楊 越,楊留長,紀曉亮,李易航,徐倩茹,佟海濱*
(1.溫州大學 生命與環(huán)境科學學院,浙江 溫州 325035;2.浙江省水環(huán)境與海洋生物資源保護重點實驗室,浙江 溫州 325035;3.溫州醫(yī)科大學 公共衛(wèi)生與管理學院,浙江 溫州 325035)
提取是中藥生產(chǎn)的首要工藝,其中間體的質(zhì)量會直接影響后續(xù)生產(chǎn)過程的中間體及最終產(chǎn)品的質(zhì)量。目前,提取工藝的質(zhì)量控制主要采用抽樣和離線方式,依據(jù)質(zhì)量標準采用常規(guī)分析方法(如紫外-可見分光光度法、高效液相色譜法、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法)檢測提取過程中間體。然而,這些方法費時費力,難以快速測定,無法實時監(jiān)控生產(chǎn)過程中藥效成分含量的變化情況,從而導致產(chǎn)品批次間的質(zhì)量差異較大。因此,亟需研究一種適用于中藥生產(chǎn)過程的快速分析方法,這將有助于實現(xiàn)中藥生產(chǎn)過程的實時檢測與優(yōu)化控制,對于推進中藥產(chǎn)業(yè)智能制造和保證產(chǎn)品質(zhì)量具有重要的現(xiàn)實意義。
近紅外光譜(NIRS)技術(shù)是一種間接的分析方法,往往需要結(jié)合計量學模型進行分析測定。其具有快速、無損、綠色,以及多組分同時測定等特點[1-4],目前已被廣泛應(yīng)用于中藥藥效成分的含量測定[5-6]、天然產(chǎn)物的鑒別[7-9]和藥材的快速鑒定[10-12]等方面。此外,NIRS由于無需對樣品進行預處理,特別適合在線分析,因而被越來越多地應(yīng)用于中藥生產(chǎn)過程的質(zhì)量控制[13]。
柴胡化學成分復雜,其中皂苷類、黃酮類、多糖類為其主要活性成分[14-15],具有抗輻射、抗病毒、抗?jié)儭⒔笛?、增強免疫力等療效[16-17]。本文將NIRS應(yīng)用于柴胡的提取過程研究,以總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D為質(zhì)量指標,收集提取液樣品,采集所有樣品的近紅外光譜圖并采用傳統(tǒng)分析方法測定其指標含量,結(jié)合偏最小二乘法(PLS)建立柴胡提取過程中各指標的定量校正模型,對各指標成分含量進行快速分析,以實現(xiàn)中藥提取過程中的質(zhì)量快速監(jiān)測。
Agilent 1260高效液相色譜儀(Agilent Technologies,USA);Waters Xbridge C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);Antaris Ⅱ傅里葉變換近紅外光譜儀(Thermo Fisher,USA);TU1810紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責任公司);FA2004電子天平(上海越平科學儀器有限公司);DK-S24電熱恒溫水浴鍋(上海精宏實驗設(shè)備有限公司);2 L三口圓底燒瓶。
聚醚砜超濾膜(直徑:47 mm,孔徑:0.22 μm,北京京啟華誠科技發(fā)展有限公司);乙腈(色譜純,Merck,Germany);濃硫酸、甲醇、苯酚、亞硝酸鈉、氫氧化鈉、硝酸鋁(分析純,國藥集團化學試劑有限公司);蘆丁、葡萄糖、柴胡皂苷A、柴胡皂苷D對照品(純度均大于98%,成都曼思特生物科技有限公司);超純水(Millipore,USA);實驗用水均為超純水;自藥店購買藏柴胡,經(jīng)溫州大學生命與環(huán)境科學學院佟海濱副研究員鑒定。
稱取1 kg柴胡藥材,置于2 L三口圓底燒瓶中,加入10倍量的水,煎煮60 min。煎煮自0 min開始每隔4 min收集10 mL提取液,并補充10 mL水,直至60 min為止。每批次煎煮60 min之后,立即連續(xù)收集5個提取終點樣本。重復6次提取實驗,共收集126個樣品。
采集柴胡提取液樣品的透射光譜,設(shè)定光譜掃描范圍為4 000~10 000 cm-1,掃描次數(shù)為64次,分辨率為8 cm-1,液體樣品池為0.5 mm光程的石英比色皿,以空氣為參比,每份樣品重復測定3次,取平均光譜用于后續(xù)數(shù)據(jù)處理以減小誤差。
1.4.1 總黃酮含量的測定
(1)對照品溶液的制備; 采用蘆丁作為對照品,利用紫外可見分光光度法測定柴胡中的總黃酮含量[18-20]。精密稱定干燥至恒重的蘆丁對照品10.12 mg,置于25 mL容量瓶中,加水適量,水浴微熱使之溶解,加水至刻度,搖勻,即得質(zhì)量濃度為404.8 μg/mL的蘆丁對照品溶液。
(2)標準曲線的繪制; 精密量取蘆丁對照品溶液0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL,分別置于25 mL量瓶中,各加水至6.0 mL,加5%亞硝酸鈉溶液1 mL,混勻,放置6 min,加10%硝酸鋁溶液l mL,搖勻,放置6 min,加4%氫氧化鈉試液10 mL,再加水至刻度,搖勻,放置15 min。以相應(yīng)的試劑為空白對照,在500 nm波長處測定吸光度,以吸光度(Y)為縱坐標,蘆丁的質(zhì)量濃度(X,μg/mL)為橫坐標繪制標準曲線?;貧w方程為Y=12.471X-0.000 04(0~48.576 μg/mL),r2為0.999 7,說明方法的線性關(guān)系良好。
(3)供試品溶液的制備; 取柴胡提取液于離心機中,3 800 r/min離心10 min后,取上清液3 mL于25 mL試管中,加水至6 mL,加5%亞硝酸鈉溶液1 mL,混勻,放置6 min后,加10%硝酸鋁溶液l mL,搖勻,放置6 min,加4%氫氧化鈉試液10 mL,再加水至刻度,搖勻,放置15 min。以相應(yīng)的試劑為空白對照,在500 nm波長處測定吸光度。
1.4.2 多糖含量的測定
(1)對照品溶液的制備; 采用無水葡萄糖作為對照品,利用紫外可見分光光度法測定柴胡中的多糖含量[20-22]。精確稱定干燥至恒重的葡萄糖對照品4.00 mg,置于50 mL容量瓶中,加水適量,水浴微熱使之溶解,加水至刻度,搖勻,即得質(zhì)量濃度為0.080 mg/mL的葡萄糖對照品溶液。
(2)標準曲線的繪制; 精密量取葡萄糖對照品溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分別置于試管中,每管加入水使溶液總量達到1 mL。再分別加入6%苯酚0.5 mL和濃硫酸2.5 mL,振蕩均勻,放置30 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在490 nm波長處測定吸光度,以吸光度(Y)為縱坐標,葡萄糖的質(zhì)量濃度(X,mg/mL)為橫坐標繪制標準曲線?;貧w方程為Y=60.557X+0.000 8(0~0.020 mg/mL),r2為0.999 8,說明方法的線性關(guān)系良好。
(3)供試品溶液的制備;取柴胡提取液于離心機中,3 800 r/min離心10 min后,取上清液1 mL,置于250 mL容量瓶中定容至刻度,搖勻,精密量取1 mL,再分別加入6%苯酚0.5 mL和濃硫酸2.5 mL,振蕩均勻,放置30 min。以相應(yīng)的試劑為空白對照,在490 nm波長處測定吸光度。
1.4.3 柴胡皂苷A與柴胡皂苷D含量的測定
(1)對照品溶液的制備;取柴胡皂苷A、柴胡皂苷D對照品各適量,精密稱定,置于10 mL容量瓶中,加甲醇溶解并定容得柴胡皂苷A、柴胡皂苷D標準溶液,各取柴胡皂苷A、D標準溶液1 mL置于10 mL容量瓶中,加甲醇至刻度,制成質(zhì)量濃度分別為58、59 μg/mL的柴胡皂苷A與柴胡皂苷D混合對照品溶液。
(2)供試品溶液制備; 取柴胡提取液,用聚醚砜超濾膜過濾,棄去初濾液,取續(xù)濾液作為供試品溶液。
(3)HPLC條件;色譜柱:Waters Xbridge C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相:水-乙腈;檢測波長:210 nm;進樣量:10 μL;流速:1.0 mL/min;柱溫:25 ℃;柴胡皂苷A梯度洗脫:0~20 min:45%~50%乙腈;柴胡皂苷D梯度洗脫:0~20 min:50%~58%乙腈。
(4)標準曲線的繪制;取柴胡皂苷A與柴胡皂苷D混合對照品溶液,按上述色譜條件分別進樣1、2、3、4、5、6 μL,以峰面積(Y)為縱坐標,柴胡皂苷A的質(zhì)量濃度(X,μg/mL)為橫坐標繪制標準曲線。柴胡皂苷A的回歸方程為Y=20.689X-0.862(5.8~34.8 μg/mL),r2為0.999 6,說明方法線性關(guān)系良好。同樣取混合對照品溶液,按上述色譜條件分別進樣0.8、1.2、1.4、1.6、1.8、2.0 μL,以峰面積(Y)為縱坐標,柴胡皂苷D的質(zhì)量濃度(X,μg/mL)為橫坐標繪制標準曲線。柴胡皂苷D的回歸方程為Y=19.326X+5.214 5(4.72~11.8 μg/mL),r2為0.999 2,說明方法線性關(guān)系良好。
1.4.4 方法學考察
(1)精密度試驗; 取一批樣品溶液,在上述方法條件下連續(xù)測定6次,以總黃酮、多糖、柴胡皂苷A及柴胡皂苷D的吸光度或峰面積進行精密度考察。結(jié)果顯示,各成分的相對標準偏差(RSD)分別為0.201%、0.084 8%、0.049%、0.442%,表明該方法的精密度良好,符合定量要求。
(2)穩(wěn)定性試驗; 取同一樣品溶液適量,分別在0、1、2、4、8、12 h 6個時間點測定4種成分的吸光度或峰面積,進行穩(wěn)定性考察。結(jié)果顯示,各成分的RSD分別為0.683%、0.070%、0.210%、0.852%,表明樣品在12 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。
(3)重復性試驗; 平行制備6份樣品溶液,在上述方法條件下測定,計算總黃酮、多糖、柴胡皂苷A及柴胡皂苷D含量,進行重復性考察。結(jié)果顯示,各成分的RSD分別為0.429%、0.402%、0.952%、2.470%,表明方法的重復性良好,符合定量要求。
模型性能的評價通常采用校正集誤差均方根(Root mean square error of calibration,RMSEC)、預測集誤差均方根(Root mean square error of prediction,RMSEP)、校正集相關(guān)系數(shù)(Correlation coefficient of calibration,RC)、預測集相關(guān)系數(shù)(Correlation coefficient of prediction,RP)、預測集相對偏差(Relative standard of errors of prediction,RSEP)作為評價指標,考察不同建模方法的優(yōu)劣[23-24]。通常R越接近于1,RMSEC和RMSEP之間的差距越小,則代表模型的預測性能越高。選擇合適的波段,在適宜的光譜預處理基礎(chǔ)上,運用PLS建立NIRS與柴胡各指標含量測定值之間的定量校正模型。各性能評價指標的計算公式如下:
其中,Ci為參考方法測量值;i為NIRS模型預測值;Cn為校正集中Ci的平均值;Cm為預測集中Ci的平均值;n為校正集樣本數(shù);m為預測集樣本數(shù)。
柴胡提取過程中的總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的動態(tài)變化曲線見圖1。從圖1中可以看出,提取液中4種藥效指標的含量均隨時間呈上升趨勢。其中,總黃酮與多糖的含量在整個提取過程中持續(xù)上升;柴胡皂苷A含量呈現(xiàn)先快速增長再緩慢增長的趨勢;柴胡皂苷D含量在前10 min呈現(xiàn)增長趨勢,之后趨于穩(wěn)定。
將第5批柴胡提取液樣品作為預測集,剩余5個批次的樣品作為校正集。各指標成分的含量分布如表1所示??梢钥吹剑U锌傸S酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的含量范圍分別為101.00~262.77 μg/mL、2.99~10.87 mg/mL、10.53~33.60 μg/mL、3.07~6.80 μg/mL;預測集中總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的含量范圍分別為124.77~245.60 μg/mL、6.25~10.39 mg/mL、14.79~33.89 μg/mL、3.97~7.04 μg/mL。校正集指標成分的含量范圍基本涵蓋了預測集,表明樣品分布合理,有利于建立高精度模型。
表1 校正集和預測集數(shù)據(jù)的統(tǒng)計結(jié)果Table 1 Statistical results of samples in the calibration set and prediction sets
近紅外光譜區(qū)域的主要光譜信息來源于含氫基團如—OH、—NH和—CH 等的倍頻與合頻吸收,絕大多數(shù)生物化學樣品在此區(qū)域均有相應(yīng)的吸收帶,因此借助這些信息可進行定性或定量分析。圖2為柴胡提取液樣本的原始近紅外光譜??梢钥闯?,不同樣本的光譜特征并無顯著差異,在6 944 cm-1和5 155 cm-1附近有兩強吸收峰,分別為O—H基團的一級倍頻和伸縮振動組合頻區(qū)域。
圖2 柴胡提取液的原始近紅外光譜Fig.2 Raw near infrared spectra of samples collected from the extract of Bupleuri Radix
2.3.1 異常光譜的剔除測量環(huán)境的改變,儀器和性能參數(shù)的變化等許多不確定性因素均會導致異常光譜的產(chǎn)生。異常光譜的存在會影響模型的準確性和適用性,因此在建模之前,必須先排除異常光譜。本實驗使用馬氏距離法識別異常光譜(馬氏距離是每個樣本光譜與所有樣本集平均光譜之間的距離,通過95%置信水平的Chauvenet檢驗識別樣本是否異常[25])。如圖3所示,126個樣本中有8個樣本的馬氏距離超出閾值,屬于光譜異常樣本。異常樣本的總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的含量均明顯低于其余樣本,4個指標平均值分別為125.92 μg/mL、5.02 mg/mL、13.40 μg/mL、2.44 μg/mL,而其余118個樣本的4個指標平均值則分別為210.12 μg/mL、7.89 mg/mL、26.23 μg/mL、5.12 μg/mL。刪除8個光譜異常樣本后,將剩余118個樣本用于后續(xù)模型的建立與驗證。
圖3 異常光譜的判別Fig.3 Identification of outlier samples
表2 近紅外波段對PLS模型性能的影響Table 2 Effects of near infrared spectral section on PLS models
2.3.3 光譜預處理方法的選擇基線漂移、噪聲、環(huán)境、背景干擾等因素會對近紅外光譜產(chǎn)生明顯干擾[29-30],為了提高信噪比和提升定量校正模型的準確度和穩(wěn)健性[31],在建模之前一般要對原始光譜進行預處理。本實驗基于上述最佳光譜波段,采用無光譜數(shù)據(jù)預處理(No pretreatment)、一階導數(shù)(1D)、一階導數(shù)+SG平滑(1D+SG)、一階導數(shù)+Norris平滑(1D+Norris)、二階導數(shù)(2D)、二階導數(shù)+SG平滑(2D+SG)、二階導數(shù)+Norris平滑(2D+Norris)共7種不同光譜預處理方法對建模效果進行考察,結(jié)果見表3。多糖和柴胡皂苷D模型在無預處理方式下RMSEC和RMSEP值最小且相近,RP值最大,模型性能最好;總黃酮和柴胡皂苷A模型分別在選用1D+SG和2D+Norris預處理時模型效果最好。為了提升模型預測精度,總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D分別選擇1D+SG、No pretreatment、2D+Norris和No pretreatment 4種光譜預處理方法。
2.3.4 主因子數(shù)的選擇在構(gòu)建PLS模型時,主因子個數(shù)的選擇會顯著影響模型的預測性能。主因子數(shù)過少則建模信息不全,出現(xiàn)“欠擬合”,導致模型精度不足;主因子數(shù)過多則會帶入大量無關(guān)信息(如噪音),出現(xiàn)“過擬合”,導致模型預測能力明顯下降[32-33]。本研究以交叉驗證誤差均方根(Root mean square error of cross validation,RMSECV)為評價指標,考察不同主因子數(shù)對PLS模型預測性能的影響。RMSECV值越小,代表模型預測性能越高,RMSECV最小值對應(yīng)的主因子數(shù)為最佳主因子數(shù)。結(jié)果表明,總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的PLS模型分別選取主因子數(shù)為7、9、5、10時所得的RMSECV值最小。因此,本實驗選擇7、9、5、10分別作為總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的最佳主因子數(shù)。
表3 不同光譜預處理方法對PLS模型性能的影響Table 3 Effects of different spectral pretreatments on models
2.3.5 近紅外定量模型的建立與驗證基于上述優(yōu)化過程,建立了總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的PLS定量校正模型。4個藥效指標PLS模型的校正集和預測集中的參考值和近紅外預測值的相關(guān)性見圖4。從圖中可以看出,近紅外預測值與參考值表現(xiàn)出良好的擬合度,4個定量模型的RC和RP均大于0.9,RMSEC分別為4.18 μg/mL、0.358 mg/mL、1.61 μg/mL、0.401 μg/mL;RMSEP分別為3.46 μg/mL、0.743 mg/mL、1.53 μg/mL、0.406 μg/mL,每個模型的RMSEC和RMSEP較小且較為接近,并且總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的RSEP分別為1.65%、8.28%、5.74%和7.52%,均在10%以內(nèi)。表明模型的預測精度較高,可準確預測柴胡提取液中總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D的含量。
為了進一步驗證模型的預測能力,利用已校正的模型預測新的一批柴胡提取液樣品。結(jié)果如圖5所示,可看出模型給出的近紅外預測值與參考值十分接近,變化趨勢基本保持一致,表明采用NIRS可以成功預測柴胡提取過程中的4種藥效指標。
本文采用NIRS結(jié)合PLS法建立定量校正模型,實現(xiàn)了柴胡提取液中總黃酮、多糖、柴胡皂苷A和柴胡皂苷D 4種成分的快速測定。所建定量模型的R值均在0.9以上,RSEP在10%以內(nèi),模型的預測精度較高。該方法的操作簡便、無需樣品預處理,且成本較低,不涉及有機試劑,綠色無污染,彌補了常規(guī)分析方法的不足,可推廣應(yīng)用于中藥提取過程的在線分析,這對于節(jié)約資源、提升中藥質(zhì)量控制水平具有重要的借鑒意義。