趙家桔 高 玲 李莉萍 張如蓮 高錦合劉迪發(fā) 徐 麗 應(yīng)東山
(1 中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院熱帶作物品種資源研究所 海南???71101;2 海南省南繁生物安全與分子育種重點實驗室 海南???71101)
百香果(Passiflora edulis)有較高的市場價值,種植前景良好。目前我國熱區(qū)已將百香果種植業(yè)列為“短、平、快”的精準扶貧項目[1]。但我國百香果優(yōu)質(zhì)苗木較為缺乏,存在品種單一,產(chǎn)量低,品質(zhì)、抗病性差等問題。百香果種植中90%的種苗都是采用無性繁育方法獲得。無性繁育中的扦插繁殖種苗存在變異大、品種易退化、病害增加、產(chǎn)量降低等問題[2]。在百香果產(chǎn)業(yè)發(fā)展過程中,病毒病很大程度上制約了其發(fā)展[3]。由于頻繁的跨地區(qū)苗木銷售及引種種植,百香果病害日益加?。?]。種苗攜帶有莖基腐病菌、馬鈴薯Y病毒屬的百香果木質(zhì)化病毒、黃瓜花葉病毒等[5],豇豆蚜傳花葉病毒[6]和大戟曲葉病毒[7],影響了百香果種植業(yè)和加工業(yè)的發(fā)展,給產(chǎn)業(yè)的持續(xù)發(fā)展帶了巨大風險。針對百香果種苗帶病毒問題,組織培養(yǎng)技術(shù)已經(jīng)成為目前最有效去除病毒的方法,其效率高、周期短;同時能克服生產(chǎn)上無性繁殖率低,繁殖速度慢等缺點。許多學者對百香果的離體再生培養(yǎng)展開了研究,并取得一定成果。根據(jù)文獻報道,百香果不同器官部位,如莖節(jié)間、腋芽、葉片、子房、子葉、下胚軸、卷須、胚乳[8-11]均可作外植體材料進行快繁體系的建立;極少文獻報道利用腋芽為外植體[12-13],通過不同的外植體誘導,可得到愈傷組織或不定芽。陳發(fā)興[10]試驗比較了百香果不同部位的萌芽率,發(fā)現(xiàn)葉盤和卷須誘導不定芽比較困難,而葉柄相對容易,莖段萌芽率可達100%。楊冬業(yè)等[11]研究表明,葉片萌芽極其困難,莖段的出芽率達100%。本研究利用組織培養(yǎng)對百香果莖尖進行脫毒研究,旨在為百香果產(chǎn)業(yè)可持續(xù)健康發(fā)展提供優(yōu)質(zhì)健康種苗,進而促進百香果產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。
試驗于2018年2月至2019年2月在中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院熱帶作物品種資源研究所內(nèi)進行。材料采自中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院熱帶作物品種資源研究所新品種標準與測試中心資源圃,品種為“黃金百香果”。
MS 基本培 養(yǎng) 基:4.43 g/L MS 粉,30 g/L 蔗糖及7 g/L瓊脂,pH 5.8,經(jīng)121℃,0.1 MPa、30 min高溫高壓滅菌后備用。
初代(誘導培養(yǎng)基)培養(yǎng)基:4.43 g/L MS 粉,30 g/L 蔗糖,7 g/L 瓊脂,6-BA 2.0 mg/L,GA30.5 mg/L,NAA 0.1 mg/L,pH 5.8,經(jīng)121℃,0.1 MPa、30 min高溫高壓滅菌后備用。
繼代增殖培養(yǎng)基:4.43 g/L MS 粉,30 g/L 蔗糖及7 g/L 瓊脂,6-BA 1.5 mg/L,NAA 0.1 mg/L,pH 5.8,經(jīng)121℃,0.1 MPa、30 min 高溫高壓滅菌后備用。
生根培養(yǎng)基:2.17 g/L 1/2 MS 粉,30 g/L 蔗糖及7 g/L 瓊脂,NAA 0.1 mg/L,IBA 0.1 mg/L,pH 5.8,經(jīng)121℃,0.1 MPa、30 min 高溫高壓滅菌后備用
在黃金百香果生長旺盛時,以其頂芽或帶腋芽莖段為外植體材料,剪取50 cm 左右的百香果嫩梢,留腋芽及頂芽,截成2~3 cm 的莖段。莖段先用自來水沖洗2~3 次,再用蒸餾水沖洗1 次,在無菌環(huán)境中用無菌水沖洗兩遍,用75%酒精消毒30 s,無菌水洗滌一次,隨后按照表1 中處理組A1~A4 進行消毒處理,處理時在消毒劑中滴加2~3滴吐溫,消毒期間不斷地晃動三角瓶,使消毒劑充分與材料接觸,消毒劑處理后用無菌水沖洗5~6 次,每次沖洗3 min,用濾紙吸干莖段表面的水分。于解剖鏡下剝?nèi)∏o尖(0.5~1.0 mm)作為外植體,接種于初代培養(yǎng)基中。
表1 不同消毒時間的處理
1.2.1 培養(yǎng)條件
培養(yǎng)溫度(25±1)℃,光照強度2000 lx 左右,光照時長12 h/d。
1.2.2 初代培養(yǎng)
按照第一步篩選的消毒時間剝?nèi)∏o尖接種于不同濃度的GA3,NAA和6-BA 1.0~2.0 mg/L 處理的培養(yǎng)基上,每個處理接種20 個大小較為一致的莖尖。在初代培養(yǎng)基上培養(yǎng)35 d 后,轉(zhuǎn)接到繼代增殖培養(yǎng)基中,每瓶接種2 個芽尖,每處理接種60個芽尖,培養(yǎng)30 d,觀察芽增殖情況,以選取最佳濃度激素組合。
1.2.3 繼代增殖培養(yǎng)
待初代培養(yǎng)后得到的無菌外植體莖尖長至5~7 cm時,切段繼代培養(yǎng),每段0.5 cm左右,帶一個節(jié)間,接種到激素組合為6-BA+NAA 的MS 培養(yǎng)基(每升培養(yǎng)基附加30 g蔗糖,7 g瓊脂)中進行繼代培養(yǎng),每兩個月繼代一次,反復(fù)繼代4~5次之后,統(tǒng)計其增殖系數(shù)和玻璃化程度,重復(fù)3次。
1.2.4 生根培養(yǎng)
挑選健康、長勢好且均勻的組培苗進行生根誘導,長度2~3 cm 的增殖芽,將嫩芽從基部切下,接 入0.05、0.1、0.15、0.2 mg/L NAA 配 合0.1 mg/L IBA 的1/2 MS 的培養(yǎng)基中進行壯苗生根,培養(yǎng)25 d進行結(jié)果統(tǒng)計分析。
1.2.5 練苗移栽
待組培苗根長到2~3 cm 時,進行練苗5~7 d左右。移栽到育苗缽內(nèi),以透氣性、保水性較好的腐殖土為基質(zhì),苗不僅生長旺盛,移栽成活率也高。
1.2.6 計算方法及數(shù)據(jù)處理
接種后7~15 d分別統(tǒng)計污染率、褐化率、存活率,相關(guān)計算公式如下:
污染率=污染外植體數(shù)/接種外植體總數(shù)×100%
褐化率=外植體褐化數(shù)/接種外植體總數(shù)×100%
存活率=(外植體接種總數(shù)-外植體污染數(shù)-褐化及被殺死的外植體數(shù))/外植體接種總數(shù)×100%
采用SPSS 22.0對數(shù)據(jù)進行處理分析。
對黃金百香果外植體的消毒時間設(shè)置不同組合,統(tǒng)計結(jié)果發(fā)現(xiàn),在0.1%HgCl2作消毒劑的處理組,污染率隨著消毒時間的延長而降低,并且呈現(xiàn)顯著差異,褐化率則隨著消毒時間的延長而升高,但是3個試驗組的結(jié)果無顯著差異。處理組A3的存活率較高,但是隨著消毒時間的增長,10和12 min的試驗組無顯著差異。
根據(jù)各處理組污染率、褐化率和存活率的分析,處理組A3 為黃金百香果外植體的最佳消毒方式,具體操作為75%乙醇消毒30 s,0.1 HgCL2消毒10 min,可以獲得較低的污染率、褐化率以及較高的存活率(表2)。
表2 不同消毒時間對百香果莖尖的影響 單位:%
在培養(yǎng)基中添加GA3莖尖萌動早,長勢較快,不易分化成從生芽;不同6-BA 濃度處理的莖尖萌發(fā)慢,且不同6-BA 濃度對外植體生長和分化有明顯影響。6-BA 濃度很小時,愈傷組織不易分化成從生芽。隨著6-BA 濃度的增加,愈傷化越早,越容易形成愈傷組織;分化類型隨著6-BA 濃度的增加,叢生芽越多。當6-BA 濃度為2 mg/L 時,外植體芽易形成愈傷組織,且愈傷組織大量生長,易分化成為叢生芽且較健壯(表3)。由此認為,培養(yǎng)基MS+6-BA 2.0 mg/L+GA30.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L是最適初代培養(yǎng)基。
表3 不同培養(yǎng)基對百香果莖尖叢生芽誘導情況
觀察NAA 濃度為0.1 mg/L,6-BA 濃度分別為0.5、1.0、1.5和2.0 mg/L 繼代 培養(yǎng) 上培 養(yǎng)4 周后的增殖生長狀況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),在6-BA 濃度為1.5 mg/L 的增殖培養(yǎng)基中的莖尖長勢快,葉片粗壯,顏色濃綠(圖1-A);而6-BA 濃度為1.0 mg/L的增殖培養(yǎng)基中莖尖苗長勢緩慢,葉片細,植株矮?。▓D1-B)。
誘導組培苗生根的重要條件是生根培養(yǎng)基,植物調(diào)節(jié)劑是提高百香果組培苗不定根的關(guān)鍵因素。把叢生芽(圖2)切割成單株小苗,接入不同生根培養(yǎng)基,25 d 后觀察。由表4 可知,生根培養(yǎng)基以1/2 MS 附加0.1 mg/L NAA和IBA 為最好,在此培養(yǎng)基上誘導的根粗壯,數(shù)目多,生長良好(圖3)。
煉苗(圖4)是組培苗生根不可缺少的環(huán)節(jié)。將經(jīng)生根壯苗培養(yǎng)獲得根長為2~3 cm 的苗,移入室外遮陰棚煉苗5~7 d,然后將培養(yǎng)瓶瓶蓋打開,在自然光下鍛練2~3 d。經(jīng)過鍛煉的幼苗用攝子輕輕地取出,放入濃度為0.1%多菌靈溶液中浸泡5 min,再用清水沖洗2~3次,把根部的培養(yǎng)基沖洗干凈,栽入體積比椰糠∶表土∶蛭石=2∶1∶1 的混合基質(zhì)中,澆足定根水,放置于遮陽棚內(nèi),保持濕潤,移栽后待10~15 d 新根與新葉長出,移栽成活率可達95%以上。
以百香果莖尖為材料,在解剖鏡下剝?nèi)∏o尖,莖尖需要在短時間內(nèi)誘導出大量的叢生芽,以芽生芽的方式建立再生體系是最快捷的途徑,再進行生根誘導,以便短時間內(nèi)可以得到大量的植株[11,14],從而加快百香果繁殖速度,有利于脫毒苗及優(yōu)良種源的繁殖與保存。本試驗結(jié)果表明,最佳的消毒方式為75%的酒精溶液消毒30 s后再用0.1%HgCl2消毒10 min,這與焦楠[13]的最佳消毒方式類似,具體操作為75%乙醇消毒30 s,0.1%氯化汞消毒12 min,可以獲得較低的污染率、褐化率以及較高的存活率。最適初代培養(yǎng)基為MS+6-BA 2.0 mg/L+GA30.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L,有利于叢生芽的誘導。本研究通過添加不同濃度的6-BA和NAA,對百香果莖尖初代培養(yǎng)基進行了篩選,發(fā)現(xiàn)2.0 mg/L 6-BA 可使百香果莖尖誘導出大量愈傷組織;在培養(yǎng)基中添加GA3,莖尖萌動早,長勢較快;最適繼代培養(yǎng)基為MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L,適宜芽的增殖且利于壯苗;最適生根培養(yǎng)基為1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+IBA 0.1 mg/L,形成的苗健壯,生根率高達95%。本試驗采用1/2 MS 作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基效果較好,這與前人研究一致[11,13,15]。史沉魚等「14]在誘導百香果生根時發(fā)現(xiàn),活性炭的加入可促進二級根的生成。
表4 不同培養(yǎng)基對百香果生根誘導的影響
莖尖培養(yǎng)的成功率主要取決于莖尖的大小,莖尖過大,脫毒不徹底;莖尖過小,則容易引起褐化。本文認為切取莖尖控制在0.5~1.0 mm 有利于其成活。繼代次數(shù)不能超過5次,長期繼代的試管苗有可能再感染病毒,還會引起芽變的可能。因此,脫毒試管苗組織快繁,需二年更換一次基礎(chǔ)苗,以提高試管苗的質(zhì)量。試管苗要及時進行繼代培養(yǎng),因為長時間培養(yǎng),不能及時轉(zhuǎn)移,容易出現(xiàn)“玻璃化”苗。