梁艷瓊 唐文 吳偉懷 李樂 習(xí)金根 鄭肖蘭 李銳 鄭金龍 黃興 賀春萍 易克賢
摘 要 由鐮孢炭疽菌(Colletotrichum falcatum Went)引起的赤腐病是甘蔗生產(chǎn)上的主要病害之一,發(fā)病時(shí)可導(dǎo)致甘蔗產(chǎn)量嚴(yán)重?fù)p失。為探求赤腐病有效的生防措施,從熱帶牧草臺(tái)灣草葉片上分離到一株生防菌TWC2。經(jīng)形態(tài)觀察、16S rDNA序列分析和生理生化鑒定,確定為解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)。平板對(duì)峙試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),TWC2菌株對(duì)甘蔗赤腐病菌(Colletotrichum falcatum)、香蕉黑星病菌(Macrophoma musae)、橡膠樹炭疽病菌(Colletotrichum gloeosporioides)、柱花草炭疽病菌(Colletotrichum gloeosporioides)、芒果炭疽病菌(Colletotrichum gloeosporioides)、甘蔗環(huán)斑病菌(Leptosphaeria sacchari)、王草莖點(diǎn)霉葉斑病菌(Phoma herbarum)、西瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum)等病原菌均具有一定的抑制作用。離體葉片接種試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),TWC2菌株對(duì)甘蔗赤腐病菌的抑制率達(dá)72.01%,盆栽試驗(yàn)與離體葉片接種結(jié)果一致,表明TWC2菌株對(duì)甘蔗赤腐病具有較好的防治效果。該結(jié)論為開發(fā)甘蔗赤腐病生防方法打下了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞 甘蔗赤腐病 ;解淀粉芽孢桿菌 ;鑒定 ;生防效果
中圖分類號(hào) S476.1 ;S435.661 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A Doi:10.12008/j.issn.1009-2196.2018.02.013
Abstract Sugarcane red rot is caused by Colletotrichum falcatum Went, and is one of the most devastating diseases of sugarcane, causing serious yield loss. An antagonistic bacterial strain TWC2 was isolated from the leaves of Taiwan grass (Zoysia tenuifolia Willd. ex Trin.), a tropical grass, and used to control the red rot disease. The strain TWC2 was identified as Bacillus amyloliquefaciens through morphological observation, 16S rDNA sequence analysis, and physiological and biochemical identification. The plate confrontation test showed that the TWC2 had a strong antagonistic activity against the growth of some pathogenic fungi such as Colletotrichum falcatum, Macrophoma musae, Colletotrichum gloeosporioides infecting Hevea brasilliensis, stylosanthes and mango, Leptosphaeria sacchari, Phoma herbarum and Fusarium oxysporum. In vitro leaf inoculation test showed that the TWC2 had an inhibition rate of 72.01% against C. falcatum, which was the same as the pot experiment. This conclusion indicated that TWC2 had a better control effect against the sugarcane red rot. The study laid a foundation for developing an effective biocontrol method to control the sugarcane red rot.
Keywords sugarcane red rot ; Bacillus amyloliquefaciens ; identification ; biological control
甘蔗(Saccharum officinarum L.)是一種重要的糖料作物和可再生能源作物,盛產(chǎn)于熱帶和亞熱帶地區(qū)。我國(guó)現(xiàn)已成為繼巴西、印度之后的世界第三大種植國(guó)[1-2]。甘蔗易受各種生物和非生物因素影響,但由鐮孢炭疽菌Colletotrichum falcatum Went引起的赤腐?。≧ed Rot)是甘蔗生產(chǎn)過(guò)程中的毀滅性病害,從苗期到成株到收獲后均可發(fā)生,主要為害蔗莖和葉片中脈,侵害葉鞘和宿根蔗頭[3]。該病害不僅導(dǎo)致產(chǎn)量降低,其病原菌還可促使蔗糖轉(zhuǎn)化,降低蔗汁純度、減少蔗糖糖分[4-5]??共∮N一直以來(lái)被認(rèn)為是防治甘蔗赤腐病最安全有效的手段,然抗病品種培育時(shí)間長(zhǎng),易因病原菌小種變異而喪失抗性[6-7];化學(xué)殺菌劑是當(dāng)前最有效的甘蔗赤腐病防治方法,但長(zhǎng)期使用易使病原菌產(chǎn)生抗性而導(dǎo)致防效下降,且頻繁、高濃度的化學(xué)殺菌易產(chǎn)生農(nóng)藥殘留,造成環(huán)境污染,嚴(yán)重威脅人類的健康[8]。隨著人們健康、環(huán)保意識(shí)的增強(qiáng),生物防治以無(wú)毒、無(wú)害、無(wú)污染、高效等優(yōu)點(diǎn)而備受關(guān)注。因此,研究新的無(wú)公害生物防治技術(shù)成為解決甘蔗赤腐病的當(dāng)務(wù)之急。
關(guān)于甘蔗赤腐病的生物防治,國(guó)外已有大量的研究報(bào)道。如Viswanathan等[9-10]從甘蔗根際土壤分離到產(chǎn)幾丁質(zhì)的熒光假單胞菌株CHAO、KKMI,并研究其對(duì)甘蔗赤腐病菌的防治效果;Singh等[11]從76份印度北方邦、比哈爾邦甘蔗的根際土壤中分離到哈茨木霉(Tichoderma harzianum)、綠色木莓(Tichoderma viride),均對(duì)甘蔗赤腐病菌具有抑菌作用,其中哈茨木霉比綠色木霉的抑菌效果更佳;Vijai等[12-13]發(fā)現(xiàn),哈茨木霉(T. harzianum)和綠色木莓(T. viride)的復(fù)合培養(yǎng)物、孢子懸浮液和代謝產(chǎn)物對(duì)降低甘蔗赤腐病的發(fā)病率,提高甘蔗的分蘗率、產(chǎn)量以及蔗種萌發(fā)率具有顯著效果;Hassan等[14]報(bào)道3株枯草芽孢桿菌通過(guò)產(chǎn)生脂肽抗生素、水解酶、鐵載體等次級(jí)代謝產(chǎn)物抑制甘蔗赤腐病菌;Goswami等[15]報(bào)道銅綠假單胞菌RL-DS9(rhamnolipid biosurfactant)產(chǎn)生的生物表面活性劑鼠李糖脂能有效抑制甘蔗赤腐病菌??梢姡蒙谰刂浦参锊『κ且环N環(huán)境友好型的防治措施。為此,本研究從熱帶牧草——臺(tái)灣草植株葉片上篩選獲得一株對(duì)甘蔗赤腐病具有較強(qiáng)拮抗效果的菌株TWC2,并結(jié)合形態(tài)學(xué)、生理生化及分子生物學(xué)方法對(duì)其進(jìn)行鑒定,利用離體接種和盆栽接種的方法探究對(duì)甘蔗赤腐病菌的抑制效果。以期為甘蔗赤腐病的生物防治提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 供試病原菌
甘蔗赤腐病菌(Colletotrichum falcatum Went)、香蕉黑星病菌[Macrophoma musae (cooke) Berl.et Vogal.]、橡膠樹炭疽病菌[Colletotrichum gloeosporioides (Penz.)Penz. and Sacc.]、柱花草炭疽病菌[Colletotrichum gloeosporioides (Penz.)Penz. and Sacc.]、芒果炭疽病菌[Colletotrichum gloeosporioides (Penz.)Penz. and Sacc.]、甘蔗環(huán)斑病菌[Leptosphaeria sacchari V. Breda. de Haan]、王草莖點(diǎn)霉葉斑病菌(Phoma herbarum Wested)和西瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum f.sp.niveum),由中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院環(huán)境與植物保護(hù)研究所分離、鑒定、保存。
1.1.2 供試培養(yǎng)基
細(xì)菌分離純化采用LB培養(yǎng)基(蛋白胨 10 g,酵母浸出物5 g,NaCl 10 g,瓊脂粉15 g,pH 7.0);菌株篩選及抑菌譜測(cè)定選用PDA培養(yǎng)基(去皮馬鈴薯 200 g,葡萄糖 20 g,瓊脂粉15 g,pH 7.0)。
1.1.3 植物材料
甘蔗品種為‘桂糖21號(hào),由中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院環(huán)境與植物保護(hù)研究所提供。
1.2 方法
1.2.1 拮抗細(xì)菌的分離
選取健康的臺(tái)灣草葉片,用無(wú)菌水沖洗干凈,在無(wú)菌超凈工作臺(tái)上分別剪取直徑約5 mm的葉片組織,用75%酒精+0.1%升汞混合液表面消毒30 s,無(wú)菌水清洗3次,移植到PDA平板培養(yǎng)基上,28℃培養(yǎng)一定時(shí)間后挑取菌落形態(tài)不同的菌株,進(jìn)一步劃線純化保存?zhèn)溆?。按五點(diǎn)接菌法將具強(qiáng)致病力的甘蔗赤腐病菌接入PDA培養(yǎng)基平板中央,分離物接于病原菌四周,以不接分離物為對(duì)照,倒置培養(yǎng),從中篩選抑菌作用較強(qiáng)的菌株。
1.2.2 菌株鑒定
1.2.2.1 形態(tài)特征和生理生化特征鑒定
菌株的形態(tài)特征及生理生化特征測(cè)定參照《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[16]和《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[17]進(jìn)行。
1.2.2.2 16S rDNA序列分析
依據(jù)細(xì)菌DNA提取試劑盒(OMEGA)步驟提取TWC2菌株的DNA,采用細(xì)菌通用引物27F:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG -3′,1492R:5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′和引物gyrB:UP-1-Rev1 (5′-CAYGCNGGNGGNAARTTYG-3′),UP-2r (5′-CCRTCNACRTCNGCRTCNGTCAT-3′)進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增[18]。反應(yīng)體系為25 μL,包括10 × PCR 緩沖液( 含Mg2+ ) 2.5 μL, dNTPs(10 mmol/L) 2 μL,引物對(duì)27F/1492R各1 μL ( 10 μmol/L),Taq DNA 聚合酶( 5 U/μL) 0.2 μL,模板DNA 1 μL,最后ddH2O補(bǔ)足至25 μL,以清水為對(duì)照。擴(kuò)增程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性3 min,94℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸1.5 min,30個(gè)循環(huán);72℃再次延伸10 min,4℃保存。PCR反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,與pEASY-T1克隆載體連接,轉(zhuǎn)化至E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)陽(yáng)性克隆檢測(cè),挑取有外源片段的質(zhì)粒于上海英駿生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序。
1.2.3 TWC2菌株抑菌譜測(cè)定
采用平板對(duì)峙法,將7株供試病原菌接入PDA培養(yǎng)基,28℃培養(yǎng)5 d,待菌絲長(zhǎng)滿培養(yǎng)皿,用打孔器取直徑5 mm的菌塊置于PDA平板中央,四周接種TWC2菌株,以沒有接種TWC2菌株為對(duì)照,每處理重復(fù) 3 次,按以下公式計(jì)算病菌抑制率。
病菌抑制率(%)=(對(duì)照菌落半徑-處理菌落半徑)/對(duì)照菌落半徑×100%。
1.2.4 TWC2在甘蔗植株及離體葉片的生防效果
將甘蔗赤腐病菌轉(zhuǎn)接在PDA平板上,28℃培養(yǎng)3 d,備用。TWC2接入LB液體培養(yǎng)基,34℃,200 r/min培養(yǎng)24 h,備用。取嫩綠甘蔗葉片,每處理8片葉片,每片用針刺法刺傷3處,隨后處理如下:① 將TWC2菌液先噴灑在甘蔗葉脈,待風(fēng)干后馬上接病原菌于針刺處(T+S);②先接病原菌于針刺處,后噴灑TWC2菌液(S+T);③只接病原菌于針刺處(S);④空白,只噴清水于葉片表面(CK)。3 d后觀察結(jié)果,按十字交叉法測(cè)病斑直徑并求出面積,按以下公式計(jì)算病斑抑制率。
病斑抑制率(%)=(對(duì)照病斑總面積-處理病斑總面積)/對(duì)照病斑總面積×100%。
2 結(jié)果與分析
2.1 TWC2菌株的獲取
臺(tái)灣草葉片組織在PDA培養(yǎng)基培養(yǎng)后,經(jīng)分離純化,挑取單菌落,獲得形態(tài)、大小、顏色一致的純化菌株31株,備用。用平板對(duì)峙法測(cè)定上述 31株細(xì)菌的抑菌活性,最終得到一株對(duì)甘蔗赤腐病菌具有較強(qiáng)抑制作用的菌株,抑菌率達(dá)70%以上(圖1),將該菌株命名為TWC2。
2.2 TWC2菌株的鑒定
2.2.1 形態(tài)學(xué)和生理生化指標(biāo)
在LB培養(yǎng)基上菌落呈白色,近圓形,表面濕潤(rùn),有褶皺,不透明;經(jīng)顯微鏡觀察,菌株呈桿狀,具芽孢,革蘭氏反應(yīng)陽(yáng)性(圖2);具體生理生化指標(biāo)見表1 。
2.2.2 16S rDNA 序列與同源性分析
以TWC2的基因組DNA為模板,進(jìn)行 PCR擴(kuò)增,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳,檢測(cè)到一條大小約1 500 bp的條帶(圖3-A),測(cè)序結(jié)果為1511 bp。將測(cè)序結(jié)果在 NCBI GenBank上進(jìn)行序列比對(duì),發(fā)現(xiàn)與Bacillus amyloliquefaciens JN382250、KU363819和NR116022同源性最高,達(dá)99%。利用MEGA6軟件進(jìn)行聚類分析,構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖4),TWC2菌株和解淀粉芽孢桿菌聚在同一分支上,初步認(rèn)定TWC2菌株為解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)。
2.2.3 gyrB基因序列分析
進(jìn)一步用細(xì)菌分類中常用的gyrB基因?qū)WC2進(jìn)行分析,以TWC2基因組DNA為模板,擴(kuò)增gyrB基因,電泳檢測(cè)目的片段(圖3-B)與預(yù)計(jì)片段大小基本吻合。搜索GenBank 數(shù)據(jù)庫(kù)里相關(guān)芽胞桿菌gyrB基因序列,以熒光假單胞菌(Pseudomonas fluorescens)和洋蔥伯克霍爾德菌(Burkholderia cepacia)為外群,采用MEGA 6軟件中的Neighbor-Joining 法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖5),結(jié)果顯示,Bacillus thuringiensis、Bacillus megaterium、Bacillus pumilus、Brevibacillus brevis聚在一個(gè)大分支里,Bacillus subtilis、 Bacillus amyloliquefaciens聚在另一個(gè)分支上,TWC2與Bacillus amyloliquefaciens的GM-1、FQS38、DY1b菌株聚在同一分支,親緣性最近,這與16S rRNA 基因系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果一致。
綜合菌落形態(tài)、生理生化特性、16S rDNA 序列分析、gyrB 基因系統(tǒng)發(fā)育分析,最終將TWC2鑒定為解淀粉芽孢桿菌Bacillus amyloliquefaciens。
2.3 對(duì)其他病原真菌的抑制作用
為研究拮抗菌株TWC2 的生防潛力,采用平板對(duì)峙法對(duì)其抑菌譜進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果表明,菌株TWC2對(duì)7株供試病原真菌均有較高的拮抗活性(圖6),其中對(duì)甘蔗赤腐病菌、柱花草炭疽病菌、芒果炭疽病菌的抑制率最高,均達(dá)70%以上(表2)。
2.4 TWC2對(duì)甘蔗赤腐病的防治效果
如圖7所示,對(duì)照組葉片葉脈狀況良好,沒有出現(xiàn)病斑。由表3可知,T+S處理組葉片葉脈出現(xiàn)病斑,但面積較小,僅為9.11 mm2;S+T處理組葉片病斑面積較大,為14.44 mm2;S處理組葉片受赤腐病菌侵染較為嚴(yán)重,病斑面積達(dá)32.56 mm2。說(shuō)明T+S處理組、S+T處理組對(duì)赤腐病菌均有一定抑制作用,其中T+S處理組抑制率最高,達(dá)72.01%,S+T處理組其次,為55.63%,而未噴灑TWC2菌液的S處理組和空白處理抑制率為0。盆栽試驗(yàn)(表4)與離體葉片接種結(jié)果(表3)基本一致, 說(shuō)明TWC2菌株對(duì)甘蔗赤腐病具有較好的防治效果。
3 討論
赤腐病是甘蔗生產(chǎn)過(guò)程中的常見病害,廣泛分布于世界各蔗區(qū),苗期至成株期均可發(fā)病,嚴(yán)重時(shí)可導(dǎo)致30%左右的減產(chǎn)[13]。目前,防治該病的主要措施是抗病育種和化學(xué)防治,但均存在較多缺陷;生物防治以其無(wú)污染、持效期久、環(huán)境兼容性好等特點(diǎn)被認(rèn)為是最具有發(fā)展?jié)摿Φ姆乐畏椒ㄖ?。開展甘蔗赤腐病生物防治最基礎(chǔ)的工作之一就是篩選具有不同生物學(xué)特性的生防微生物,國(guó)外研究人員已經(jīng)分離獲得了一些對(duì)甘蔗赤腐病菌具較好效果的生防微生物。Suresh等[19]研究了哈茨木霉、綠色木霉、黃曲霉、煙曲霉、黑曲霉和硫曲霉等6種根際土壤真菌對(duì)甘蔗赤腐病菌的拮抗活性。Hassan等[20]發(fā)現(xiàn),大田條件下惡臭假單胞菌菌株NH-50可使甘蔗赤腐病減輕44%~60%的危害程度,該菌分泌的胞外代謝物和揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)甘蔗赤腐病菌同樣具有抑制作用。Mehnaz等[21]從甘蔗植株莖桿、根部及根際土壤分離獲得對(duì)甘蔗植株的生長(zhǎng)具有影響作用的7株假單胞菌,并探究了它們的產(chǎn)抗真菌化合物HCN情況和對(duì)甘蔗赤腐病的生防效果。
總的來(lái)說(shuō),目前對(duì)甘蔗赤腐病菌有抑制作用的生防菌中,以假單胞菌(Pseudomonas spp.)和木霉(Trichoderma spp.)居多。本研究從臺(tái)灣草葉片上分離獲得一株解淀粉芽孢桿菌,室內(nèi)防效試驗(yàn)結(jié)果表明,該菌株對(duì)甘蔗赤腐病菌具有較高的抑制活性,對(duì)赤腐病菌抑制率達(dá)72.01%,為甘蔗赤腐病的防治提供了新的生防資源。
解淀粉芽孢桿菌是目前一種重要的芽孢桿菌類生防菌,其在生長(zhǎng)過(guò)程中會(huì)分泌某些物質(zhì)和代謝產(chǎn)物,這些物質(zhì)對(duì)很多真菌和細(xì)菌均具有抑制作用。已有研究表明,解淀粉芽孢桿菌對(duì)白粉菌(Erysiphe)、灰霉菌(Botrytis cinerea)、大麗輪枝菌(Verticillium dahliae)、梨孢霉菌(Piricularia sp.)、雷爾氏菌(Ralstonia solanacearum)、禾谷多粘菌(Polymyxa graminis)、青霉菌(Penicillium sp.)、稻黃單胞菌稻生致病變種(Xanthomonas oryzae pv. oryzicola, Xooc)、絲核菌(Rhizoctonia solani)、鐮刀菌(Fusarium oxysporum)、灰葡萄孢(Botrytis cinerea)、鏈格孢(Alternaria Nees)等多種病原菌都具有很好的拮抗作用[19-27]。本研究結(jié)果表明TWC2不僅能抑制甘蔗赤腐病菌(Colletotrichum falcatum)、橡膠樹炭疽病菌(Colletotrichum gloeosporioides)、柱花草炭疽病菌(C.gloeosporioides)和芒果炭疽病菌(Colletotrichum gloeosporioides)等病原真菌的生長(zhǎng),而且對(duì)香蕉黑星病菌(Macrophoma musae)、甘蔗環(huán)斑病菌(Leptosphaeria sacchari)、王草莖點(diǎn)霉葉斑病菌(Phoma herbarum Wested)和西瓜枯萎病菌(Fusarium oxysporum)也有較好的抑制作用。說(shuō)明解淀粉芽孢桿菌TWC2是一株具有廣譜抑菌活性的拮抗菌。此外,解淀粉芽胞桿菌的防效具有較好的穩(wěn)定性,張榮勝[28]等人研究發(fā)現(xiàn),解淀粉芽孢桿菌Lx-11對(duì)水稻細(xì)菌性條斑病的盆栽防效達(dá) 62.5%,大面積示范試驗(yàn)的防效則為 60.2%,顯著高于20%葉枯唑的防效(51.2%和 45.8%)。楊洪鳳[29]盆栽試驗(yàn)表明,內(nèi)生解淀粉芽孢桿菌 CC09的菌株發(fā)酵液對(duì)小麥白粉病有很高的預(yù)防治療效果,15 d防效為 95%,為三唑酮的2.3倍。本研究中,離體葉片和盆栽試驗(yàn)均表明,菌株TWC2對(duì)甘蔗赤腐病有較好的防效,該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了芽孢桿菌防效的穩(wěn)定性。
綜上所述,解淀粉芽孢桿菌TWC2抗菌譜廣,為甘蔗赤腐病害中開發(fā)應(yīng)用潛力較大的生防菌。當(dāng)然,要實(shí)現(xiàn)在生產(chǎn)上的推廣應(yīng)用,仍需在生產(chǎn)、代謝產(chǎn)物的純化與鑒定以及生防機(jī)制等方面做進(jìn)一步的研究。未來(lái)隨著發(fā)酵條件與應(yīng)用方式的進(jìn)一步優(yōu)化,該菌生防潛力將會(huì)得到進(jìn)一步提升。
參考文獻(xiàn)
[1] 吳夏明,沈萬(wàn)寬,羅明珠,等. 甘蔗赤腐病及其病原菌研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)糖料,2015,37(6): 66-70.
[2] 熊國(guó)如,張雨良,趙婷婷,等. 海南蔗區(qū)甘蔗黃葉病與花葉病發(fā)生情況的分子鑒定[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),2011,
32(12):2 307-2 311.
[3] 許漢亮,林明江,管楚雄,等. 甘蔗赤腐病對(duì)甘蔗品質(zhì)指標(biāo)的影響[J]. 甘蔗糖業(yè),2012,3(6):23-28.
[4] Rajkunmar D, Murugesan R. Identification and evaluaation of antifungal compounds from botanicals for the control of sugarcane red rot pathogen, colletotrichum falcatum[J]. Joumal of Research in Agriculture, 2013, 2(1): 164-172.
[5] 周國(guó)輝,許東林,沈萬(wàn)寬. 甘蔗重要病害研究及防治策略[J]. 甘蔗糖業(yè),2005(1):11-16.
[6] Sengar A S, Thind K S, Kumar B, et al. In vitro selection at cellular level for red rot resistance in sugarcane (Saccharum sp.) [J]. Plant Growth Regul, 2009(58): 201-209.
[7] 吳偉懷,王彩霞,梁艷瓊,等. 11種殺菌劑對(duì)甘蔗赤腐病菌的毒力測(cè)定[J]. 熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,35(6):37-42.
[8] 洪 鵬,安國(guó)棟,胡美英,等. 解淀粉芽孢桿菌防治果蔬采后病害研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2013,29(12):168-173.
[9] iswanathan R, Samiyappan R. Red rot disease in sugarcane: challenges and prospects[J]. Madras Agricultural Journal, 2000, 87(10/12): 549-559.
[10] Viswanathan R, Samiyappan. R. Antifungal activity of chitinases produced by some fluorescent pseudomonads against Colletotrichum falcatum Went causing red rot disease in sugarcane[J]. Microbiol. Res, 2001(155): 309-314.
[11] Singh. V, Srivastava S N, Lal R J, et al . Biological control of red rot disease of sugarcane through Trichoderma harzianum and Trichoderma viride[J]. Indian Phytopathology, 2008, 61(4): 486-491.
[12] Singh V, Joshi B B, Awasthi S K, et al. Eco-friendly management of red rot disease of sugarcane with Trichoderma strains[J]. Sugar Tech, 2008, 10(2): 158-161.
[13] 林善海,黃誠(chéng)華,王伯輝. 甘蔗赤腐病防治技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)糖料,2011(4):69-73.
[14] Hassan M N, Osborn A M, Hafeez F Y. Molecular and biochemical characterization of surfactin producing Bacillus species antagonistic to Colletotrichum falcatum Went causing sugarcane red rot[J]. African Journal of Microbiology Research, 2010, 4(20): 2 137-2 142.
[15] Goswami D, Borah S N, Lahkar J, et al. Antifungal properties of rhamnolipid produced by Pseudomonas aeruginosa DS9 against Colletotrichum falcatum[J]. Journal of basic microbiology, 2015, 55(11): 1 265-1 274.
[16] Garrity G M,Bell J A,Lilburn T G. Taxonomic outline of the prokaryotes Bergeys manual systematic bacteriology (2nd ed)[M]. New York: Springer Verlag,2004:134-137.
[17] 東秀珠,蔡妙英. 常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2001:349-363.
[18] 祝學(xué)海,李玉權(quán),陶小買,等. 貴州半夏塊莖腐爛病拮抗細(xì)菌的篩選與鑒定[J]. 微生物學(xué)通報(bào),2017,44(2):438-448.
[19] Suresh N, Nelson R. Isolation of antagonistic fungi and evaluation of antifungal activity of the separated metabolite against the red rot of sugarcane pathogen[J]. Eur. J. Exp. Biol, 2016(6): 15-21.
[20] Hassan M N, Afghan S, Hafeez F Y. Biological control of red rot in sugarcane by native pyoluteorin-producing Pseudomonas putida strain NH-50 under field conditions and its potential modes of action[J]. Pest Manag Sci, 2011, 67(9): 1147-1 154.
[21] Mehnaz S, Weselowski B, Aftab F, et al. Isolation, characterization,and effect of fluorescent pseudomonads on micropropagated sugarcane[J]. Canadian Journal of Microbiology, 2009, 55(8): 1 007-1 011.
[22] 汪漢成,王茂勝,黃艷飛,等. 煙草青枯病拮抗菌株 ZHOA 的分離鑒定及其表型組學(xué)分析[J]. 植物病理學(xué)報(bào),2016,46(3):409-419.
[23] 谷醫(yī)林,王遠(yuǎn)宏,常若葵,等. 解淀粉芽孢桿菌 LJ1 誘導(dǎo)黃瓜白粉病的研究[J]. 農(nóng)藥學(xué)學(xué)報(bào),2013,15(3):293-298.
[24] 裘紀(jì)瑩,黃玲玲,陳蕾蕾,等. 解淀粉芽抱桿菌NCPSJ7抑制青霉病病原菌及防治梨采后青霉病的效果[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2014,30(21):311-315.
[25] 張榮勝,王曉宇,羅楚平,等. 解淀粉芽孢桿菌 Lx-11 產(chǎn)脂肽類物質(zhì)鑒定及表面活性素對(duì)水稻細(xì)菌性條斑病的防治作用[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,46(10):2014-2021.
[26] 洪 鵬,安國(guó)棟,胡美英,等. 解淀粉芽孢桿菌HF01發(fā)酵條件優(yōu)化[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào), 2013,29(4):569-578.
[27] 于曉麗,亓 超,王培松,等. 果樹真菌病害拮抗細(xì)菌的篩選、鑒定及拮抗機(jī)制初探[J]. 果樹學(xué)報(bào),2016,33(6):734-743.
[28] 張榮勝,劉永鋒,陳志誼. 水稻細(xì)菌性條斑病菌拮抗細(xì)菌的篩選、評(píng)價(jià)與應(yīng)用研究[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2011,27(4):510-514.
[29] 楊洪鳳,薛雅蓉,余向陽(yáng),等. 內(nèi)生解淀粉芽孢桿菌CC09菌株在小麥葉部的定殖能力及其防治白粉病效果研究[J]. 中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2014,30(4):481-488.