霍光明,張李陽,朱枳穆,俞麗娜
(1.南京曉莊學(xué)院食品科學(xué)學(xué)院,江蘇南京211171; 2.江蘇省高校“特殊生物質(zhì)廢棄物資源化利用”重點(diǎn)建設(shè)實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京211171)
纖維素酶在許多工業(yè)應(yīng)用過程中都起著重要作用,已被用在食品加工、紙張回收、清潔生產(chǎn)和動(dòng)物飼料添加劑等領(lǐng)域[1-2]。將木質(zhì)纖維素轉(zhuǎn)化為大宗化學(xué)品是一項(xiàng)具有挑戰(zhàn)性的中心工作[3]。因此,尋找轉(zhuǎn)化效率高、穩(wěn)定性好、適應(yīng)能力強(qiáng)且價(jià)格便宜的產(chǎn)纖維素酶菌株是研究熱點(diǎn)之一。
放線菌是一類具有降解纖維素能力的重要微生物,具有將纖維素轉(zhuǎn)化為可發(fā)酵糖的能力,可用于生產(chǎn)大宗化學(xué)品,受到研究者關(guān)注[4-5]。鏈霉菌是放線菌中數(shù)量最大、研究最多的一類菌。鏈霉菌屬中的許多種菌具有分解纖維素的能力,但一般分解纖維素能力較弱,且多為高溫放線菌;雖然有中溫放線菌對(duì)纖維素分解的報(bào)道,但大多仍屬形態(tài)學(xué)、生態(tài)學(xué)方面的觀察[1]。
本研究報(bào)道了1株來源于南京方山鞭蝎Typopeltiscrucifer腸道的鏈霉菌Streptomycessp.S10A09,具有較強(qiáng)的分解纖維素的能力,采用軟件Minitab 15中的Plackett-Burman(PB)設(shè)計(jì)法、CCD中心組合設(shè)計(jì)法和響應(yīng)面分析方法(RSM)對(duì)Streptomycessp.S10A09進(jìn)行搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化,以期為纖維素酶的生產(chǎn)提供理論基礎(chǔ)。
1.1.1 菌種來源
從Typopeltiscrucifer腸道中分離獲得的能降解纖維素的菌株Streptomycessp.S10A09,保存于中國典型培養(yǎng)物保藏中心(CCTCC),保存編號(hào)為CCTCC M 2014462。
1.1.2 培養(yǎng)基
種子液培養(yǎng)基(羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)培養(yǎng)基)(g/L):CMC-Na 10、NH4NO31.0、酵母膏1.0、MgSO4·7H2O 0.5、KH2PO41.0。
發(fā)酵產(chǎn)酶培養(yǎng)基(g/L): CMC-Na 10、(NH4)2SO44、KH2PO42、MgSO40.3、FeSO4·7H2O 0.01、NaCl 0.2、ZnSO40.002、MnCl20.002、CoCl20.002。
1.2.1 產(chǎn)纖維素酶菌株液體發(fā)酵
將初篩到的菌株活化后接種于種子培養(yǎng)基中,培養(yǎng)溫度28 ℃、搖床轉(zhuǎn)速150 r/min的條件下培養(yǎng)4 d。種子液以體積分?jǐn)?shù)10%接種量轉(zhuǎn)接于裝有100 mL產(chǎn)酶培養(yǎng)基中的體積250 mL三角瓶中,于28 ℃、150 r/min的條件下培養(yǎng)4 d。
1.2.2 粗酶液的制備
將發(fā)酵培養(yǎng)液于4 ℃、4 000 r/min離心10 min,取上清液測(cè)定酶活。
1.2.3 纖維素酶活力的測(cè)定(DNS法)
1)總酶活(濾紙酶活力(FPA))測(cè)定。參照文獻(xiàn)[7]并稍作修改。取稀釋10倍后的粗酶液0.5 mL,加入1.0 mL 0.05 mol/L的檸檬酸緩沖液(pH 4.8)和50 mg新華濾紙,以不加底物為對(duì)照,50 ℃反應(yīng)60 min,加入3 mL 3,5-二硝基水楊酸(DNS)溶液,沸水浴5 min,再將試管置于冷水浴中,待試管冷卻后,加入18 mL蒸餾水。以空白管做對(duì)照,采用分光光度計(jì)測(cè)540 nm處的OD540值。
2)纖維素內(nèi)切酶(羧甲基纖維素酶)活力測(cè)定。參照文獻(xiàn)[8]并稍作修改。取稀釋10倍后的粗酶液0.5 mL,加入1.0 mL、pH 4.8的1%CMC-Na溶液,對(duì)照管中不加底物,50 ℃反應(yīng)30 min,加入3 mL DNS溶液,沸水浴5 min,再將試管置于冷水浴中,待試管冷卻后,加入18 mL蒸餾水。以空白管做對(duì)照,采用分光光度計(jì)測(cè)540 nm處的OD540值。
3)纖維素外切酶(微晶纖維素酶)活力測(cè)定。參照文獻(xiàn)[9-11]并稍作修改。取0.5 mL稀釋3倍后的酶液,加入1.0 mL、1%的微晶纖維素溶液(pH 4.8),以不加底物為對(duì)照,50 ℃反應(yīng)60 min,加入3 mL DNS溶液,沸水浴5 min,再將試管置于冷水浴中,待試管冷卻后,加入18 mL蒸餾水。以空白管做對(duì)照,采用分光光度計(jì)測(cè)540 nm處的OD540值。
4)β-葡萄糖苷酶活力測(cè)定。參照文獻(xiàn)[12]并稍作修改。取0.5 mL稀釋3倍后的酶液,加入1.0 mL、1%的水楊苷溶液(pH 4.8),以不加底物為對(duì)照,50 ℃反應(yīng)30 min,加入3 mL DNS溶液,沸水浴5 min,再將試管置于冷水浴中,待試管冷卻后,加入18 mL蒸餾水。以空白管做對(duì)照,采用分光光度計(jì)測(cè)540 nm處的OD540值。
5)FPA酶活力計(jì)算方法。酶活力定義:在pH 4.8、50 ℃條件下,每1 mL酶液在1 min內(nèi)水解底物生成1 μg葡萄糖的酶量稱作一個(gè)酶活力單位(U)。
纖維素酶活力=1 000Gn/(0.5t)
(1)
式中:G為所測(cè)得的OD540值在葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出的還原糖質(zhì)量濃度(mg/mL),n為酶液的稀釋倍數(shù),1 000為毫克換算成微克,0.5為反應(yīng)酶液的體積(mL),t為酶和底物反應(yīng)時(shí)間(min)。
1.2.4 菌株產(chǎn)纖維素酶的發(fā)酵條件優(yōu)化
1)碳源對(duì)產(chǎn)酶的影響。在基礎(chǔ)培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,通過單因素實(shí)驗(yàn),確定產(chǎn)纖維素酶的最佳碳源。分別以CMC-Na 10 g、葡萄糖5 g、玉米漿10 g、蔗糖5 g、甘油5 g、甲殼素5 g以及黃芪藥渣粉10 g為碳源。生長好的種子液按照體積分?jǐn)?shù)10%的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基中,30 ℃、150 r/min搖床培養(yǎng)5 d。發(fā)酵液在5 500 r/min下離心10 min,上清液即為粗酶液,測(cè)定其FPA。通過FPA確定最佳碳源。
2)氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響。在確定最佳碳源的基礎(chǔ)上,用不同的氮源代替發(fā)酵基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的(NH4)2SO4,選擇的氮源有(NH4)2SO4、麩皮、蛋白胨、酵母膏和黃豆粉共5種氮源,將種子液以體積分?jǐn)?shù)10%的接種量接種到發(fā)酵培養(yǎng)基中,30 ℃、150 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)5 d。發(fā)酵液5 500 r/min離心10 min,得到的上清液即為粗酶液。通過測(cè)定FPA確定最佳氮源。
3)金屬離子對(duì)放線菌產(chǎn)酶活性的影響。在碳氮源相同的情況下,選擇7種金屬離子進(jìn)行篩選,研究對(duì)纖維素酶活力有影響的金屬離子,見表1。
4)Plackett-Burman 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和CCD中心組合設(shè)計(jì)。利用Minitab 15軟件[13],實(shí)驗(yàn)中選用N=12的 PB 設(shè)計(jì),把每個(gè)因素設(shè)計(jì)成高(+1) 和低(-1) 2 個(gè)水平。然后根據(jù)PB實(shí)驗(yàn)篩選出的對(duì)纖維素酶活具有顯著影響的因素,采用CCD中心組合設(shè)計(jì)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化,建立回歸方程并進(jìn)行響應(yīng)面分析。
表1 對(duì)纖維素酶活力影響的7種金屬離子
注:“+”表示含有該培養(yǎng)基成分;“—”表示未添加該培養(yǎng)基成分。
5)驗(yàn)證試驗(yàn)。根據(jù)PB和CCD實(shí)驗(yàn)建立的模型的最佳發(fā)酵條件進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,測(cè)定FPA作為驗(yàn)證指標(biāo)。
纖維素酶是一種誘導(dǎo)酶,因此纖維素既可以作為碳源來源,又可以作為主要誘導(dǎo)物。通過單因素實(shí)驗(yàn)篩選了7種不同的碳源進(jìn)行發(fā)酵,結(jié)果見表2。
由表2可知,CMC-Na和葡萄糖作為碳源,產(chǎn)生的總酶活(FPA)最高可達(dá)43 U/mL以上。由于CMC-Na價(jià)格低于葡萄糖,且產(chǎn)生生物量大,綜合考慮選擇CMC-Na為碳源。
表2 碳源對(duì)產(chǎn)酶的影響
在基礎(chǔ)培養(yǎng)基基礎(chǔ)上,通過單因素實(shí)驗(yàn)篩選5種類型的氮源進(jìn)行發(fā)酵,測(cè)定不同氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響,結(jié)果如表3所示。
由表3可以發(fā)現(xiàn),以(NH4)2SO4組成的無機(jī)氮源發(fā)酵后產(chǎn)生的總酶活FPA最高,明顯高于有機(jī)氮源的培養(yǎng)基。故選擇(NH4)2SO4作為氮源。
通過單因素實(shí)驗(yàn)篩選不同類型的金屬離子進(jìn)行發(fā)酵試驗(yàn),測(cè)定不同金屬離子對(duì)產(chǎn)纖維素酶活力的影響,結(jié)果見表4。
由表4可知,Zn2+和Ca2+對(duì)產(chǎn)纖維素酶有抑制作用[16],而K+和Fe3+缺少會(huì)降低酶活。
運(yùn)用PB實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的方法,快速篩選出培養(yǎng)基不同類型成分中對(duì)放線菌Streptomycessp.S10A09 產(chǎn)纖維素酶影響的顯著因素,PB實(shí)驗(yàn)結(jié)果和主效應(yīng)分析見表5和表6。
表3 氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響
表4 金屬離子對(duì)產(chǎn)酶的影響
注:+表示含有該培養(yǎng)基成分;—表示未添加該培養(yǎng)基成分。
表5 Plackett-Burman試驗(yàn)結(jié)果
注:X1~X8分別代表CMC-Na、(NH4)2SO4、KH2PO4、FeSO4、NaCl、InSO4和CaCO3的質(zhì)量濃度(g/L)。
由表5~6可知:影響Streptomycessp.S10A09產(chǎn)纖維素酶活的2個(gè)顯著因素為X1和X2(P<0.05),即CMC-Na和(NH4)2SO4質(zhì)量濃度。采用2因素3水平的CCD試驗(yàn)尋找產(chǎn)酶條件的最佳組合。R2=95.41%,R2(調(diào)整)=83.18%,說明PB實(shí)驗(yàn)擬合度較高。
2.5.1 CCD中心組合試驗(yàn)
根據(jù)PB設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)篩選出對(duì)纖維素酶活具有顯著影響的因素,采用中心組合設(shè)計(jì)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化,實(shí)驗(yàn)平行3次,結(jié)果取平均值。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和數(shù)據(jù)分析使用軟件Minitab 15.0。中心組合實(shí)驗(yàn)變量水平及結(jié)果如表7所示。
表6 Plackett-Burman試驗(yàn)因素水平及其主效應(yīng)分析
注:T為檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)量;P值為檢驗(yàn)P值,若P值小于5%,駁回歸屬假設(shè)。
表7 中心組合試驗(yàn)變量水平及結(jié)果
由表9可以看出,回歸的整體、一次項(xiàng)、二次項(xiàng)P值均小于0.05,說明都顯著有效;而交叉乘積項(xiàng)則不顯著。失擬(Lack-of-Fit)值為0.10(大于0.05),表示二次多項(xiàng)式回歸模型正確。R2=97.33%,說明二次多項(xiàng)式回歸效果非常好。
表8 濾紙酶活的估計(jì)回歸系數(shù)
表9 濾紙酶活的方差分析
圖1和2為依據(jù)回歸方程繪出的響應(yīng)面圖。響應(yīng)面代表著兩個(gè)獨(dú)立變量之間的相互作用。
由圖1和2可見:CMC-Na(X1)對(duì)濾紙酶FPA活力的影響極其顯著,表現(xiàn)為較陡的曲面;(NH4)2SO4(X2)對(duì)FPA活力影響較小,曲面較平滑。
圖1 濾紙酶響應(yīng)面圖Fig.1 Response surface figure of filter paper activity
圖2 濾紙酶響應(yīng)面圖及等高線圖Fig.2 Response surface figure and contour map of filter paper activity
2.5.2 優(yōu)化結(jié)果驗(yàn)證
根據(jù)模型預(yù)測(cè),產(chǎn)酶最優(yōu)條件為:X1=0.128 565(2.57 g/ L),X2=1.414 210(11.31 g/L),此時(shí),預(yù)測(cè)的FPA最大響應(yīng)值為126.54 U/mL。為了進(jìn)一步確證模型預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,在優(yōu)化的理論最佳條件下進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),所得FPA為125.96 U/mL,可見該模型能較好地預(yù)測(cè)實(shí)際發(fā)酵情況。且Strptomycessp.S10A09 產(chǎn)纖維素酶FPA接近優(yōu)化前的3倍,高于已報(bào)道的Streptomycesruber、Streptomycesnoboritoensis等菌產(chǎn)纖維素酶的活性[14-16]。
利用PB單因素、中心組合設(shè)計(jì)與響應(yīng)面結(jié)合的方法,借助Minitab軟件分析,對(duì)放線菌Strptomycessp.S10A09 產(chǎn)纖維素酶的發(fā)酵條件進(jìn)行研究并得到優(yōu)化結(jié)果,最終確定Strptomycessp.S10A09液體發(fā)酵產(chǎn)生纖維素酶的最優(yōu)發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L)為CMC-Na 2.57、(NH4)2SO411.31、KH2PO40.2、MgSO41、FeSO40.01。優(yōu)化后,F(xiàn)PA達(dá)到125.96 U/mL,接近優(yōu)化前的3倍。Strptomycessp.S10A09具有培養(yǎng)基簡單、可利用無機(jī)氮源以及活性較高等特點(diǎn),有利于工業(yè)化應(yīng)用。在進(jìn)一步研究中,將對(duì)其纖維素酶蛋白進(jìn)行純化,為進(jìn)一步應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。