劉三立,蔡未,劉子泉,侯世科,樊毫軍,丁輝
1中國人民武裝警察部隊后勤學院,天津300162;2中國人民解放軍98985部隊衛(wèi)生連;3天津大學災(zāi)難醫(yī)學研究院
高原肺水腫是發(fā)生在健康人群快速進入海拔2 500 m以上高度時常出現(xiàn)的威脅生命的急性并發(fā)癥[1, 2]。高原肺水腫起病急,進展快,如救治不及時,可在較短時間內(nèi)發(fā)展至呼吸衰竭甚至死亡,病死率36.36%~90%[3],是嚴重威脅高原人群健康和生命的急性重癥高原病。個體所處的海拔高度、上升速率、預(yù)適應(yīng)能力及其易感性是導致高原肺水腫發(fā)生的主要因素[4]。張西南等[5]發(fā)現(xiàn),385例急性高原病患者中重型高原病175例,死亡5例,病死率1.3%。我國高原面積大,常駐人口多,如何預(yù)防高原肺水腫的發(fā)生及減輕其嚴重程度是高原醫(yī)學領(lǐng)域亟待解決的重大課題。
microRNA(miRNA)是一組21~25 nt長的非編碼蛋白質(zhì)的短序列RNA,能通過堿基配對與mRNA分子的3′UTR相結(jié)合,降解mRNA或抑制靶基因的翻譯,從而對基因進行轉(zhuǎn)錄后表達的調(diào)控。2007年,Kulshreshtha 等[6]首次報道了缺氧與miRNA的關(guān)系,采用基因芯片技術(shù)篩選出了27個缺氧相關(guān)miRNA。Alam 等[7]首次研究了miRNA在高原肺水腫病理生理方面發(fā)揮的重要作用。大量缺氧介導的差異表達miRNA參與了與高原肺水腫發(fā)病機制密切相關(guān)的諸如離子通道、肺動脈高壓、血管功能和應(yīng)激反應(yīng)等的調(diào)控過程,表明高原肺水腫受miRNA遺傳調(diào)控作用的影響。2018年12月~2019年6月,本研究在低氧暴露不同時間條件下,建立穩(wěn)定大鼠高原肺水腫模型,運用基因芯片技術(shù)篩選出差異表達高原肺水腫大鼠與健康大鼠肺組織差異表達miRNA,并進行靶基因預(yù)測及miRNA對靶基因的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)分析和生物學信息分析,揭示這些差異表達miRNA與高原肺水腫的內(nèi)在聯(lián)系,為探索高原肺水腫發(fā)病機制提供一種新的思路。
1.1 動物、試劑、儀器 SPF級成年雄性SD大鼠24只(購自軍事醫(yī)學科學院動物中心),體質(zhì)量180~200 g;芯片類型:miRNA 4.0 Rat(美國Affymetrix公司):GeneChip WT Terminal Labeling and Controls Kit、Ambion WT Expression Kit、GeneChip Hybridization, Wash, and Stain Kit;芯片設(shè)備、軟件(美國Affymetrix公司):基因芯片洗脫工作站GeneChip Fluidics Station 450、基因芯片雜交爐GeneChip Hybridization Oven 645、基因芯片掃描儀GeneChip Scanner 3000 7G、GeneChip GCOS軟件Affymetrix GeneChip Operating Software;TRIzol RNA提取試劑(美國invitrogen公司),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(日本TaKaRa公司),SYBR Green預(yù)混液(日本TaKaRa公司),IL-6、TNF-α、IL-10 ELISA檢測試劑盒(武漢華美生物工程有限公司),BCA總蛋白試劑盒(北京索萊寶公司),熒光定量PCR儀(美國Bio-RAD公司),超微量紫外分光光度計(德國implen公司),DMI3000B生物倒置顯微鏡(德國Leica公司)。
1.2 高原肺水腫大鼠模型建立及鑒定 將大鼠隨機分為4組:對照組和低氧24、48、72 h組,每組6只。低氧組使用數(shù)字化動物實驗艙(武警后勤學院)模擬6 000 m低壓低氧環(huán)境,運行時間依據(jù)每次造模時間設(shè)置,設(shè)置艙內(nèi)溫度為(10±2)℃,濕度保持在(60±10)%,艙內(nèi)汞壓 54.5 kPa,氧濃度 9.76%,氧分壓9.9 kPa,泵切換時間720 min,高度上升/下降速率為10 m/s,啟動制冷開啟模式。對照組在SPF環(huán)境下飼養(yǎng)72 h。造模完成后,各組大鼠腹腔注射2%戊巴比妥(2 mL/0.1 kg)麻醉,取仰臥位固定。經(jīng)會陰上方腹部正中做縱行切口,充分暴露腹腔后,腹主動脈抽取2 mL動脈血。采集的血樣本4 ℃、3 000 r/min、離心后取血清保存于-80 ℃冰箱,采用ELISA法檢測IL-6、TNF-α、IL-10。打開胸腔結(jié)扎右主支氣管,氣管插管通過左主支氣管向左肺緩緩注入生理鹽水4 mL,緩慢回抽生理鹽水再重新注入,重復(fù)沖洗2~3次,將收集到的肺泡灌洗液(BALF)800 g,4 ℃離心10 min,保留上清液,采用ELISA法檢測IL-6、TNF-α、IL-10。分離右肺,右上葉用于測量肺組織含水量,右中葉用4%多聚甲醛固定用于肺組織HE染色,右下葉-80 ℃低溫冰箱中保存,進行后續(xù)miRNA芯片分析。低氧24、48、72 h組及對照組血清IL-6水平分別為(68.20±9.66)、(99.83±13.10)、(88.39±14.71)、(37.03±14.22)pg/μL;TNF-α水平分別為(218.19±25.76)、(311.08±34.91)、(281.68±32.92)、(173.95±24.04)pg/μL;IL-10水平分別為(39.34±4.51)、(54.05±7.57)、(64.70±8.22)、(23.98±5.91)pg/μL。低氧24、48、72 h組及對照組BALF中IL-6水平分別為(105.25±9.38)、(145.39±17.25)、(129.83±14.16)、(79.86±15.29)pg/μL;TNF-α水平分別為(303.94±27.79)、(370.14±34.00)、(365.74±19.58)、(260.61±29.92)pg/μL;IL-10水平分別為(53.88±5.40)、(66.47±6.48)、(79.21±9.82)、(38.37±5.34)pg/μL。低氧24、48、72 h組及對照組總蛋白量分別為(0.36±0.10)、(0.39±0.13)、(0.38±0.03)、(0.20±0.05)mg/μL。低氧24、48、72 h組及對照組肺含水量分別為0.79±0.01、0.80±0.02、0.80±0.01、0.78±0.02。與對照組相比,低氧24、48、72 h組血清和BALF中IL-6、IL-10、TNF-α水平升高,BALF中總蛋白含量增多(P均<0.01)。與對照組相比,低氧48、72 h組肺組織含水量增加(P均<0.05)。病理染色結(jié)果示,各低氧組表現(xiàn)出明顯的肺泡及間質(zhì)水腫、肺泡間隔增厚伴紅細胞浸潤、炎性滲出。以上結(jié)果提示高原肺水腫模型成功建立。
1.3 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA篩選、靶基因預(yù)測及其相互作用分析 利用miRNA 4.0-Rat芯片(美國Affymetrix公司)對肺組織miRNA進行篩選。取1 μg 肺組織總RNA進行樣本RNA質(zhì)量檢測??俁NA加尾后,加入FlashTag Biotin HSR Ligation Mix(美國Affymetrix公司)至已加尾混合液中按照廠家說明進行生物素標記和純化,用GeneChip Hybridization Oven 645(美國Affymetrix公司)與Affymetrix miRNA 4.0 microarray(美國Affymetrix公司)雜交,用GeneChip Fluidics Station 450(美國Affymetrix公司)進行芯片洗脫,然后用GeneChip Scanner 3000 7G(美國Affymetrix公司)掃描芯片。原始數(shù)據(jù)由GeneChip GCOS(美國Affymetrix公司)分析處理,差異表達miRNA比較,P<0.05, FC>2.0被認為是差異基因。采用miRanda和TargetScan 兩個數(shù)據(jù)庫對得到的差異miRNA進行靶基因預(yù)測,最后對兩種預(yù)測的結(jié)果取交集以增加結(jié)果的可靠性。
1.4 大鼠肺組織差異表達miRNA基因本體功能(GO)及信號通路分析 將以上得到的差異表達miRNA靶基因基于 GO數(shù)據(jù)庫進行基因功能注釋,KEGG數(shù)據(jù)庫進行信號通路注釋,顯著性篩選的標準,P<0.05。
1.5 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA檢測 在連續(xù)上調(diào)和下調(diào)的差異表達miRNA中選擇相對表達強度上調(diào)較為明顯和相對表達強度下調(diào)較明顯者進行qPCR。使用TRIzol試劑提取樣本組織總RNA。RNA在260 nm處通過吸光度定量。使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。qPCR儀進行實時PCR反應(yīng)。采用U6作為內(nèi)參,以2-ΔΔCt表示目的基因表達水平。
2.1 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA 以FC>2.0為準,篩選出的差異表達miRNA有14種,其中上調(diào)的有5種,分別為rno-miR-324-5p、rno-miR-6215、rno-miR-3473、rno-miR-344g、rno-miR-541-5p;下調(diào)的有9種,分別為rno-miR-3544、rno-miR-322-3p、rno-miR-203a-3p、rno-miR-342-5p、rno-miR-3556b、rno-miR-532-5p、rno-miR-101a-5p、rno-miR-361-3p、rno-miR-187-3p。在這些差異表達miRNA中,隨著時間推移,表達量持續(xù)上調(diào)和下調(diào)的miRNA有5種。其中上調(diào)的有2種,分別為rno-miR-344g和rno-miR-541-5p,四組之間rno-miR-541-5p比較,低氧72 h組<低氧24 h組、低氧48 h組、對照組(P均<0.05),而低氧48 h、低氧24 h組與對照組之間比較,P均>0.05;四組之間rno-miR-344g比較,P>0.05。下調(diào)的有3種,分別為rno-miR-3556b、rno-miR-101a-5p、rno-miR-361-3p,四組rno-miR-3556b比較:低氧48、72 h組<對照組(P均<0.05);四組rno-miR-101a-5p、rno-miR-361-3p比較:低氧48、72 h組<低氧24 h組、對照組(P均<0.05)。
2.2 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA靶基因預(yù)測結(jié)果及其對靶基因的調(diào)控網(wǎng)絡(luò) 低氧組與常氧組差異表達miRNA靶基因在miRanda和TargetScan數(shù)據(jù)庫中的交集較多。差異miRNA調(diào)控的靶基因很多,如:rno-miR-344g(76個)、rno-miR-541-5p(111個)、rno-miR-3556b(5個)、rno-miR-361-3p(198個)、rno-miR-101a-5p(48個)、rno-miR-187-3p(19個)、rno-miR-203a-3p(113個)、rno-miR-322-3p(36個)、rno-miR-324-5p(77個)、rno-miR-342-5p(32個)、rno-miR-3473(50個)、rno-miR-3544(39個)、rno-miR-532-5p(58個)、rno-miR-6215(15個)。同時,這些miRNA之間存在多個相互關(guān)聯(lián)的靶基因。其中,rno-miR-203a-3p與rno-miR-541-5p的交互靶基因有1個(Nrp1),與rno-miR-324-5p的交互靶基因有1個(Med22),與rno-miR-322-3p的交互靶基因有1個(Plekhh2),與rno-miR-3544的交互靶基因有1個(Parg);rno-miR-101a-5p與rno-miR-541-5p的交互靶基因有1個(Rora),與rno-miR-361-3p的交互靶基因有2個(Ldoc1l、Pnoc),與rno-miR-187-3p的交互靶基因有1個(Naa38);rno-miR-541-5p與rno-miR-361-3p的交互靶基因有1個(Dcx),與rno-miR-342-5p的交互靶基因有2個(Lrch1、Slc1a2),與rno-miR-532-5p的交互靶基因有1個(C1orf21);rno-miR-361-3p與rno-miR-324-5p的交互靶基因有2個(Scn2b、Lama4),與rno-miR-322-3p的交互靶基因有2個(Otud3、Zc3h13),與rno-miR-3544的交互靶基因有2個(Tle3、Ube2d4),與rno-miR-3473的交互靶基因有1個(Zbtb24),與rno-miR-344g的交互靶基因有1個(Sbno1); rno-miR-324-5p與miR-3473的交互靶基因有1個(Hoxb3);rno-miR-3473與rno-miR-532-5p的交互靶基因有1個(Znf652);rno-miR-532-5p與rno-miR-344g的交互靶基因有1個(Bsnd);rno-miR-344g與rno-miR-6215的交互靶基因有1個(Pmfbp1)。
2.3 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA的基因本體功能及信號通路 高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA參與的生物學過程有66種,主要涉及核酸的調(diào)控如RNA聚合酶Ⅱ啟動子轉(zhuǎn)錄的負調(diào)控(GO:0000122)、RNA聚合酶Ⅱ啟動子轉(zhuǎn)錄的調(diào)控(GO:0006357)等,蛋白泛素化如蛋白K63有關(guān)泛素化(GO:0070534)、蛋白K6有關(guān)泛素化(GO:0070534)等,信號通路如Wnt信號通路(GO:0016055)、胞內(nèi)受體信號通路(GO:0030522)等,血管生理如血管發(fā)育(GO:0001568)、血管新生(GO:0001525)等以及生物進程如大腦發(fā)育(GO:0007420)、神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育(GO:0007399)等。在細胞的組成成分層面有28種,主要涉及細胞內(nèi)組成如核漿(GO:0005654)、胞質(zhì)(GO:0005829)等,細胞器如蛋白復(fù)合體(GO:0043234)、多核糖體(GO:0005844)等,細胞膜如基膜(GO:0005605)、膜組成部分(GO:0005887),細胞功能如神經(jīng)元投射(GO:0043005)、細胞黏附連接(GO:0005913)等。在基因分子功能層面有30種,主要涉及與生物分子有關(guān)的結(jié)合如蛋白結(jié)合(GO:0019901)、轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合(GO:0033613)等,生物分子的活性如泛素蛋白轉(zhuǎn)移活性(GO:0004842)、氯離子通道活性(GO:0005254),分子功能(GO:0003674)等。差異表達miRNA涉及的信號通路有11種,主要有PI3K-Akt信號通路(pathway ID:rno04151)、癌癥通路(pathway ID:rno05200)、細胞外基質(zhì)受體相互作用通路(pathway ID:rno04512)、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)蛋白加工通路(pathway ID:rno04141)、泛素介導的蛋白水解作用通路(pathway ID:rno04120)等。
2.4 四組關(guān)鍵差異miRNA 比較 在5種連續(xù)上調(diào)和下調(diào)的高原肺水腫大鼠肺組織差異表達miRNA中選擇相對表達強度上調(diào)較為明顯的rno-miR-541-5p,和相對表達強度下調(diào)較為明顯的rno-miR-101a-5p進行熒光定量qPCR驗證。低氧72 h組、低氧48 h組、低氧24 h組、對照組rno-miR-541-5p分別為1.72±0.18、1.43±0.36、1.46±0.14、1,rno-miR-101a-5p分別為0.64±0.23、0.46±0.25、0.91±0.23、1。與對照組相比,rno-miR-541-5p在低氧暴露各組相對表達量顯著升高(P均<0.05);與對照組相比,rno-miR-101a-5p在低氧暴露組相對表達量下降,其中低氧48 h組差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),低氧24 h組與低氧48 h組比較,P<0.05。與miRNA芯片結(jié)論一致。
當個體在適應(yīng)高原環(huán)境的過程中,機體的基因表達會發(fā)生一系列變化,以平衡缺氧引起的應(yīng)激,其調(diào)控元件如miRNA參與了高原肺水腫的發(fā)展過程。文獻報道了多種miRNA參與調(diào)控了急性肺損傷的發(fā)生,并可能成為分子治療的潛在靶標。Zhang等[8]研究發(fā)現(xiàn),通過藥物靶向miR-381介導的NLRP3的表達,能夠減輕LPS誘導的急性肺損傷。Zhou等[9]研究發(fā)現(xiàn),miR-126-3p的過表達能夠抑制炎癥蛋白HMGB1和血管通透性因子VEGF-A,增加緊密連接蛋白的表達。Zhang等[10]證實了miR-96和miR-330均可通過與AQP5的3′-非翻譯區(qū)(UTR)結(jié)合來調(diào)節(jié)AQP5的表達,從而減輕LPS誘導的急性肺水腫。有研究[11, 12]發(fā)現(xiàn),miR-144和miR-155被認為是兩種相互拮抗的miRNA,miR-144可減弱肺血管中ROCK1/MLC通路的激活,起到抗炎作用,而在miR-155基因敲除的小鼠中,Ang-2- Tie-2-MLC信號通路活性降低,炎癥相關(guān)蛋白被下調(diào),表明miR-155對LPS誘導的急性肺損傷具有促進作用。相關(guān)研究表明,miR-16、miR-20b,miR-22、miR-206和miR-17/92在低氧暴露中表達下調(diào),抑制離子通道并增加肺動脈壓,從而導致血管功能障礙和細胞完整性喪失。而miR-23b,miR-26a和miR-155抑制TGF信號傳導并導致肺動脈壓升高,miR-210能夠抑制線粒體功能,這些生理功能與高原肺水腫密切相關(guān),表明高原肺水腫是一種器官特異性(肺)和環(huán)境應(yīng)激誘導的疾病[7]。
本研究在建立低氧暴露24、48、72 h模型的基礎(chǔ)上,運用基因芯片技術(shù),以FC>2.0為標準,選取了14種差異表達miRNA,其中上調(diào)的有5種,下調(diào)的有9種。miRNA對基因的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)發(fā)現(xiàn),上述miRNA存在多種交互基因如Scn2b、Lama4、Hoxb3、Zc3h13等,預(yù)測它們可能共同參與調(diào)控了高原肺水腫的發(fā)生發(fā)展,其具體機制有待進一步研究。進一步篩選分析發(fā)現(xiàn),與對照組相比,在低氧24、48、72 h組表達量連續(xù)上調(diào)或下調(diào)的miRNA有5種,其中上調(diào)的miRNA有rno-miR-344g和rno-miR-541-5p,下調(diào)的miRNA有rno-miR-3556b、rno-miR-101a-5p、rno-miR-361-3p。說明上述5種miRNA在低氧暴露的同時,隨著低氧時間的延長,相對表達呈現(xiàn)出明顯的時間相關(guān)性,其在低氧中的上調(diào)或下調(diào)影響著特定靶基因表達的增加或降低,可能發(fā)揮著諸如改變細胞整合和屏障功能、血管滲透性等高原肺水腫的病理生理因素等[7]。有文獻報道m(xù)iR-541-5p與肺纖維化的發(fā)生有關(guān),其通過在蛋白翻譯水平上調(diào)節(jié)PDE1A的表達而成為肺成纖維細胞的關(guān)鍵因子,同時,我們通過基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)分析發(fā)現(xiàn)RORα是rno-miR-101a-5p參與血管新生的靶基因之一,這兩種在本研究中上調(diào)和下調(diào)較為明顯的miRNA 是否也通過特定機制發(fā)揮對高原肺水腫的調(diào)控作用,有待進一步研究[13~15]。
低氧是引起高原肺水腫的重要因素,高原引發(fā)肺水腫的發(fā)生機制主要有:①低氧引起肺動脈強烈收縮、肺血管損傷、通透性增加導致液體滲入肺泡增多,肺水腫形成;②低氧誘導免疫因子和炎癥因子增多,促進肺動脈血管通透性增加;③低氧抑制Na+-K+-ATP酶活性,引起肺泡上皮細胞鈉離子和水等清除障礙,導致肺組織水潴留[16, 17]。有文獻報道,在人肺微血管內(nèi)皮細胞中,通過激活PI3K/Akt信號通路可以改善內(nèi)皮細胞屏障功能障礙。鄧旺等[18, 19]研究發(fā)現(xiàn),激活PI3K /Akt 信號通路能上調(diào)ENaC的表達,清除急性肺損傷時肺內(nèi)多余的水腫液,從而減輕肺組織損傷,表明PI3K/Akt信號通路在調(diào)節(jié)肺水腫方面發(fā)揮著重要作用。Villar等[20]在大鼠COPD模型中發(fā)現(xiàn)抑制Wnt信號通路可減輕肺組織損傷,改善肺功能并重新建立肺泡上皮細胞表面標志物的表達,說明Wnt信號通路影響著肺泡-毛細血管屏障的通透性。在本研究中,我們通過信號通路的顯著性分析發(fā)現(xiàn)miRNA對Wnt、PI3K/Akt信號通路也具有相關(guān)調(diào)控作用,說明篩選出的相關(guān)miRNA可能通過調(diào)控特定信號通路對高原肺水腫的產(chǎn)生起到正性或負性調(diào)節(jié)作用。此外,通過對14種miRNA的靶基因進行關(guān)于細胞組分、分子功能、生物過程的富集分析,我們發(fā)現(xiàn)miR-101a-5p、miR-203a-3p、rno-miR-361-3p、rno-miR-541-5p、rno-miR-324-5p、rno-miR-344g、rno-miR-532-5p、rno-miR-3473等具有調(diào)控血管新生的功能,而血管新生可以誘導肺毛細血管通透性的增加導致肺水腫的發(fā)生[21, 22]。結(jié)合本研究對miRNA的生物信息學分析,我們推斷高原低氧下差異表達的miRNA參與了對高原肺水腫的調(diào)控過程。
綜上所述,在高原肺水腫大鼠肺組織中差異表達miRNA有14種,其中持續(xù)上調(diào)的有rno-miR-344g、rno-miR-541-5p,下調(diào)的有rno-miR-3556b、rno-miR-101a-5p、rno-miR-361-3p。這些miRNA之間存在許多交互靶基因,并與其靶基因形成復(fù)雜的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。主要參與核酸的調(diào)控等生物學過程,影響細胞內(nèi)組成如核漿、胞質(zhì)等,涉及生物分子有關(guān)的結(jié)合,相關(guān)的信號通路主要有PI3K-Akt信號通路等。高原肺水腫大鼠肺組織中差異表達miRNA及其靶基因參與了諸如血管新生、血管發(fā)育、細胞黏附連接、轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合、PI3K-Akt信號通路等與高原肺水腫形成機制緊密相關(guān)的細胞分子生物學過程,表明這些差異表達miRNA可能參與調(diào)控了高原肺水腫發(fā)生的可能機制,這為進一步探索高原肺水腫發(fā)病機制及其預(yù)防治療提供了新思路。