孫 佳,王春燕,皮若冰,李 桐,劉 飛,姜瞻梅
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,乳品科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江哈爾濱150030)
乳清是生產(chǎn)干酪或干酪素的副產(chǎn)物,從乳清中制得的蛋白質(zhì)產(chǎn)品有乳清濃縮蛋白(WPC)和乳清分離蛋白(WPI),乳清蛋白因其豐富的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和功能特性被廣泛應(yīng)用在食品工業(yè)中[1]。WPI具有良好的凝膠性,但其凝膠保水性較差,在食品工業(yè)上的應(yīng)用具有一定的局限性。目前,常見(jiàn)的蛋白改性方法主要有物理方法、化學(xué)方法和酶法。比較而言,酶法改性條件溫和,副產(chǎn)物較少。在食品酶改性方面,轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶已經(jīng)成功地運(yùn)用到大豆分離蛋白、小麥面筋蛋白等蛋白的改性[2-3]。
轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶(TGase,EC2.3.2.13)是一種催化?;D(zhuǎn)移反應(yīng)的轉(zhuǎn)移酶,它可以催化肽結(jié)合的賴氨酸殘基的ε-氨基和肽結(jié)合的谷氨酰胺殘基的γ-羧酰胺基之間的?;D(zhuǎn)移反應(yīng),導(dǎo)致形成ε-(γ-谷氨酰胺)賴氨酸共價(jià)鍵[4]。TGase對(duì)蛋白質(zhì)的主要作用有催化蛋白質(zhì)分子內(nèi)和分子間的交聯(lián),從而改變蛋白質(zhì)的功能特性,如凝膠性、乳化性、起泡性和熱穩(wěn)定性等[5-6]。Wang 等[7]研究表明,含有 TGase 的小麥面筋蛋白凝膠在離心后可以保留住更多的水分,添加TGase可以顯著改善凝膠的保水性。此外,Lorenzen[8]研究表明,在預(yù)熱和 TGase交聯(lián)的加工條件下,復(fù)原脫脂乳和乳清蛋白的功能特性(如表觀粘度、保水性和熱穩(wěn)定性)增加。但是,由于WPI的主要成分α-乳白蛋白(α-La)和 β-乳球蛋白(β-Lg)的剛性球狀結(jié)構(gòu),TGase交聯(lián)的位點(diǎn)以及空間位阻等原因,WPI不是TGase作用的良好底物,因此需要用物理手段處理WPI,以促進(jìn)TGase的交聯(lián)反應(yīng)。新興的物理改性手段主要有超聲、高壓和微波等方法[9-10],超聲處理作為一種新興的技術(shù),可以促進(jìn)蛋白質(zhì)分子的展開,減少蛋白粒徑,暴露出更多的游離巰基和疏水性基團(tuán)[11]。同時(shí),通過(guò)超聲處理可以有效暴露酶交聯(lián)反應(yīng)位點(diǎn),促進(jìn)交聯(lián)程度的提高及增加交聯(lián)產(chǎn)物的產(chǎn)量[12]。
本研究采用超聲波與TGase交聯(lián)相結(jié)合的方法,研究?jī)烧叩穆?lián)合作用對(duì)WPI的分子量分布、粒徑大小、熒光強(qiáng)度和凝膠保水性的影響,建立物理結(jié)合酶技術(shù),生產(chǎn)具有優(yōu)良凝膠保水性的改性蛋白質(zhì)的工藝過(guò)程,為工業(yè)化生產(chǎn)提供理論基礎(chǔ)和技術(shù)支撐。
WPI(蛋白質(zhì)含量93.5%) 美國(guó)Mullins Whey公司;轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶(酶活100 U/g) 江蘇一鳴生物股份有限公司;Marker(14~120 kDa) 上海Novoprotein公司;十二烷基硫酸鈉(SDS)、三羥甲基氨基甲烷(Tris)、β-巰基乙醇和8-苯胺-1-萘磺酸(ANS) 美國(guó)Sigma-Aldrich公司;丙三醇 天津市天力化學(xué)試劑有限公司;濃鹽酸 哈爾濱理工化學(xué)試劑有限公司;溴酚藍(lán) 天津市永大化學(xué)試劑有限公司;其他試劑 均為分析純。
DY-1200Y超聲細(xì)胞破碎儀 中國(guó)上海德陽(yáng)儀邦儀器有限公司;Nano-ZS90激光粒度儀 英國(guó)Malvern公司;1658050Bio-Rad電泳儀 美國(guó) Bio-Rad公司;F4500熒光分光光度計(jì) 日本日立公司。
1.2.1 超聲和TGase聯(lián)合處理WPI樣品的制備 將乳清分離蛋白(WPI)12.5 g溶于100 mL去離子水中,室溫下置于磁力攪拌器攪拌2 h使蛋白充分溶解,得到濃度為125 mg/mL的蛋白溶液。將所得WPI溶液用1 mol/L的NaOH溶液調(diào)整pH為7.0。將溶解好的WPI溶液在400 W(20 kHz)的條件下超聲處理 0、10、20、30、40 min(工作時(shí)間為 2 s,間歇時(shí)間4 s),樣品溶液超聲過(guò)程中置于冰水浴中,以保證樣品溫度不超過(guò)30℃。分別添加35 U/g的TGase于預(yù)處理好的蛋白溶液中,于50℃水浴鍋中分別反應(yīng)4 h,取出后立即置于75℃水浴鍋中滅酶15 min,于室溫冷卻,將酶反應(yīng)后的蛋白溶液凍干,所得凍干粉于-20℃冰箱中冷凍以備后續(xù)測(cè)定??瞻捉M是單獨(dú)超聲處理的WPI。
1.2.2 分子量分布 根據(jù)Cura等[13]的方法進(jìn)行了改進(jìn),通過(guò)聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)估算樣品的分子量分布。在實(shí)驗(yàn)中使用4%的濃縮膠與12.6%的分離膠。用去離子水將樣品溶液稀釋至濃度為2.5 mg/mL,取10μL的5×SDS樣品緩沖液(0.6 mL濃度為1 mol/L的Tris-HCl緩沖液(p H6.8),2.0 mL濃度為100 mg/mL的 SDS溶液,5.0 mL濃度為50%的甘油,1.0 mL濃度為10 mg/mL的溴酚藍(lán),0.5 mLβ-巰基乙醇,0.9 mL去離子水)加入到40μL的樣品中,混合均勻,進(jìn)行沸水浴處理5 min,冷卻后上樣。用10μL微量進(jìn)樣器吸取蛋白質(zhì)樣品,進(jìn)行上樣。蛋白質(zhì)條帶通過(guò)考馬斯亮藍(lán)R250染色。
1.2.3 粒徑分布 樣品按質(zhì)量比為1∶50用去離子水稀釋,稀釋至濃度為1 mg/mL,通過(guò)0.45μm過(guò)濾器過(guò)濾,采用粒度分布儀測(cè)定樣品中粒子大小及其體積分布情況。
1.2.4 熒光光譜掃描 根據(jù)Liu等[14]的方法進(jìn)行了改進(jìn),通過(guò)熒光分光光度計(jì)對(duì)樣品進(jìn)行固有熒光掃描。樣品用0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(p H7.0)稀釋至終濃度為1 mg/mL。掃描的激發(fā)波長(zhǎng)為280 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為290~420 nm。激發(fā)和發(fā)射的狹縫寬度均為5 nm,掃描速率為240 nm/s。
1.2.5 表面疏水性的測(cè)定 根據(jù)Chandrapala等[15]的方法進(jìn)行了改進(jìn),以1-苯胺基-8-萘磺酸鹽(ANS)為熒光探針,測(cè)量蛋白的表面疏水性值。用0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)將蛋白質(zhì)量濃度調(diào)為1~5 mg/mL,然后將20μL的 ANS(8 mmol/L在0.01 mol/L p H為7.0的磷酸鹽緩沖液中)加入到4 mL蛋白質(zhì)稀釋液中,并在黑暗中保持15 min,然后進(jìn)行測(cè)量。激發(fā)和發(fā)射波長(zhǎng)為390、470 nm。激發(fā)和發(fā)射的狹縫寬度均為5 nm。熒光強(qiáng)度與蛋白質(zhì)濃度線性回歸的初始斜率為表面疏水性。
1.2.6 凝膠保水性(WHC)的測(cè)定 根據(jù)Yuan等[16]的方法測(cè)定樣品的凝膠保水性。取15 mL反應(yīng)后的蛋白溶液于25 mL燒杯,用保鮮膜封口,之后置于95℃的水浴鍋中加熱30 min,取出后立即放入冰水浴中冷卻30 min,存放在4℃冰箱中過(guò)夜。將上面制備的乳清分離蛋白酶改性凝膠置于離心管中,在8000 r/min條件下離心30 min。離心后倒置排出水分,殘留的水分使用干燥濾紙小心去除。裝有凝膠樣品的離心管在離心前后都進(jìn)行準(zhǔn)確稱量,兩者差值作為釋放的液體重量,WHC計(jì)算如下:
式中,Wt表示樣品中的液體的總質(zhì)量;Wr表示樣品離心后去除液體后的總質(zhì)量。
每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)三次,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。所有數(shù)據(jù)采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行單因素分析,Duncan多重分析,p<0.05為差異顯著。
在還原條件下,通過(guò)SDS-PAGE研究超聲處理對(duì)WPI的TGase催化的交聯(lián)反應(yīng)的影響。由圖1泳道1~5可以看出,超聲處理對(duì)WPI的分子量分布并沒(méi)有明顯的影響;泳道6~10加入TGase后,在分子量為120 kDa處有新的條帶生成,并且WPI的主要成分 α-乳白蛋白(α-La)和 β-乳球蛋白(β-Lg)的含量較未加TGase組相比明顯減少,證明加入TGase后有新的大分子聚合物生成。同時(shí),由圖1泳道6~10可以看出,隨著超聲處理時(shí)間從0 min增加至40 min,分子量為120 k Da附近的條帶顏色逐漸加深。且在超聲30 min(條帶9)和超聲40 min(條帶10)后TGase交聯(lián)的WPI,由于聚合物相對(duì)分子量的增加,交聯(lián)后產(chǎn)物的溶解度降低,生成了少量不溶性的大分子聚合物,以至于不能很好進(jìn)入濃縮膠界面(即圖中泳道6~10頂端黑色條帶)。證明超聲處理能夠更好地促進(jìn)TGase交聯(lián),且隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng),生成的大分子聚合物的量逐漸增多。這可能是超聲的空化效應(yīng)作用于蛋白質(zhì)分子,使蛋白質(zhì)分子的粒度減小(由圖2A可以看出),能夠暴露出更多的反應(yīng)位點(diǎn),更有利于 TGase交聯(lián)反應(yīng)的進(jìn)行[17-18]。
圖1 超聲處理后的TGase交聯(lián)WPI產(chǎn)物的SDS-PAGEFig.1 SDS-PAGE of the TGase-catalyzed cross-linking of WPI products with the ultrasound pretreatment注:條帶M為Marker;泳道1~5分別是WPI超聲處理0、10、20、30、40 min;泳道6~10 分別是 WPI超聲處理0、10、20、30、40 min 后進(jìn)行 TGase 交聯(lián)。
將WPI溶液超聲處理后再進(jìn)行TGase交聯(lián),得到的樣品溶液稀釋一定的倍數(shù)后,測(cè)定其粒徑體積分布情況。由圖2(A)可以看出,超聲處理會(huì)導(dǎo)致WPI分子的粒徑減小,并且隨著超聲處理時(shí)間延長(zhǎng)至40 min,WPI的粒徑達(dá)到最小。這可能是因?yàn)?,超聲處理的空化效?yīng)產(chǎn)生的微流束作用、高剪切力、湍流和渦旋等作用,減弱了蛋白質(zhì)分子間的相互作用,從而降低了蛋白質(zhì)分子的聚集程度[19-20]。由圖2(B)可以看出,TGase交聯(lián)后WPI的粒徑均呈增大的趨勢(shì),并且超聲處理后TGase交聯(lián)的WPI的粒徑明顯高于未經(jīng)超聲處理的蛋白的粒徑。這是因?yàn)?,TGase交聯(lián)后生成了大分子聚合物,并且隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng),生成的大分子聚合物的量逐漸增多,從而證明超聲處理能夠暴露出TGase作用的反應(yīng)位點(diǎn),更有利于交聯(lián)反應(yīng)的進(jìn)行,從而生成粒徑較大的交聯(lián)產(chǎn)物。
圖2 超聲處理對(duì)TGase交聯(lián)WPI產(chǎn)物的粒徑分布的影響Fig.2 Effect of ultrasound pretreatment on partical size distribution of TGase-catalyzed WPI cross-linking product注:A是超聲處理WPI的粒徑分布圖;B是WPI超聲處理后TGase交聯(lián)的粒徑分布圖。
將WPI溶液超聲處理后再進(jìn)行TGase交聯(lián),得到的樣品溶液稀釋一定的倍數(shù)后,測(cè)定其熒光強(qiáng)度和表面疏水性的變化情況。對(duì)反應(yīng)前后的樣品進(jìn)行熒光掃描,通過(guò)疏水性氨基酸的發(fā)射峰強(qiáng)度(色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸)來(lái)判斷蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)的變化情況。由圖3可以看出,隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng)(0~40 min),TGase催化交聯(lián)的WPI和未經(jīng)TGase催化交聯(lián)的WPI的熒光強(qiáng)度均呈增加的趨勢(shì),在超聲時(shí)間為40 min時(shí)熒光強(qiáng)度達(dá)到最大。同時(shí),由圖4可以看出,隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng),未經(jīng)TGase交聯(lián)的 WPI的表面疏水性逐漸增加,超聲處理10、20 min的疏水性差異不顯著(p>0.05);加入TGase后表面疏水性顯著增加(p<0.05),并且表面疏水性隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸增大,但在超聲處理10、20和30 min時(shí)差異不顯著(p>0.05)。這可能是因?yàn)椋曁幚砟軌驈牡鞍踪|(zhì)分子內(nèi)部暴露出更多的疏水性氨基酸殘基,主要是色氨酸殘基(蛋白質(zhì)分子中發(fā)生了從酪氨酸殘基到色氨酸殘基之間的能量轉(zhuǎn)移,導(dǎo)致酪氨酸殘基的熒光猝滅和色氨酸殘基的熒光增強(qiáng)[21])。同時(shí)由于超聲處理導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子一定程度的展開,從而導(dǎo)致更多的疏水基團(tuán)和分子內(nèi)部區(qū)域暴露于極性更強(qiáng)的環(huán)境中,蛋白質(zhì)分子的表面疏水性增強(qiáng)[22]。此外,TGase催化交聯(lián)的WPI的熒光強(qiáng)度明顯高于未經(jīng)TGase催化的乳清分離蛋白,且加TGase后熒光峰發(fā)生了紅移(由338 nm移到342 nm),這可能是因?yàn)?,TGase交聯(lián)導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)的伸展,芳香族氨基酸的極性環(huán)境增大,從而導(dǎo)致更多的疏水性氨基酸的暴露和表面疏水性的增加[23]。
圖3 超聲處理對(duì)TGase交聯(lián)WPI產(chǎn)物的熒光強(qiáng)度的影響Fig.3 Effect of ultrasound pretreatment on fluorescence intensity of TGase-catalyzed WPI cross-linking product
圖4 超聲處理對(duì)TGase交聯(lián)WPI產(chǎn)物的表面疏水性的影響Fig.4 Effect of ultrasound pretreatment on surface hydrophobicity of TGase-catalyzed WPI cross-linking product
將WPI溶液超聲處理后再進(jìn)行TGase交聯(lián),得到的樣品溶液在加熱條件下形成凝膠,測(cè)定其凝膠保水性。由圖5可以看出,隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng),TGase催化交聯(lián)的WPI和未經(jīng)TGase催化交聯(lián)的WPI的凝膠保水性均呈一定程度的增加。未經(jīng)TGase催化交聯(lián)的WPI的凝膠保水性在超聲處理20、30和40 min時(shí)沒(méi)有顯著差異(p>0.05),但與超聲0 min的樣品相比,超聲處理20、30、40 min均能顯著增加蛋白的凝膠保水性(p<0.05)。加入TGase后,TGase催化交聯(lián)的WPI的凝膠保水性顯著增加(p<0.05),且超聲處理40 min后,交聯(lián)的WPI的凝膠保水性較超聲處理后未經(jīng)TGase催化交聯(lián)的WPI提高了約39.66%。超聲處理40 min后,TGase交聯(lián)產(chǎn)物凝膠保水性的增加可能是因?yàn)椋宦?lián)反應(yīng)的進(jìn)行使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)展開,暴露出了疏水性基團(tuán),且WPI經(jīng)超聲預(yù)處理后暴露出的疏水性基團(tuán)的量更多(圖4),導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子間非共價(jià)作用得到了增強(qiáng),從而形成了更為致密的凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),且形成的凝膠網(wǎng)絡(luò)具有更小的孔隙,可以集合更多的水,且能夠更緊密結(jié)合,進(jìn)而增加了凝膠的保水性[24-26]。
圖5 超聲處理對(duì)TGase交聯(lián)WPI產(chǎn)物的凝膠持水性(WHC)的影響Fig.5 Effect of ultrasound pretreatment on gel water holding capacity of TGase-catalyzed WPI cross-linking product
WPI經(jīng)超聲預(yù)處理后,隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng)(0~40 min),TGase交聯(lián)程度逐漸變大,生成的大分子聚合物逐漸增多;TGase催化交聯(lián)的WPI產(chǎn)物具有較好的凝膠保水性,并且隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),凝膠保水性逐漸提高,在超聲30、40 min時(shí),交聯(lián)產(chǎn)物的凝膠保水性最高;WPI在超聲處理后TGase酶交聯(lián)能夠使熒光強(qiáng)度增加,暴露出更多的疏水性基團(tuán),表面疏水性增大,且隨著超聲處理時(shí)間的延長(zhǎng),表面疏水性逐漸升高,在超聲時(shí)間為40 min時(shí),產(chǎn)物的表面疏水性最高,暴露出的疏水性氨基酸的量最大,更有利于形成均勻、致密的凝膠網(wǎng)絡(luò),提高WPI的凝膠保水性。