn)染生存素siRNA后,其A431細胞遷移數(shù)及侵襲數(shù)均明顯低于空白對照組和陰性對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。而陰性對照組細胞遷移數(shù)和侵襲數(shù)與空白對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義(均P>0.05)。

三、討論

近來,基因療法的應用逐漸成為皮膚鱗狀細胞癌的研究熱點,并取得一系列進展[3?5]。生存素具有抑制細胞凋亡和調(diào)節(jié)細胞有絲分裂的功能,是聯(lián)系細胞周期和細胞凋亡界面的重要因子。該基因幾乎在所有種類的腫瘤組織中有表達,而正常組織幾乎不表達[6?7]。生存素在腫瘤細胞中高表達后,不但抑制腫瘤細胞凋亡、促進腫瘤細胞有絲分裂,還參與血管形成和放化療耐受等多種功能。因此,針對生存素基因的腫瘤靶向治療受到國內(nèi)外學者的廣泛關注[8?10]。

本研究通過轉(zhuǎn)染生存素siRNA調(diào)控A431生存素蛋白和mRNA表達以及細胞增殖和凋亡,結(jié)果顯示,在轉(zhuǎn)染后48 h生存素mRNA和蛋白表達均下調(diào),轉(zhuǎn)染后24 h細胞凋亡率增加,且細胞增殖抑制率隨培養(yǎng)時間延長而逐漸增加。提示RNA干擾在體外能成功沉默A431細胞的生存素基因,抑制A431細胞增殖,促進細胞凋亡。陳思遠等[11]在黑素瘤細胞株A375中也觀察到相似的變化,證實生存素具有抑制凋亡和調(diào)節(jié)細胞增殖的作用。此外,有研究表明[12?13],生存素能特異性表達于細胞周期的G2/M期,它與有絲分裂紡錘體微管結(jié)合,使腫瘤細胞免遭凋亡并順利通過G2/M期完成異常有絲分裂,而微管中半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(Caspase?3)和Caspase?7處于抑制狀態(tài),這可能是生存素對G2/M期凋亡抑制的機制之一。

皮膚鱗狀細胞癌的侵襲和轉(zhuǎn)移是主要的致死因素。本研究顯示,從基因水平抑制生存素的表達可以有效抑制A431細胞穿越基質(zhì)膠處理過的Transwell小室的能力,提示抑制生存素的表達可以使A431細胞穿膜侵襲活力下降,表明生存素在腫瘤細胞的侵襲行為中可能起重要作用。

總之,體外小分子干擾生存素基因可以抑制A431細胞生存素的表達,從而影響細胞增殖和凋亡,但對生存素參與鱗狀細胞癌形成的具體機制仍需進一步研究。

圖1 生存素siRNA對A431細胞生存素mRNA表達的影響M:DNA標記物;1:空白對照組;2:陰性對照組;3:生存素siRNA組

圖2 生存素siRNA對A431細胞生存素蛋白表達的影響 1:空白對照組;2:陰性對照組;3:生存素siRNA組

圖3 生存素siRNA對A431細胞增殖的影響 空白對照組細胞增殖抑制率處于較低水平,且基本不隨時間增加;陰性對照組細胞增殖抑制率略高于空白對照組,隨時間緩慢增加;生存素siRNA組A431細胞增殖抑制率隨時間逐漸升高,72 h后仍明顯高于陰性對照組和空白對照組

圖4 生存素siRNA對A431細胞凋亡的影響 4A:空白對照組;4B:陰性對照組;4C:生存素siRNA組。B2區(qū)為凋亡細胞,其凋亡細胞明顯多于空白對照組和陰性對照組 圖5生存素siRNA對A431細胞周期的影響 5A:空白對照組;5B:陰性對照組;5C:生存素siRNA組。生存素siRNA組G2/M期細胞比例明顯高于陰性對照組和空白對照組

參考文獻

[1]Geng D,Song X,Ning F,et al.MiR?34a inhibits viability and invasion of human papillomavirus?positive cervicalcancercellsby targeting E2F3 and regulating survivin[J].Int J Gynecol Cancer,2015,25(4):707?713.doi:10.1097/IGC.0000000000000399.

[2]Chen Y,Tsai YH,Tseng SH.Inhibi?tion of cyclin?dependent kinase 1?induced cell death in neuroblastoma cells through the microRNA?34a?MYCN?survivin pathway[J].Surgery,2013,153(1):4?16.doi:10.1016/j.surg.2012.03.030.

[3]Mansoori B,Sandoghchian Shotorbani S,Baradaran B.RNA interference and its role in cancer therapy[J].Adv Pharm Bull,2014,4(4):313?321.doi:10.5681/apb.2014.046.

[4]Chen S,Feng J,Ma L,et al.RNA inter?ference technology for anti?VEGF treat?ment[J].Expert Opin Drug Deliv,2014,11(9):1471?1480.doi:10.1517/17425247.2014.926886.

[5]Farra R,Grassi M,Grassi G,et al.Therapeutic potential of small interfering RNAs/micro interfering RNA in hepatocellular carci?noma[J].World J Gastroenterol,2015,21(30):8994 ?9001.doi:10.3748/wjg.v21.i30.8994.

[6]Plewka D,Jakubiec?Bartnik B,Morek M,et al.Survivin in ovary tumors[J].Ginekol Pol,2015,86(7):525?530.

[7]Jaiswal PK,Goel A,Mittal RD.Sur?vivin:a molecular biomarker in cancer[J].Indian J Med Res,2015,141(4):389 ?397.doi:10.4103/0971?5916.159250.

[8]牛朝霞,王曉輝,陳潔,等.RNA干擾沉默survivin基因?qū)κ彻馨〦ca?109細胞放射敏感性的影響[J].中華實用診斷與治療雜志,2016,30(7):660?662.doi:10.13507/j.issn.1674?3474.2016.07.012.

[9]Liu W,Zhu F,Jiang Y,et al.siRNA targeting survivin inhibits the growth and enhances the chemosensitivity of hepatocellular carcinoma cells[J].Oncol Rep,2013,29(3):1183 ?1188.doi:10.3892/or.2012.2196.

[10]郭人花,王同杉,陳曉鋒,等.mTOR和survivin在他莫昔芬誘導肝癌HepG2細胞凋亡中的作用[J].中華腫瘤雜志,2010,32(12):903?906.doi:10.3760/cma.j.issn.0253?3766.2010.12.005.

[11]陳思遠,程璟,黃長征,等.siRNA抑制生存素基因?qū)盒院谒亓黾毎鸄375凋亡的影響[J].中華皮膚科雜志,2006,39(4):187?189.doi:10.3760/j.issn:0412?4030.2006.04.003.

[12]Mita AC,Mita MM,Nawrocki ST,et al.Survivin:key regulator of mitosis and apoptosis and novel target for cancer therapeutics[J].Clin Cancer Res,2008,14(16):5000?5005.doi:10.1158/1078?0432.CCR?08?0746.

[13]王鵬,張劍寧,陳金輝,等.Survivin對體外培養(yǎng)膠質(zhì)瘤細胞U251替莫唑胺敏感性的影響[J].中華神經(jīng)外科疾病研究雜志,2016,15(4):317?320.

猜你喜歡
小室抑制率細胞周期
中藥單體對黃嘌呤氧化酶的抑制作用
黑龍江科學(2023年8期)2023-06-04 08:40:58
血栓彈力圖評估PCI后氯吡格雷不敏感患者抗血小板藥物的療效
紅霉素聯(lián)合順鉑對A549細胞的細胞周期和凋亡的影響
日媒勸“灰小子”早日放開公主
日本公主的準婆家靠譜嗎?
暢談(2018年6期)2018-08-28 02:23:38
日本莢蒾葉片中乙酰膽堿酯酶抑制物的提取工藝優(yōu)化*
新型寬帶橫電磁波小室的設計
NSCLC survivin表達特點及其與細胞周期的關系研究
X線照射劑量率對A549肺癌細胞周期的影響
癌癥進展(2016年10期)2016-03-20 13:15:43
熊果酸對肺癌細胞株A549及SPCA1細胞周期的抑制作用
镇坪县| 东至县| 大冶市| 砀山县| 常德市| 永兴县| 乐陵市| 普陀区| 南涧| 彩票| 开封县| 双江| 如皋市| 翁牛特旗| 沽源县| 那坡县| 海安县| 浦城县| 修文县| 库伦旗| 同德县| 同江市| 黎川县| 定陶县| 平阴县| 新沂市| 绩溪县| 定兴县| 阿拉尔市| 富平县| 尼玛县| 清镇市| 天台县| 通海县| 来宾市| 陈巴尔虎旗| 金昌市| 日照市| 中卫市| 前郭尔| 余姚市|