陳顯兵,楊清煜,覃曉莉,趙方毓,唐鮮娥,王子禮,陳宗海,向家鵬
(1.生物資源保護(hù)與利用湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北恩施 445000;湖北民族學(xué)院,2.醫(yī)學(xué)院,3.附屬民大醫(yī)院,湖北恩施 445000)
胰島素抵抗(insulin resistance,IR)是2型糖尿?。╰ype 2 diabetes mellitus,T2DM)的危險(xiǎn)因素,是多種代謝性疾病的前期表現(xiàn)和主要組成部分[1-2]。高脂飲食是導(dǎo)致IR和T2DM發(fā)病的重要因素。研究發(fā)現(xiàn),高脂飲食誘導(dǎo)的IR模型與人肥胖時(shí)的IR狀態(tài)及糖耐量受損相似,高脂飲食可影響胰島素分泌[3-4]。肝是利用葡萄糖、產(chǎn)生葡萄糖的重要器官,肝功能紊亂對(duì)IR的發(fā)生具有重要意義。過(guò)多的脂肪沉積在肝中會(huì)改變肝功能,出現(xiàn)甘油三酯(triglycerides,TG)升高,高密度脂蛋白膽固醇(highdensity lipoprotein cholesterol,HDL-C)降低,高胰島素血癥和低脂聯(lián)素血癥[5]。
過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體(peroxisome proliferators-activated receptors,PPAR)在脂代謝過(guò)程中發(fā)揮關(guān)鍵作用,調(diào)控脂肪儲(chǔ)存和釋放,在維持機(jī)體能量平衡和改善IR等方面均有正向調(diào)節(jié)作用。鳶尾素(irisin)是一種肌肉因子,通過(guò)增加體內(nèi)能量消耗來(lái)改善糖、脂肪及氨基酸代謝,逆轉(zhuǎn)肝脂肪變性,提高胰島素敏感性的作用被認(rèn)為可能是肥胖、糖尿病等疾病治療的突破點(diǎn)[6-8]。研究發(fā)現(xiàn),糖尿病的發(fā)生與氧化應(yīng)激調(diào)控密切相關(guān),活性氧(reactive oxygen species,ROS)增多可以促進(jìn)糖尿病的發(fā)生[9],大量攝取高脂飲食能顯著增加體內(nèi)氧化應(yīng)激的水平[10],同時(shí)氧化應(yīng)激對(duì)胰島素信號(hào)通路有抑制作用[11]。提示氧化應(yīng)激可能對(duì)這類(lèi)疾病的發(fā)生及發(fā)展有著重要的影響[12]。
筒鞘蛇菰(Balanophora involucrateHook.f.)又名文王一枝筆、借母懷胎或雞心七。民間醫(yī)生用其治療肝炎、消化道出血和醉酒等病癥。研究表明,蛇菰含有多糖和黃酮類(lèi)等成分,具有提高人體免疫功能、清除自由基、抗腫瘤、降血壓和降血脂藥理活性[13-15]。但蛇菰多糖(Balanophorapolysac?charide,BPS)對(duì)T2DM的療效觀察及機(jī)制研究尚未見(jiàn)報(bào)道。本研究擬制備高脂飲食和STZ誘導(dǎo)的IR大鼠模型,探討B(tài)PS對(duì)其血糖、血脂和肝組織中自由基的影響,并檢測(cè)血清鳶尾素和肝組織中PPARγ的變化,探討B(tài)PS抗IR的可能機(jī)制,為糖脂代謝性疾病的治療提供新的思路。
大鼠鳶尾素ELISA試劑盒(杭州聯(lián)科Cat.CKE93640R);PPARγ抗體、β肌動(dòng)蛋白抗體(一抗)和辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG抗體(二抗)(美國(guó)Santa Cruz公司);鏈脲佐菌素(streptozocin,STZ)(美國(guó) Sigma 公司);總膽固醇(total choles?terol,TC)、TG、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)和 HDL-C試劑盒(北京索萊寶科技有限公司);超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)和丙二醛(malondi?aldehyde,MDA)試劑盒(南京建成生物工程有限公司);膽固醇(湖北中料化工有限公司)。Leica 1850冰凍切片機(jī),Nikon80i正置顯微鏡(日本),LAS4000mini成像儀,日立7600全自動(dòng)生化分析儀(日本)。
筒鞘蛇菰全株于2015年夏季采自湖北省恩施市望城坡,經(jīng)湖北民族大學(xué)藥用植物分類(lèi)與鑒定實(shí)驗(yàn)室李厚聰博士鑒定為蛇菰科(Balanophoraceae)蛇菰屬(Balanophora)植物,主要分布于湖北、云南和四川等地。洗凈后50℃烘干,搗碎成粗粉后稱(chēng)取500 g,加入5 L去離子水,浸泡4 h,加熱煮沸提取60 min,過(guò)濾,濾渣再分別加去離子水5 L和4 L,同法加熱煮沸提取2次,過(guò)濾,合并濾液,并于40℃減壓濃縮至1 L。濃縮液加入無(wú)水乙醇,使乙醇的體積分?jǐn)?shù)達(dá)90%,4℃靜置過(guò)夜。離心分離沉淀,沉淀部分加水0.5 L攪拌,離心,沉淀部分再同法操作2次。合并上清液,將3次沉淀合并加水溶解后,離心除去不溶物,濾液減壓濃縮,攪拌后離心收集沉淀,無(wú)水乙醇洗滌3次,50℃烘干,得蛇菰粗多糖。Sevage法脫蛋白[16],將所得蛇菰粗多糖配成5%水溶液,加入1/4體積的氯仿-正丁醇混合溶液(氯仿∶正丁醇=4∶1),振搖30 min,離心15 min(5000×g),棄下層沉淀,收集上清,反復(fù)3次?;旌仙锨逡貉b入即用型透析袋(相對(duì)分子質(zhì)量:1000;級(jí)別:RC膜 S/P 6),蒸餾水透析48 h,凍干,得BPS。苯酚-硫酸法[17]測(cè)定其中多糖含量為61.3%。
成年健康雄性SD大鼠30只,體質(zhì)量200~220 g,湖北省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心購(gòu)買(mǎi)(許可證號(hào)SCXK(鄂)2015-0018),本實(shí)驗(yàn)通過(guò)湖北民族學(xué)院倫理委員會(huì)倫理審查。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,隨機(jī)分為正常對(duì)照組(n=10),普通飼料喂養(yǎng);模型組(n=20)高脂飼料喂養(yǎng)(在普通飼料中添加豬油10%、雞蛋5%和膽固醇2.5%)4周后,一次性ip給予STZ 40 mg·kg-1,1周后測(cè)定空腹血糖(fasting blood-glucose,F(xiàn)BG),F(xiàn)BG≥7.8 mmol·L-1作為模型成功標(biāo)準(zhǔn)[18]。將模型大鼠分成2組,分別為模型組和模型+BPSG組,每組10只。模型組ig給予等體積生理鹽水;模型+BPS組ig給予BPS 200 mg·kg-1,共4周。所有大鼠最后1次給藥后禁食12 h,稱(chēng)取空腹體質(zhì)量,麻醉后取心臟血,制備血清;然后將肝組織完整取出,預(yù)冷生理鹽水沖洗干凈,濾紙吸干肝表面水分,稱(chēng)肝濕重,然后在相同部位取材固定,新鮮肝組織-80℃凍存。肝指數(shù)=肝濕重(g)/體質(zhì)量(g)×100。
觀察各組大鼠肝大體顏色、形態(tài)及質(zhì)地的變化。在同一部位取材冰凍切片,切片厚5 μm,自然干燥5 min,70%乙醇稍洗,蘇丹Ⅲ染色5 min;70%乙醇洗去多余染液,蘇木素常規(guī)染核,甘油封片后顯微鏡下觀察。
將采集的心臟血在室濕下靜置60 min后,離心,分離血清,分裝。各組大鼠FBG,TC,TG,LDL-C和HDL-C指標(biāo)檢測(cè)嚴(yán)格按試劑盒實(shí)驗(yàn)流程進(jìn)行。
取肝組織約1 g,在冰浴中勻漿,離心,取上清。肝組織上清MDA含量和SOD活性的測(cè)定方法分別采用硫代巴比妥酸法(TBA法)和亞硝酸鹽法。檢測(cè)嚴(yán)格按試劑盒實(shí)驗(yàn)流程進(jìn)行。
按該試劑盒的要求取樣和保存待測(cè)樣品,遵照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。設(shè)置空白孔、標(biāo)準(zhǔn)品孔和待測(cè)樣品孔,首先在板孔中加入工作液,再分別加入標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣品,搖勻,用膜覆蓋酶標(biāo)板,37°C孵育1 h,洗滌5次,加入底物,37°C孵育30 min,洗滌5次,TMB顯色30 min,加終止液終止反應(yīng)。酶標(biāo)儀測(cè)定各孔的吸光度值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),按公式計(jì)算樣品濃度。
取大鼠肝組織,PBS清洗2次,棄PBS,加入1 mL RIPA裂解液,冰浴勻漿;4℃ 10000×g,離心10 min,去沉淀,留取上清。BCA法測(cè)定蛋白濃度,取10 μg蛋白加入上樣緩沖液,煮沸5 min后進(jìn)行SDS-PAGE電泳并電轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫振蕩封閉2 h,TBST洗膜3次,每次5 min,加1∶500稀釋的PPARγ一抗4℃孵育過(guò)夜,PBS洗膜3次,每次15 min,再加入二抗(HRP標(biāo)記的IgG,1∶7500)37℃孵育 60 min,PBS 洗膜 3次,每次5 min,用化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)蛋白表達(dá),以β肌動(dòng)蛋白為內(nèi)參照,LAS4000 mini凝膠成像系統(tǒng)顯影并分析。以目標(biāo)蛋白與內(nèi)標(biāo)蛋白積分吸光度值比值表示蛋白相對(duì)表達(dá)量。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果數(shù)據(jù)以±s表示,采用SPSS20.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,用單因素方差分析和t檢驗(yàn)進(jìn)行分析處理,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
圖1結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組比較,模型照組和模型+BPS組體質(zhì)量增加幅度明顯降低(P<0.01);模型+BPS組體質(zhì)量增加幅度比模型組較高(P<0.05)。正常對(duì)照組肝指數(shù)為3.21±0.21,模型組肝指數(shù)4.43±0.33,顯著升高(P<0.01);模型+BPS組肝指數(shù)為3.83±0.28,相比模型組顯著降低(P<0.01),但仍高于正常對(duì)照組(P<0.05)。
正常組肝顏色暗紅,不油膩。模型組肝較正常組大,顏色棕黃,質(zhì)軟,油膩感強(qiáng)。模型+BPS組肝較模型組有較大改善(圖2A)。
正常組肝組織結(jié)構(gòu)完整,肝細(xì)胞排列整齊,肝小葉規(guī)則,呈放射狀分布,肝細(xì)胞質(zhì)中無(wú)或僅少數(shù)細(xì)胞出現(xiàn)脂肪變性;模型組肝小葉結(jié)構(gòu)紊亂,肝細(xì)胞體積大,胞漿內(nèi)可見(jiàn)大小不等的脂滴,且呈彌漫性分布,肝小葉內(nèi)及匯管區(qū)有炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)。BPS組肝細(xì)胞脂肪變性比模型組明顯好轉(zhuǎn)(圖2B)
Fig.1Effect of Balanophora polysaccharide(BPS)on body mass of experimental diabetic rats.Male SD rats were fed with high fat feed(add 10%lard,5%eggs and 2.5%cholesterol to normal feed)for 4 weeks,injected into the abdominal cavity using streptozocin(STZ)40 mg·kg-1one time and fasting blood glucose(FBG)was measured one week later.The model group was identified when the level of FBG ≥7.8 mmol·L-1.Then the experimental group was intragastrically administered BPS 200 mg·kg-1for 4 weeks.±s,n=10.**P<0.01,compared with normal control group;#P<0.05,compared with model group.
Fig.2 Effect of BPS on liver histopathological changes of experimental diabetic rats.See Fig.1 for the treatment.A:the change in liver by the naked eyes;B:the microscopic structure change in the liver.Sections were stained with SudanⅢ.Arrows show lipid droplets.
與正常對(duì)照組相比,模型組大鼠FBG水平顯著升高(P<0.01);模型+BPS組FBG明顯低于模型組(P<0.05),但仍高于正常值,屬于糖尿病狀態(tài)。模型組TC,TG和LDL-C水平比正常對(duì)照組升高(P<0.01),HDL-C 水平降低(P<0.01);與模型組相比,模型+BPS組TG和LDL-C水平顯著降低(P<0.05),而 HDL-C 水平則升高(P<0.05)(表1)。
Tab.1 Effect of BPS on fasting blood glucose(FBG)and lipid level of experimental diabetic rats
與正常對(duì)照組相比,模型組大鼠肝中SOD活性顯著降低(P<0.01);與模型組相比,模型+BPS組SOD活性升高(P<0.05)。與正常對(duì)照組相比,模型組MDA含量顯著升高(P<0.01);與模型組相比,模型+BPS組MDA含量顯著下降(P<0.05),但仍顯著高于正常對(duì)照組(P<0.01)(表2)。
Tab.2 Effect of BPS on SOD and MDA of experimental diabetic rats
實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,模型組大鼠血清鳶尾素水平顯著地低于正常對(duì)照組(P<0.01);模型+BPS組大鼠血清鳶尾素水平明顯高于模型組(P<0.05)(表3)。
Tab.3 Effect of BPS on serum irisin level of experi?mental diabetic rats
Western蛋白印跡結(jié)果顯示(圖3),模型組PPARγ表達(dá)低于正常對(duì)照組(P<0.01);模型+BPS組大鼠肝組織PPARγ表達(dá)高于模型組(P<0.05)。
Fig.3 Effect of BPS on expression of peroxisome prolif?erators-activated receptor γ(PPAR γ)protein in liver of experimental diabetic rats by Western blotting.See Fig.1 for the treatment.±s,n=10.**P<0.01,compared with normal control group;#P<0.05,compared with model group.
本研究采用高脂飲食方法誘導(dǎo)IR T2DM大鼠模型。模型組大鼠體質(zhì)量減輕,肝指數(shù)升高;蘇丹Ⅲ染色光鏡觀察顯示肝小葉結(jié)構(gòu)紊亂,肝細(xì)胞體積大,胞漿內(nèi)可見(jiàn)大小不等的脂滴,肝小葉內(nèi)及匯管區(qū)有不同程度炎癥細(xì)胞浸潤(rùn);血清FBG,TG,TC和LDL-C水平明顯升高,HDL-C降低;肝組織SOD活性降低,MDA含量升高;血清鳶尾素的水平降低,肝組織中PPARγ蛋白表達(dá)降低。表明高脂飲食和STZ方法成功誘導(dǎo)IR T2DM大鼠模型。
本研究結(jié)果顯示,BPS處理可降低模型大鼠升高的FBG,TG和LDL-C水平,升高HDL-C,提高SOD活性,降低MDA含量,提高血清鳶尾素的水平,上調(diào)肝組織中PPARγ蛋白表達(dá),表明BPS對(duì)高脂飲食誘導(dǎo)的糖尿病大鼠具有一定的治療效果。在前期實(shí)驗(yàn)中采用BPS 100,200和400 mg·kg-1對(duì)模型大鼠進(jìn)行干預(yù),發(fā)現(xiàn)BPS 100 mg·kg-1組FBG呈下降趨勢(shì),但與模型組比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異;400 mg·kg-1與200 mg·kg-1作用相當(dāng),無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。在本研究中只采用了BPS 200 mg·kg-1對(duì)模型組進(jìn)行干預(yù),未對(duì)正常對(duì)照組進(jìn)行單獨(dú)干預(yù)及與陽(yáng)性藥品進(jìn)行對(duì)比。同時(shí)發(fā)現(xiàn),BPS 200 mg·kg-1治療4周,F(xiàn)BG仍高于糖尿病閥值,可能與治療時(shí)間有關(guān)。因此,對(duì)BPS的毒性及有效劑量有待進(jìn)一步研究。
本研究發(fā)現(xiàn),IR模型大鼠血清鳶尾素水平明顯低于正常對(duì)照組,經(jīng)BPS干預(yù)后鳶尾素水平明顯上升,與FBG及血脂的變化相一致。但是血清鳶尾素水平與糖尿病相關(guān)性的研究還存在爭(zhēng)議,可能是由研究的性別和種族差異引起的[19]。但多數(shù)研究結(jié)果顯示,T2DM患者血清鳶尾素水平低于正常人群[20-21]。同時(shí)研究發(fā)現(xiàn),肝中存在鳶尾素的免疫反應(yīng),提示肝可能是鳶尾素受體活躍的器官[22]。T2DM和肥胖患者胰島素對(duì)肝糖原分解和糖異生的抑制效應(yīng)明顯減弱,血清鳶尾素水平與肝TG呈負(fù)相關(guān)[23-24]。以上結(jié)果表明,鳶尾素參與了IR T2DM的發(fā)病。
本研究結(jié)果顯示,模型組PPARγ的表達(dá)顯著降低,血清鳶尾素水平減少。PPARγ在脂代謝過(guò)程中起關(guān)鍵作用,調(diào)控脂肪儲(chǔ)存和釋放,在維持機(jī)體能量平衡等方面均有正向調(diào)節(jié)作用[25-27]。PPARγ被配體激活后[28-29],改善IR的可能機(jī)制包括增強(qiáng)胰島素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)[30]、調(diào)節(jié)胰島細(xì)胞[31]、參與糖代謝過(guò)程中某些關(guān)鍵酶的表達(dá)及抑制丙酮酸脫氫酶激酶表達(dá)[32]。
綜上所述,BPS具有明顯的降血糖作用,并且能降低MDA的含量,提高SOD活性,改善脂代謝異常。但BPS的降糖作用是與其提升鳶尾素水平和增強(qiáng)肝內(nèi)PPARγ的表達(dá)有關(guān),還是與提高機(jī)體的抗氧化能力有關(guān)目前無(wú)法確定,其具體的機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
中國(guó)藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志2018年5期