程 琳張曉艷魏美甜倫堯堯趙 靜王曉武李傳友
(1 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部設(shè)施蔬菜種質(zhì)創(chuàng)新重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東省設(shè)施蔬菜分子育種省級重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東省蔬菜工程技術(shù)研究中心,山東壽光蔬菜種業(yè)集團(tuán)有限公司,山東省壽光蔬菜產(chǎn)業(yè)集團(tuán)有限公司,山東壽光 262700;2 壽光市農(nóng)業(yè)技術(shù)中心,山東壽光 262700;3 山東壽光歐亞特菜有限公司,山東壽光 262700;4 山東省生物化學(xué)與分子生物學(xué)高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,濰坊學(xué)院生物與農(nóng)業(yè)工程學(xué)院,山東濰坊 261061;5 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,北京 100081;6 中國科學(xué)院遺傳與發(fā)育生物學(xué)研究所,北京 100101)
由尖孢鐮孢菌番茄頸腐根腐病?;停‵usarium oxysporumf.sp.radicis-lycopersici,F(xiàn)ORL)引起的番茄頸腐根腐?。‵usarium crown and root rot,F(xiàn)CRR)(Yamamoto et al.,1974;Jarvis &Shoemaker,1978)是一種重要的土傳病害(Benaouali et al.,2014),主要表現(xiàn)為植株莖基部交接處、環(huán)繞莖基部有明顯的深褐色病斑,被侵染植株苗期易從病斑處折倒而萎蔫致死,5 葉期以后至開花結(jié)果期發(fā)病則表現(xiàn)為莖基部縊縮、呈深褐色,植株仍然直立而萎蔫致死(耿麗華 等,2012)。
該病害于1974 年首次在日本發(fā)現(xiàn),隨后在美洲、歐洲和非洲等多個(gè)國家發(fā)生,造成嚴(yán)重?fù)p失(Sonoda,1976;Jarvis,1988;Rekah et al.,1999;Jacobs &Heerden,2012)。最近幾年,我國東北、華北地區(qū)發(fā)病比較嚴(yán)重,尤以山東省壽光地區(qū)病情最為突出。壽光日光溫室番茄發(fā)病率達(dá)80%以上,致死率達(dá)30%以上,造成嚴(yán)重減產(chǎn),已成為山東省繼線蟲、黃化曲葉病毒病等毀滅性病害暴發(fā)之后的另一普遍性番茄病害(程琳 等,2016)。
番茄頸腐根腐病的病原菌侵染周期相對較長,目前還沒有安全有效的防范治療措施(Liu et al.,2010),因此選育抗番茄頸腐根腐病的番茄新品種就成為科學(xué)有效的方法。傳統(tǒng)育種一般通過人工接種,篩選F.oxysporumf.sp.radicis-lycopersici的抗性材料(Staniaszek et al.,2014)。這個(gè)過程耗費(fèi)時(shí)間長、成本高、人工量大。在番茄中,對FORL 的抗性是由1 個(gè)顯性單基因Frl控制的,而這個(gè)基因來源于Solanum peruvianum(Yamakawa &Nagata,1975;Berry &Oakes,1987),并且在已知的3 份抗源材料中抗病基因都是一種(Kamilova et al.,2006)。Frl基因定位在番茄9 號(hào)染色體的長臂端,與Tm-2基因緊密連鎖(Vakalounakis et al.,1997;Fazio et al.,1999)。Fazio 等(1999)發(fā)現(xiàn)了1 個(gè)與Frl基因緊密連鎖的RAPD 標(biāo)記,Tanyolac 和Akkale(2010)、Truong 等(2011)也開發(fā)得到了一些CAPS 標(biāo)記,但準(zhǔn)確性都無法令人滿意。Staniaszek 等(2014)找到了1 個(gè)與Frl基因緊密連鎖的分子標(biāo)記C2-25,此標(biāo)記經(jīng)過酶切,可有效篩選抗病材料。但是CAPS 標(biāo)記需要酶切,成本高,試驗(yàn)程序繁瑣,檢測效率低。
本試驗(yàn)利用C2-25 引物,以25 份背景不同、抗性已知的番茄材料為模板,分別進(jìn)行PCR,挑取單克隆并測序,得到了抗感病序列。根據(jù)抗感病序列的差異位點(diǎn),分別設(shè)計(jì)抗病和感病SCAR 標(biāo)記,利用親本以及F1篩選得到抗病、感病混合引物對,并用F2群體成功進(jìn)行了驗(yàn)證。
試驗(yàn)于2017 年1—6 月在山東省蔬菜工程技術(shù)研究中心基地日光溫室內(nèi)進(jìn)行。使用程琳等(2016)鑒定出的25 份番茄材料進(jìn)行抗病、感病序列測定。SCAR 標(biāo)記篩選及驗(yàn)證使用抗病親本P51、感病親本P284 及其F1、F2材料。用于測序的25 份材料以及親本P51、P284,F(xiàn)1材料各種植15 株,F(xiàn)2材料種植700 株。所有材料于2017 年1 月15 日播種,2 月15 日定植,常規(guī)田間管理。
病原菌為2014 年9 月在山東省壽光市稻田鎮(zhèn)西劉營村農(nóng)戶日光溫室內(nèi)典型番茄頸腐根腐病發(fā)病植株上采集,按常規(guī)方法保存。
采集已知表型的25 份材料以及鑒定出表型的親本F1、F2植株的葉片,采用改良的CTAB 法(Fulton et al.,1995)提取各單株的DNA,利用Staniaszek 等(2014)設(shè)計(jì)的C2-25 引物序列及新設(shè)計(jì)的SCAR 引物序列進(jìn)行PCR。
C2-25 引物膠回收PCR 體系:上下游引物各5 μL,DNA(提取后的DNA 稀釋10 倍)20 μL,10× PCR Buffer for KOD-Plus-Neo 20 μL,dNTPs(2 mmol·L-1)20 μL,MgSO4(25 mmol·L-1)12 μL,KOD-Plus-Neo(1 U·μL-1)4 μL,ddH2O 114 μL。PCR 反應(yīng)程序:94 ℃ 2 min;98 ℃ 10 s,55℃ 30 s,68 ℃ 45 s,35 個(gè)循環(huán);68 ℃ 10 min,4 ℃保存。采用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增產(chǎn)物,電壓100 V,電泳30 min,紫外燈下切膠和拍照。
C2-25 引物菌落PCR 體系:上下游引物各0.5 μL,2×TaqPCR Mix(北京艾德萊生物科技有限公司)10 μL,菌液1 μL,ddH2O 8 μL。PCR 反應(yīng)程序同上。
SCAR 標(biāo)記篩選的PCR 體系:抗病/感病上下游引物各0.5 μL,2×TaqPCR Mix 10 μL,DNA 2 μL,ddH2O 7 μL。SCAR 標(biāo)記群體驗(yàn)證的PCR 體系:抗病上下游引物各0.5 μL,感病上下游引物各0.5μL,2×TaqPCR Mix 10 μL,DNA 2 μL,ddH2O 6 μL。SCAR 標(biāo)記PCR 反應(yīng)程序:94 ℃ 5 min;94℃ 30 s,56 ℃ 30 s,72 ℃延伸(延伸時(shí)間根據(jù)延伸速度1~2 kb·min-1計(jì)算),35 個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min,4 ℃保存。
1.3.1 PCR 產(chǎn)物回收 使用AxyPrep DNA 凝膠回收試劑盒,切膠回收PCR 產(chǎn)物。
1.3.2 產(chǎn)物加A 尾 使用北京艾德萊生物科技有限公司的TaqDNA Polymerase 試劑盒加A 尾。反應(yīng)體系:回收產(chǎn)物30 μL,TaqDNA Polymerase 1 μL,10×TaqBuffer 5 μL,dATP(10 mmol·L-1)1 μL,ddH2O 13 μL。輕彈混勻,瞬時(shí)離心,在PCR儀上72 ℃延伸30 min。
1.3.3 產(chǎn)物連接轉(zhuǎn)化 使用北京艾德萊生物科技有限公司的零背景pTOPO-TA 克隆試劑盒。連接體系為:pTOPO-T 載 體1 μL(30 ng·μL-1),10×Enhancer 1 μL,PCR 純化產(chǎn)物8 μL(約50 ng)。加入試劑后吹打混勻,低速瞬時(shí)離心,收集離心管底部的所有液體,室溫連接5 min。
取50~100 μL 感受態(tài)細(xì)胞,置于冰上解凍,加入5 μL 連接液,吹打混勻,室溫放置5 min。加入300~500 μL 無抗體的LB 培養(yǎng)液,37 ℃、180 r·min-1振蕩培養(yǎng)10 min。在含有氨芐青霉素(80 μg·mL-1)的LB培養(yǎng)基上培養(yǎng)過夜。挑取單菌落,搖菌,通過PCR 選擇條帶大小正確的菌液,每個(gè)培養(yǎng)皿選擇3 個(gè)菌液送至英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司測序。
利用在線比對網(wǎng)站CLUSTALW(https://www.genome.jp/tools-bin/clustalw/),比對抗病序列和感病序列,根據(jù)二者的差異位點(diǎn),分別設(shè)計(jì)了抗病引物和感病引物。無論是正向引物還是反向引物,務(wù)必確保引物3′端末位堿基為突變堿基。
將退火溫度相近、條帶大小合適的引物,分別組合成抗病引物對和感病引物對。以抗病親本P51、感病親本P284、F1材料為模板,篩選多態(tài)性引物對。將退火溫度相近、條帶大小合適的抗病引物對和感病引物對混合,以抗病親本P51、感病親本P284、F1材料為模板,篩選多態(tài)性混合引物組合。
在F2群體中,利用篩選得到的混合引物對進(jìn)行群體驗(yàn)證,將帶型與表型鑒定結(jié)果對比,驗(yàn)證標(biāo)記準(zhǔn)確率。
參照程琳等(2016)的方法,將番茄頸腐根腐病病原菌接種到馬鈴薯葡萄糖液體培養(yǎng)基中,置于搖床中以25 ℃、120 r·min-1振蕩培養(yǎng)3 d,過濾除去菌體,配制濃度為1×107CFU 的孢子懸浮液。番茄材料在滅菌基質(zhì)中長至1 片真葉時(shí),用清水將根系清洗干凈,放在孢子懸浮液中浸根接種10 min,然后移栽至滅菌基質(zhì)中,對照用清水浸根10 min,置于18 ℃光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。接種處理14 d 后,觀察、記錄番茄材料的發(fā)病情況。
經(jīng)在線序列比對軟件CLUSTALW 比對后,排除隨機(jī)突變,19 份純合抗病材料存在1 條完全相同的抗病序列,4 份純合感病材料存在1 條完全相同的感病序列,2 份雜合抗病材料均存在前述的抗病序列和感病序列。從這25 份材料中得到了2 條序列,根據(jù)表型區(qū)分出抗病序列和感病序列,共找到了18 個(gè)差異位點(diǎn)(圖1)。
利用差異位點(diǎn),設(shè)計(jì)抗病上游引物8 條,下游引物6 條;感病上游引物7 條,下游引物7 條。選擇退火溫度相近且目的條帶大小在300~1 000 bp的抗病引物和感病引物,分別兩兩組合。以抗病親本P51、感病親本P284、F1材料為模板,篩選得到了5 對在抗病材料中有條帶、在感病材料中無條帶的抗病標(biāo)記R-3F/2R、R-4F/6R、R-6F/2R、R-6F/3R、R-6F/4R,6 對在抗病材料中無條帶、在感病材料中有條帶的感病標(biāo)記S-3F/2R、S-3F/4R、S-4F/2R、S-4F/6R、S-4F/7R、S-6F/4R(表1)。
在篩選得到的5 對抗病引物和6 對感病引物中,選擇退火溫度相近、條帶差異較大的抗病引物和感病引物,組成20 組混合引物(表2)。以抗病親本P51、感病親本P284、F1材料為模板,篩選得到可擴(kuò)增出370 bp 抗病特異片段和520 bp 感病特異片段的連鎖SCAR 標(biāo)記R-6F/2R、S-3F/4R(圖2)。
表1 C2-25 及篩選得到的SCAR 引物序列
表2 混合引物組合
以混合引物組合在500 株F2群體中篩選,122株材料擴(kuò)增出370 bp 的條帶,為純合抗病;257 株材料同時(shí)擴(kuò)增出了370 bp 和520 bp 的條帶,為雜合抗??;121 株材料擴(kuò)增出了520 bp 的條帶,為純合感?。ū?)。
采用人工接種鑒定病原菌的方法對親本、F1、F2材料進(jìn)行抗病性鑒定。結(jié)果表明,F(xiàn)2群體中373株材料表現(xiàn)抗病,127 株材料表現(xiàn)感病。抗病材料外觀無顯著變化,感病材料莖基部縊縮,出現(xiàn)褐色病斑,幼苗從病斑處倒折(圖3)。在500 株F2材料中,473 株材料人工接種鑒定結(jié)果與分子標(biāo)記檢測結(jié)果一致,準(zhǔn)確率達(dá)到94.6%。
表3 部分F2個(gè)體的分子鑒定結(jié)果及人工接種抗病性鑒定結(jié)果
現(xiàn)有的頸腐根腐病分子標(biāo)記多為RAPD、CAPS 標(biāo)記,但有的準(zhǔn)確性比較低,有的操作比較繁瑣,需要尋找結(jié)果更加準(zhǔn)確,操作更加簡便,可用于高通量篩選的分子標(biāo)記。本試驗(yàn)利用準(zhǔn)確性較高的CAPS 標(biāo)記C2-25,以25 份不同背景、已知抗性的番茄材料為模板,得到了抗病序列和感病序列,根據(jù)序列差異分別設(shè)計(jì)了抗病引物和感病引物。利用抗病親本、感病親本、雜合F1,先篩選得到了多態(tài)性抗病引物和感病引物,之后再將抗病引物和感病引物混合,篩選得到了多態(tài)性的抗病、感病混合引物組合,可擴(kuò)增出370 bp 抗病特異片段和520 bp 感病特異片段。
在500 株F2材料中,473 株材料人工接種鑒定結(jié)果與分子標(biāo)記檢測結(jié)果一致,準(zhǔn)確率達(dá)到了94.6%。仍有27 株材料檢測結(jié)果不一致,這種差異可能與這個(gè)分子標(biāo)記和抗病基因Frl間尚存在一定的連鎖距離有關(guān),因此后續(xù)研究可開發(fā)與抗病基因Frl連鎖關(guān)系更近乃至基因內(nèi)部標(biāo)記,從而提高分子標(biāo)記鑒定的準(zhǔn)確度。同時(shí),為了提高通量,配合LGC 技術(shù),也應(yīng)該開發(fā)SNP 分子標(biāo)記。