王立烽 韋冬冬 朱賢 李學(xué)彪 宋江偉 孔敏堅 董愛強
主動脈弓手術(shù)死亡率及術(shù)后神經(jīng)并發(fā)癥發(fā)生率高,尤其是主動脈瘤破裂及急性主動脈夾層等急診手術(shù),術(shù)中需要施行低溫停循環(huán)操作,期間全身臟器處于缺血、缺氧狀態(tài),整個過程對機體造成炎癥反應(yīng)損傷、缺血、缺氧損傷、低溫損傷、缺血再灌注損傷等[1]。在損傷病理、生理過程及保護機制研究中常需要一種穩(wěn)定的動物模型,就大鼠體外循環(huán)及深低溫停循環(huán)模型而言,插管方式、停跳方式、體外循環(huán)流量、升降溫方式、預(yù)充量等各有不同[2-4]。體外循環(huán)管道預(yù)充量直接影響術(shù)中血液稀釋程度,血液稀釋程度與微循環(huán)灌注、凝血功能、術(shù)中輸血、術(shù)后急性腎損傷發(fā)生率相關(guān)[5]。降低管道預(yù)充量,提高術(shù)中紅細胞壓積(Hct)也是心臟外科體外循環(huán)團隊所不懈追求的。本研究建立閉式少預(yù)充量大鼠深低溫停循環(huán)模型,為研究停循環(huán)臟器損害及保護提供可靠模型基礎(chǔ)。
1.1 器材及試劑 器材:手術(shù)器械、鼠板、體外循環(huán)臺、閉式體外循環(huán)管道系統(tǒng)[含變溫器]均購自西安西京醫(yī)療用品有限公司;小動物膜肺購自東莞科威醫(yī)療器械公司;自制儲血室(圖 1)、滾壓泵(LongerPump)、水箱、多導(dǎo)電生理監(jiān)測儀(PowerLab)、麻醉機、小動物呼吸機均購自上海奧爾科特生物科技公司。試劑:戊巴比妥鈉(5g)購自中國醫(yī)藥集團上海化學(xué)試劑公司;肝素(12 500U/支)購自常州千紅生化制藥公司;萬汶(500ml)購自北京費森尤斯卡比醫(yī)藥公司;七氟烷(120ml)購自上海恒瑞醫(yī)藥有限公司;5%碳酸氫鈉(NaHCO3)(250ml)購自江蘇正大天晴藥業(yè)公司。
1.2 實驗動物 12周齡SPF級SD雄性大鼠20只,體重(412.8±20.8)g,均購自上海斯萊克實驗動物有限公司,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(滬)2017-0005。
1.3 實驗步驟
1.3.1 實驗動物分組 將20只大鼠按隨機數(shù)字表法分成A、B、C、D 4組,每組5只。A組:體外循環(huán)降溫至24℃后復(fù)溫;B組:降溫至24℃后靜脈放血至心臟停跳,30min后復(fù)溫復(fù)跳;C組:降溫至18℃后放血停跳,30min后復(fù)溫復(fù)跳;D組降溫至18℃后停跳,1h后復(fù)溫復(fù)跳。
1.3.2 手術(shù)及穿刺 實驗大鼠腹腔注射2%戊巴比妥鈉1.5ml,充分麻醉后行氣管插管,并接空氣呼吸機按5ml/min潮氣量60次/min維持(由于實驗大鼠體重相近,麻醉劑量及呼吸機參數(shù)不按體重作調(diào)整)。分別在大鼠左腹股溝及股部、尾部、右頸部消毒備皮,在大鼠左耳后頸部剪開一小口,鈍性分離皮下得一腔道,用于置入溫度傳感器監(jiān)測溫度。輕柔地分離出左股淺動脈、尾動脈、右頸外靜脈,血管兩端用外科絲線掛線備用。用肝素化24G動脈穿刺針穿刺股淺動脈,注入1ml 500IU/ml肝素,股淺動脈用于連接動脈監(jiān)測。尾動脈用肝素化20G動脈穿刺針穿刺,穿刺完成后采集動脈血氣以測術(shù)前血氣。結(jié)扎右頸外靜脈遠心端,近心一側(cè)剪開一口,置入導(dǎo)絲,導(dǎo)絲送入下腔靜脈后沿導(dǎo)絲置入自制48孔靜脈引流管(圖2),將引流管置入適當深度后退出導(dǎo)絲,套線扎緊靜脈壁防止出血。手術(shù)操作總出血量控制在0.5ml左右。穿刺完成后將大鼠置于體外循環(huán)臺,連接溫度監(jiān)測及動脈監(jiān)測,同時氧氣瓶連接麻醉機對呼吸機供氧,通過調(diào)節(jié)氣麻深度控制大鼠轉(zhuǎn)機前血壓穩(wěn)定。
圖1 儲血室
圖2 48孔靜脈引流管
1.3.3 管道預(yù)充排氣 本實驗采用閉式少預(yù)充量管道,總預(yù)充量7~8ml,實物圖及示意圖見圖3、圖4。管道用萬汶預(yù)充,并用250IU肝素肝素化管道,敲擊管道壁充分排氣,管道靜脈端接頸靜脈插管,動脈端接尾動脈插管。
圖3 大鼠體外循環(huán)實物圖
圖4 體外循環(huán)管道示意圖
1.3.4 轉(zhuǎn)機及降溫 管道連接完成,生命體征監(jiān)測無明顯異常,膜肺進氣口接純氧(氣體流量約14ml/min),滾壓泵小流量開始轉(zhuǎn)機,此時可見大鼠血壓迅速下降,隨后慢慢回升,緩慢增加轉(zhuǎn)機流量(至35~45ml/min),改呼吸機頻率為40次/min,待循環(huán)穩(wěn)定后開啟水箱開始降溫。由于C、D組需降溫至18℃,為控制循環(huán)時間盡量相同使用冰袋及加熱毯協(xié)助升降溫,A、B組單純使用變溫器控制溫度。
1.3.5 停跳 降溫至18℃過程中大鼠心率明顯減慢,在40次/min左右,但都不能自行停跳,本實驗采用引空靜脈血方法加快心臟停跳,心臟停跳后開始計時,B、C組停跳30min,D組停跳1h。停跳期間通過間斷性物理降溫方式防止大鼠體溫回升。
1.3.6 復(fù)溫及復(fù)蘇 A組大鼠體溫降至24℃后即開始復(fù)溫,B、C、D組大鼠結(jié)束低溫停循環(huán)后開始復(fù)溫。復(fù)溫階段首先通過低流量轉(zhuǎn)機將停循環(huán)期間引出的靜脈血回輸回體外循環(huán)管道系統(tǒng),緩慢增加轉(zhuǎn)機流量,并改呼吸機頻率為50次/min。B、D組大鼠經(jīng)驗性補堿1ml,C組經(jīng)驗性補堿0.5ml,心臟復(fù)跳時抽取動脈血氣,用以調(diào)節(jié)酸堿及血氣值。大鼠復(fù)溫后期均有明顯或不明顯的血壓下降過程,過程中需謹慎補液,僅需將血壓維持在最低可耐受血壓即可。待大鼠血氣酸堿穩(wěn)定,氣體分壓穩(wěn)定,乳酸呈下降趨勢后拔除動靜脈插管,大鼠于變溫毯呼吸機支持下等待戊巴比妥鈉代謝失效,麻醉復(fù)蘇后拔除氣管插管,在溫暖富氧環(huán)境下充分復(fù)蘇,回籠飼養(yǎng)過夜。術(shù)后24h觀察大鼠存活及一般活動情況,用過量麻醉法處死大鼠并取腹主動脈血檢測血氣值。
1.3.7 觀測指標 觀察并統(tǒng)計術(shù)后24h大鼠存活及一般活動情況;術(shù)中通過多導(dǎo)電生理儀記錄平均血壓及心率作為血流動力學(xué)指標;術(shù)中及術(shù)后24h血氣值分析,包括pH、Hct、乳酸及血糖。
1.4 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件。計量資料用±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 4組大鼠術(shù)后24h存活情況及一般活動情況 術(shù)后24h觀察各組大鼠,B組大鼠死亡1只,具體死因不詳,其余大鼠全部存活。術(shù)后各組大鼠均能正?;顒?、攀爬,A組大鼠整體活動量偏少,4組大鼠均無明顯一側(cè)腦梗死典型行為學(xué)表現(xiàn)。
2.2 4組大鼠血流動力學(xué)指標比較 4組大鼠血壓及心率隨降溫明顯下降,隨升溫而回升。平均血壓在復(fù)溫末期均有一個下降峰存在,A、B組出現(xiàn)早,C、D組出現(xiàn)晚,在整個過程中平均血壓均能維持在60mmHg以上。C組血流動力學(xué)更平穩(wěn),B、D組平均血壓下降峰明顯,此外D組復(fù)溫末期心率(450.0±15.8)次/min明顯快于基礎(chǔ)心率(354.0±35.8)次/min,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖 5-8。
2.3 4組血氣pH、Hct比較 4組大鼠在體外循環(huán)期間pH組間比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(均P>0.05)。術(shù)后24h,A組Hct均明顯低于B、C、D組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),其余時間4組Hct比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(均P>0.05)。見表1。
2.4 4組血氣乳酸、血糖結(jié)果比較 與術(shù)前比較,B、C、D組復(fù)溫初、停機前乳酸、血糖均明顯升高(均P<0.05);復(fù)溫初時,B、C組乳酸、血糖比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),D、C組乳酸、血糖比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均 P<0.05);停機前時,D 組乳酸值均高于 A、B、C組(均P<0.05),B組乳酸值均高于 A、C組(均P<0.05),B、D組血糖均明顯高于A、C組(均P<0.05),C組血糖明顯高于A組(P<0.05)。見表2。
圖5 降溫階段平均血壓趨勢圖
圖6 升溫階段平均血壓趨勢圖
圖7 降溫階段平均心率趨勢圖
圖8 升溫階段平均心率趨勢圖
表1 4組大鼠血氣pH、Hct比較
表2 4組大鼠血氣乳酸、血糖值的比較(mmol/L)
低溫停循環(huán)模型是個較難構(gòu)建的模型,其中體外循環(huán)過度血液稀釋、術(shù)中氣體栓塞、液體負荷過大等都是造成實驗動物死亡率過高的原因。目前國外文獻中大鼠深低溫停循環(huán)時間最長是60min[6],此外目前臨床上,中低溫停循環(huán)聯(lián)合順行性腦灌注被認為是最佳的腦保護策略,中低溫停循環(huán)也有進一步的臨床研究意義。本文創(chuàng)新性使用閉式少預(yù)充量管道,解決了模型構(gòu)建中血液過度稀釋及氣體栓塞的問題。關(guān)于專利管道詳細內(nèi)容及優(yōu)勢見專利授權(quán)[7]。
乳酸在一定程度上可反映組織缺血、缺氧水平,經(jīng)歷停循環(huán)損傷的B、C、D組乳酸值均明顯升高,此外B組明顯高于C組,提示隨著停循環(huán)溫度升高,大鼠受缺血、缺氧損傷明顯加重。D組乳酸值明顯高于C組,提示隨著停循環(huán)時間延長,大鼠受缺血、缺氧損傷亦明顯加重。術(shù)后24h各組大鼠乳酸值均恢復(fù)至正常水平,提示大鼠術(shù)后內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,無缺血、缺氧表現(xiàn),模型具有良好的穩(wěn)定性和高存活率。
血糖值在一定程度上反映大鼠應(yīng)對損傷的應(yīng)激水平,隨著手術(shù)進程推進,大鼠血糖值呈持續(xù)升高狀態(tài),其中B、D組明顯高于C組,同樣表明延長停循環(huán)時間及升高停循環(huán)體溫時大鼠的損傷應(yīng)激更明顯。C組高于A組,提示深低溫停循環(huán)30min在血氣內(nèi)環(huán)境方面大鼠已經(jīng)有了缺血、缺氧損傷表現(xiàn)。
從實驗結(jié)果來看,本套閉式少量預(yù)充管道系統(tǒng)在體外循環(huán)實驗及深低溫、中低溫停循環(huán)實驗中都有高成功率及可重復(fù)性。實驗結(jié)果和預(yù)期略有差異,A組術(shù)后24h Hct明顯低于預(yù)期,也低于其它實驗組,由此表現(xiàn)為大鼠活動能力也低于實驗組,考慮連續(xù)的體外循環(huán)及降升溫對紅細胞損傷較大,在設(shè)計實驗時需要重視如何控制體外循環(huán)時間。18℃深低溫停循環(huán)60min大鼠術(shù)后24h活動能力良好,表現(xiàn)活躍,四肢尚且協(xié)調(diào),深低溫停循環(huán)1h尚未達到大鼠耐受極限,后續(xù)將延長深低溫停循環(huán)時間,探究極限狀態(tài)下器官損傷情況[8]。此外體外循環(huán)對紅細胞損傷也不容忽視,調(diào)整泵管及動脈穿刺針型號,優(yōu)化外界輔助升降溫方法以減少術(shù)中紅細胞破壞,這對提高極限狀態(tài)下存活率或許有幫助。
實驗中大鼠體外循環(huán)系統(tǒng)采用純氧供氣,通過使用空氧混合氣體可降低術(shù)中氧分壓,用于研究高氧灌注和低氧灌注相關(guān)研究[9-10]。體外循環(huán)階段大鼠Hct能維持在30%左右,可做血液稀釋方面研究[11]。實驗中可見18℃深低溫停循環(huán)60min大鼠乳酸下降明顯偏慢,可做肝臟損傷方面研究[12],術(shù)后24h解剖大鼠取材見十二指腸后空腸韌性變差,術(shù)后大鼠糞便性狀改變,可做腸道方面研究。升溫末期深低溫停循環(huán)大鼠血壓均有明顯或不明顯的下降趨勢,可做心臟及微循環(huán)方面研究。降低中樞代謝,延長腦耐受缺血、缺氧時間作為深低溫初衷,腦保護也是研究主要內(nèi)容。逆行性自體血回輸可進一步提升術(shù)中Hct,可進行相關(guān)血液稀釋及微循環(huán)方面研究[13]。本實驗已取腦、心、肺、腸、肝、腎、動脈血等標本,將后續(xù)進行深低溫停循環(huán)術(shù)后24h標本蛋白免疫印跡及組織切片研究。